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第三章 研究方法 第一節、實驗設計(Fig. 5)

一、 研究目的(一):探討 OPN 於精液中之表現情形

實驗設計:利用西方墨點法(Western blot)分析精液中 OPN 蛋白之表現 情形。

二、 研究目的(二):分析 OPN 於精子中之表現情形。

實驗設計:

1. 利用西方墨點法(Western blot)分析精子中 OPN 蛋白之表現量。

2. 分別探討各等級游動力之精子其 OPN 之表現情形。

3. 利用免疫螢光分析法,觀察 OPN 於精子中表現之位置。

三、 研究目的(三):觀察添加 OPN 後,對於精子游動力之影響

實驗設計:利用電腦輔助精子分析儀(CASA)分析加入 0.1μM OPN 後 對於各等級游動力之精子游動力及各項運動參數之影響。

四、 研究目的(四):探討 OPN 對於精子受孕能力之影響 實驗設計:評估精子受孕能力試驗

1. 精子移動至卵子之能力測定(In vitro migration patterns assay) 2. 精子穿透卵子試驗(Sperm penetration assay;SPA)

3. 精子之頂體反應(Acrosome reaction assay) 4. 體外受精試驗(In vitro fertilization assay)

五、 研究目的(五):探討 OPN 提高精子受孕能力之機制

實驗設計: 精子細胞骨架蛋白(cytoskeleton)之免疫螢光染色,包括 actin、 spectrin 與 α-tubulin。

第二節、實驗方法與材料 一、 精液收集

本研究之男性精子來源為醫學中心門診病人,檢體依照游動力 Grade3 與 Grade4 總和所佔之比率,將檢體區分為低(0-30%)、中 (31-60%)、高游動力之精子。Grade3 與 Grade4 之精子佔全部之 30%

以下列為低游動力組,稱為Group 1;介於 31-60%則為中游動力組,

稱為Group 2;而高於 60%則屬游動力佳之高游動力組,稱為 Group 3(Table.2)。

二、 精液分析檢查

收集禁慾 3-5 天之新鮮精液,靜置 20 分鐘後,待其完全液化。

取 5 μl 之精液置於 Makler chamber 上,並在 37℃之加熱平台,以輔 助 精 子 分 析 儀 (CASA;IVOS 10.7s, Hamilton Thorne Research, Beverly, MA)。影像之擷取於 20 倍顯微鏡下,隨機抽選四個視野下 做分析;CASA 之分析於每一個視野下連續擷取 64 張影像,並且至 少分析 100 之精子。

CASA 對精子運動參數進行分析。包括精子游動力與各項運動 參數,如曲線速度 VCL(μm/sec)、直線速率 VSL(μm/sec)、平均路 徑速率 VAP(μm/sec)、直線前進 LIN(%)、前向性 STR(%)、頭部擺

動振幅 ALH(μm)、搏動頻率 BCF(%)以及擺動性 WOB(%)。其中 VSL、VAP 代表精子前進指標,而 VCL 則代表精子活力指標。

三、 西方墨點法(Western Blot)分析 OPN 蛋白表現量

收集病人之精液,分析其精子濃度與游動力,包括Grade 3、Grade 4 與progressive motility 所佔的比率。並將精子以 600 x g,10 min 離 心分離。並將收集到的精子以PBS 清洗 2 次。利用 Western blot 分 析各檢體中精液與精子中所含之OPN 量。

Western blot 利用 SDS-PAGE 於室溫中將蛋白分離,利用 Milliblot semi-dry transfer system (Millipore, Bedford, MA) 於 25 V 下 30 分鐘轉漬至 nitrocellulose paper (Trans-Blot Transfer Medium;

Bio-Rad)上。再利用 Ponceau S (0.5% Ponceau S, 1% acetic acid)染色 後以PBS solution containing 0.1% Tween 20 及 5% BSA 於 4°C 隔 夜。隔日加入 primary antibody (以 1:1000 的 PBS 稀釋,加入 0.1%

Tween 20 及 1% BSA) 於 PBS-Tween 20 含 1%羊血清中(goat serum)清洗 30 分鐘。之後加入 peroxidase-conjugated goat anti-rabbit IgG (1:10000 以 PBS 稀釋,含 0.1% Tween 20,1% BSA)作用 2 小 時, 於 PBS-0.1% Tween 20 清洗三次,每次 15 分鐘; 最後置於 PBS 中5 分鐘。 並且另外一組以 rabbit preimmune serum 加入 primary

antibody 作為 negative control 。Blots 於 1:1 dilution 稀釋的 ECL 試劑中反應,纖維膜於 Fuji medical x-ray film (Fuji, Tokyo, Japan) 中曝光 3~15 秒。底片利用 Bio-Rad densitometer scanner (Model GS-670)(Bio-Rad,City,State) 顯 像 , 並 利 用 manufacturer's recommendations (Molecular Analyst; Bio-Rad Image Analysis Software,City,State)分析結果。

四、 以OPN 處理精子觀察對精子的受孕能力的影響 1. 精子穿透力試驗(Sperm penetration assay;SPA)

精子液化後,於實驗組加入含 0.1μM 之 OPN,室溫中培養 30 分鐘後以 Human tubal fluid (HTF, Irvine Scientific, Santa Ana, CA)(Table.3)調至 1×106/ml 的濃度準備與 Hamster 的卵子進行穿 透力試驗(Fig. 6)。Hamster 的卵子利用 0.5% pronase (Sigma, St.

Louis, MO) 除去透明帶, 並置於含 0.2ml 之處理後的精子作用 3-3.5 小時後觀察受精。實驗總計為 100 顆卵子,最後觀察精子與 卵子的原核 (pronucleus) 以及極體( polar body) 形成。

2. 精子移動至卵子能力測定(In vitro migration patterns assay)

利用horizontal column (Fig.7)來測試精子移動的能力(Hossain et

al., 1999)。取一 100mm 之 Petri dish,實驗組含 10 μg/ml OPN 之 HTF

培養液,製作column,做為精子游動之路徑。Column 共有 7 段轉 折(segment1-7),每段長 5 公分寬 1.3-2.4 公分,並於 column 的頭尾 部分做一個圓滴當作精子儲存池,並於上方覆蓋礦物油(mineral oil)。將精子濃度調至 20 ×106/ml,至於 37℃,5%CO2 培養,於 4 小 時記錄其於最後一段(S7)所含精子量。記錄以 65℃使精子不再移動 各段column 精子細胞數。

3. 頂體反應試驗(Acrosome reaction assay)

觀察精子頂體反應之情形,利用 Spermac kit (Stain Enterprises, Onderstepoort, South Africa) 染色;包括 Fixative I、Stain solution A、

Stain solution B、以及 Stain solution C 四步驟染劑,實驗方法依照 Spermac kit manufacturer’s guidelines 所述步驟(Fig. 8)。待精液液化 後,將精子抹片於玻片上,於玻片完全風乾前加入Fixative I,室溫 靜置5 分鐘。

I. 將玻片清洗後,加入 Stain solution A,靜置 2 分鐘。

II. 清洗後,加入 Stain solution B,靜置 1 分鐘。

III. 清洗後,最後加入 Stain solution C,靜置 1 分鐘。

IV. 待玻片風乾後以 1000 倍於光學顯微鏡下觀察。

4. 老鼠體外受精試驗(mouse in vitro fertilization assay)

為觀察 OPN 對於精子與卵子之受精是否有影響,因此利用老鼠 體外受精實驗(Fig. 9)。將老鼠進行超排卵刺激(superovulation),

自國家動物中心購買4-5 週大的 ICR 老鼠,飼養於台北醫學院大 學動物中心,且經過動物實驗管理小組(Institutional Animal Care and Use Committee, IACUC)核准。動物室光照週期條件為 12 小時 光照,12 小時黑暗週期,在水、飼料充分供給的飼養環境至 8-10 週大,以腹腔注射方式施打 10IU 妊娠馬血清性腺刺激激素注射 液(pregnant mare serum gonadotropin, PMSG) (Sigma, St. Louis, MO)進行超排卵(superovulation)刺激。48 小時後,再於腹腔中注 射 10IU 人類絨毛膜促性腺激素(human chrorionic gonadotropin, hCG) (Profasi, Serono, Aubonne, Switzerland)於腹腔中。隔日自輸 卵管中取出卵子與公鼠輸精管取出之精子進行體外受精,於16-18 小時後,計算細胞內產生2 個原核(2 pronucleus)之胚胎數目。

5. 精子細胞骨架之螢光免疫染色

為了觀察精子之骨架蛋白(cytoskeletal protein)之表現,我們利用 actin、 spectrin 與 α-tubulin 抗體來測定其變化。精子固定於玻片 上並以PBS 清洗清洗之後置於 3% bovine serum albumin (BSA) 之

PBS 中 1 小時。 加入一級抗體,包括 actin、spectrin、α-tubulin , 37 ºC 中培養一小時。培養過後加入二級抗體,FITC conjugate sheep anti-mouse IgG 或是 goat anti-rabbit IgG。Alexa Fluor 594 donkey anti-rabbit IgG (Molecular Probes Inc., Plano, TX) 用以偵測 spectrin 於 spectrinactin 中之位置。在數次以 PBS 的清洗後,玻片以含 propidium iodide (Vector Laboratories, Prague, Czech Republic)封片。

最後以螢光顯微鏡觀察,並以confocal microscope (Leica TCS 4D, Heidelberg, Germany) 457~675nm laser 擷取影像。

五、 統計方法

每項實驗皆是重複三次以上所得,數據以平均值±標準差呈現。

並且使用Student’s t-test 統計法分析實驗組與對照組間的差異性。若 p value<0.05 為兩組間具有顯著意義。

六、 病人權利之保護

本研究計劃經由醫院人體試驗委員會審查通過。

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