• 沒有找到結果。

結果與討論

在文檔中 以細胞及動物模型探討 (頁 13-27)

1.

結果

我們分析 NCBI Gene Expression Omnibus(GEO)browser 當中關於 CB1 與 CB2 在各種癌症的數據中發現,在許多人類腫瘤組織或細胞中,CB1 及 CB2 的 表現量相對於正常細胞有增加的趨勢,其中又以大腸直腸癌中 CB1 及 CB2 表現 量增加最為突出。因此,我們預計以大腸直腸癌細胞株探討大麻類藥品對腫瘤細 胞之影響。NCBI GEO database 顯示,不論是原位或轉移性大腸直腸癌組織,其 CB1 與 CB2 表現都比正常腸細胞有增加的趨勢(Figure 1)。我們進一步分析 AOM/DSS 誘導大腸直腸癌的小鼠腸組織,以及利用 HCT116 大腸直腸癌尾靜脈 注射所建立的肺轉移小鼠模型,也觀察到 CB1 與 CB2 都比正常細胞有表現量增 加的趨勢(Figure 2)。這些結果顯示,CB1 和 CB2 可能在大腸直腸癌 tumorigenesis 過程中扮演重要角色。

於是我們進一步想探討Δ9-THC 是否會影響大腸直腸癌細胞的增生。MTT 結 果顯示,在生理劑量下Δ9-THC 不會影響大腸直腸癌細胞的 cell viability(Figure

3)

。經由 transwell migration assay 進一步發現,在不影響 cell viability 的 Δ9-THC 生理劑量之下,Δ9-THC 會明顯促進大腸直腸癌細胞爬行之能力(Figure 4)。

接著我們想利用 xenograft mouse model 在 in vivo 中觀察Δ9-THC 對腫瘤生長 的影響。在Δ9-THC 的處理下,我們發現到Δ9-THC 能發揮已知增加食慾的效果 使得小鼠的飲食及飲水皆增加。我們更發現到Δ9-THC 會使得腫瘤生長得更好更 大顆(Figure 5)。我們將腫瘤組織切片染色分析後發現到Δ9-THC 會促進血管 新生的 marker(CD31、VEGF)表現量增加,而 VEGF 的表現更與腫瘤的大小 呈顯著的相關性(Figure 6)。我們也在另一種動物模型 HCT116 大腸直腸癌尾 靜脈注射所建立的肺轉移小鼠模型中觀察到一樣的現象,Δ9-THC 能夠促進腫瘤 的生長、促進血管新生。從這裡的結果我們可以推論出Δ9-THC 促進腫瘤生長與 其促進血管新生的效果有關(Figure 7 & 8)。

8

由於血管新生的作用來自於腫瘤細胞與內皮細胞交互作用的效果,進而促進 腫瘤的生長,因此我們便想在 in vitro 下透過 hiPSC-VECs 來探討Δ9-THC 如何 去影響到 hiPSC-VECs 與大腸直腸癌細胞間的交互作用(18)。我們收集了Δ9-THC 處理下的 HCT116 conditioned medium(HCT116 CM),發現到若將 hiPSC-VECs 處理 HCT116 CM,內皮細胞的血管新生能力及爬行能力的明顯的增加了,因此 推測Δ9-THC 可能透過促進 HCT116 分泌 growth factor 來影響到內皮細胞的生長 狀況。在分析了 HCT116 CM 後,我們發現到其中有五種 growth factors 的表現 量明顯增加,分別為 GDNF、IGFBP6、IGF2、SCF、VEGFA,而這些 growth factors 也確實調控了許多與細胞增生、代謝相關的訊息傳遞路徑。我們再利用 UCSC Genome Browser 進行分析,發現到了這五種 growth factors 的 promoter regions 上有共同的十一種 transcription factor binding sites。我們實驗後也發現到Δ9-THC 並不會影響到這十一種 transcription factors mRNA 的表現。在我們進一部探討 STAT1 時發現到,雖然 STAT1 的蛋白表現同樣不會受到Δ9-THC 的影響,但在 免疫螢光染色的結果卻發現到 STAT1 會受到Δ9-THC 的誘導下而由細胞質移動 到細胞核中並接合到這五種 growth factors 的 promoters 上(Figure 10)。

為了確定Δ9-THC 是透過 STAT1 來對這五種 growth factors 進行調控,我們 分別使用了 STAT1 antagonists(fludarabine)以及 CRISPR/Cas9 的技術抑制 STAT1 的作用,來觀察這五種 growth factors 的變化。在兩種的實驗方法下我們都觀察 到了 STAT1 受到抑制下,這五種 growth factors 的表現量即使在Δ9-THC 處理後 也沒有顯著的提升。這便說明了Δ9-THC 能透過 STAT1 來調控這五種 growth factors 的表現(Figure 11)。

最後,我們想確定Δ9-THC 是否是透過 STAT1 來對腫瘤細胞造成影響。我 們選擇了 xenograft mouse model 來進行 in vivo 的觀察,我們將 STAT1 wild type 以及 STAT1 knock out 的 HCT116 分別種在同一隻小鼠背部的兩側。在處理Δ

9-THC 之下,我們發現到在 STAT1 knock out 的腫瘤,腫瘤生長的現象非常明顯

的被抑制了。因此從本實驗我們推論Δ9-THC 能透過 STAT1 來促進腫瘤的生長

(Figure 12)。根據以上的結果所述,我們的結論為Δ9-THC 能夠透過 STAT1 的調控來促進血管新生以及腫瘤的生長。

Figure 2. IHC 染色分析 AOM/DSS 大腸直腸癌小鼠及肺臟轉移小鼠組織 CB1 與 CB2 之表現量。左圖:利用 AOM/DSS 誘導小鼠產生大腸直腸癌,再對大腸組織切 片進行 IHC,可發現到大腸直腸癌組織與健康腸組織相比下 CB1 及 CB2 的表現量 較高。右圖:我們在大腸直腸癌的肺轉移模式中,對肺部組織切片進行 IHC,同樣 觀察到相較於健康肺泡組織,其 CB1 及 CB2 的表現量較高。

Figure 1. NCBI GEO 資料庫數據分析結果。左圖:將資料庫的數據加以整理可 發現到在大腸直腸癌中腫瘤組織及正常組織相比下腫瘤組織 CB1 及 CB2 的 mRNA 表現量皆較高。右圖:將資料庫的數據加以整理可發現到在兩類不同的 轉移型大腸直腸癌(Synchronous metastases、Metachronous metastases)中,兩 者 CB1 及 CB2 mRNA 的表現量相較於 primary tumor site 皆更為豐富。

10

Figure 3.不同濃度Δ9-THC 評估對大腸直腸癌腫瘤細胞存活率之影響。選用三株大 腸直腸癌細胞株(HCT116、SW480、RKO)在不同濃度下的Δ9-THC 來進行 MTT assay。我們觀察到在 5μM 及 10μM 的濃度下不影響到細胞株的 viability,且為臨 床治療的濃度,因此我們便選擇 5μM 及 10μM 的濃度來作為後續的實驗劑量。

Figure 4.不同濃度Δ9-THC 評估對大腸直腸癌腫瘤細胞爬行能力之影響。利用(A) transwell migration assay 及(B) wound healing assay 觀察到大腸直腸癌細胞在Δ9-THC 的誘導下會 dose-dependently 促進腫瘤細胞的爬行能力。

A

B

B A

C

B

A C

Figure 5. 利用 xenograft mouse model 觀察 Δ9-THC 對腫瘤生長的影響。(A) xenograft mouse model 及Δ9-THC 處理之 protocol。(B)Δ9-THC 處理下小鼠的飲食 及飲水皆增加。(C) Δ9-THC 處理使得腫瘤長得更大顆。

Figure 6. IHC 染色分析 Δ9-THC 在 xenograft mouse model 中對腫瘤血管新生的影 響。(A & B) Δ9-THC 的誘導下使得腫瘤組織中血管新生的 marker (CD31、VEGF) 表 現量增加。(C) 腫瘤組織的大小與腫瘤組織中 VEGF 的表現量呈顯著正相關性。

12 A B

C

A B

C

Figure 7. 利用 IVIS 觀察 Δ9-THC 在 CRC lung metastasis model 中 對腫瘤生長的影響。(A) CRC lung metastasis model 及Δ9-THC 處理之 protocol。(B) Δ9-THC 處理下小鼠 的 飲 食 及 飲 水 皆 增 加 。 (C) Δ

9-THC 處理 下造 成較大 的 tumor burden。

Figure 8. IHC 染色分析 Δ9-THC 在 CRC lung metastasis model 中對腫瘤血管新生的 影響。(A & B) Δ9-THC 的誘導下使得腫瘤組織中血管新生的 marker (CD31、VEGF) 表現量增加。(C) 腫瘤組織的大小與腫瘤組織中 VEGF 的表現量呈顯著正相關性。

A B

Figure 9. 觀察 Δ9-THC 處理下的 HCT116 CM 對 hiPSC-VEC 血管新 生及爬行的影響。(A) Δ9-THC 使得 HCT116 CM 促進 hiPSC-VEC 血 管新生的效果更顯著。(B) Δ9-THC 使得 HCT116 CM 促進 hiPSC-VEC 爬行的能力更顯著。

14 A

B

C D

Figure 10.透過分析 HCT116 CM、UCSC Genome Browser、CRC 之細胞實驗證實 STAT1 的變化。(A) Δ9-THC 使得 HCT116 CM 中的 growth factor 表現量增加(GDNF、

IGFBP6、IGF2、SCF、VEGFA)。(B)在 UCSC Genome Browser 中發現表現量增加的五 種 growth factor 之共同上游 transcription factor,其中包含 STAT 1。(C) 透過免疫螢光染 色觀察到Δ9-THC 能促進 HCT116 中 STAT 1 的入核。(D) 利用 ChIP assay 發現Δ9-THC 能促進 STAT1 接合到 promoters 上。

B A

A B

Figure 11.利用 STAT1antagonist(fludarabine)及 CRISPR/Cas9 knock out STAT1 觀Δ9-THC 處 理 下 HCT116 CM 中 growth factors 的 變 化 。 (A) STAT1 antagonist(fludarabine)造成Δ9-THC 誘導之五種 growth factors 表現量顯著下降。(B) CRISPR/Cas9 knock out STAT1 造成Δ9-THC 誘導之五種 growth factors 表現量顯著下 降。

Figure 12.利用 xenograft mouse model 觀察 Δ9-THC 對 STAT1 knock out 後腫瘤生 長的影響。(A)xenograft mouse model 及Δ9-THC 處理之 protocol。(B) STAT1knock out 後的腫瘤對於Δ9-THC 的誘導效果顯著下降。

16 STAT1 為一個 tumor suppressor,然而近年來也有更多的證據指出 SAT1 也可能 為一個 tumor promoter(19, 20)。儘管 STAT1-STAT1 homodimers 或 STAT1-STAT2 heterodimers 堆積在細胞核內具有使腫瘤細胞生長停滯及細胞凋亡的效果,但在 許多癌症中能夠觀察到異常的 STAT1 活化,包括乳癌、間皮瘤、頭頸癌、淋巴 癌等。在其他研究中更是看到腫瘤細胞中若表現更多 STAT1 和/或

phospho-STAT1 將導致較差的預後(21, 22)。在本次的研究中,我們則觀察到了Δ

9-THC 能透過調控 STAT1 的入核來促進大腸直腸癌細胞的生長及血管新生,而

在我們給予 STAT1 antagonist 下則觀察到Δ9-THC 對於腫瘤細胞的誘導效果便明 顯受到抑制,這表示了 STAT1 在Δ9-THC 對於腫瘤細胞的誘導效應中非常重要。

3.

結論

本研究發現到Δ9-THC 能透過調控 STAT1 的入核來促進大腸直腸癌細胞的 生長及血管新生。我們也能透過給予 STAT1 antagonist 來減少Δ9-THC 對於 growth factors 的誘導效果,便更進一步阻斷腫瘤細胞與內皮細胞間的交互作用。

我們的研究成果能夠建議臨床上在使用大麻類藥物時若能併用 STAT1 antagonist,

則可減少掉大麻類藥物造成腫瘤生長以及血管新生的負面效果。

18

參考文獻

1. C. Bakshi, A. M. Barrett, Impact of recreational and medicinal marijuana on surgical patients: A review. Am J Surg217, 783-786 (2019).

2. M.-T. Samson et al., Differential Roles of CB1 and CB2 Cannabinoid Receptors in Mast Cells. The Journal of Immunology170, 4953-4962 (2003).

3. J. L. Kramer, Medical marijuana for cancer. CA Cancer J Clin65, 109-122 (2015).

4. G. Thomas, R. A. Kloner, S. Rezkalla, Adverse cardiovascular,

cerebrovascular, and peripheral vascular effects of marijuana inhalation: what cardiologists need to know. Am J Cardiol113, 187-190 (2014).

5. S. A. Pergam et al., Cannabis use among patients at a comprehensive cancer center in a state with legalized medicinal and recreational use. Cancer123, 4488-4497 (2017).

6. S. L. Calcaterra et al., A population-based survey to assess the association between cannabis and quality of life among colorectal cancer survivors. BMC

Cancer20, 373 (2020).

7. G. Turu, L. Hunyady, Signal transduction of the CB1 cannabinoid receptor. J

Mol Endocrinol44, 75-85 (2010).

8. M. Bifulco, V. Di Marzo, Targeting the endocannabinoid system in cancer therapy: a call for further research. Nat Med8, 547-550 (2002).

9. I. Wilmut, The first direct reprogramming of adult human fibroblasts. Cell

Stem Cell1, 593-594 (2007).

10. K. Takahashi et al., Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell131, 861-872 (2007).

11. S. Jang, A. Collin de l'Hortet, A. Soto-Gutierrez, Induced Pluripotent Stem

Cell-Derived Endothelial Cells: Overview, Current Advances, Applications, and Future Directions. Am J Pathol189, 502-512 (2019).

12. M. Ghasemiesfe, B. Barrow, S. Leonard, S. Keyhani, D. Korenstein, Association Between Marijuana Use and Risk of Cancer: A Systematic Review and Meta-analysis. JAMA Netw Open2, e1916318-e1916318 (2019).

13. K. M. Kampa-Schittenhelm et al., Dronabinol has preferential antileukemic activity in acute lymphoblastic and myeloid leukemia with lymphoid differentiation patterns. BMC Cancer16, 25-25 (2016).

14. A. Greenhough, H. A. Patsos, A. C. Williams, C. Paraskeva, The cannabinoid delta(9)-tetrahydrocannabinol inhibits RAS-MAPK and PI3K-AKT survival signalling and induces BAD-mediated apoptosis in colorectal cancer cells. Int

J Cancer121, 2172-2180 (2007).

15. A. Preet, R. K. Ganju, J. E. Groopman, Delta9-Tetrahydrocannabinol inhibits epithelial growth factor-induced lung cancer cell migration in vitro as well as its growth and metastasis in vivo. Oncogene27, 339-346 (2008).

16. R. J. McKallip, M. Nagarkatti, P. S. Nagarkatti, Delta-9-tetrahydrocannabinol enhances breast cancer growth and metastasis by suppression of the antitumor immune response. J Immunol174, 3281-3289 (2005).

17. C. Liu et al., Cannabinoids promote progression of HPV positive head and neck squamous cell carcinoma via p38 MAPK activation. Clin Cancer Res 10.1158/1078-0432.CCR-18-3301, clincanres.3301.2018 (2020).

18. L. Lamalice, F. Le Boeuf, J. Huot, Endothelial cell migration during angiogenesis. Circ Res100, 782-794 (2007).

19. N. N. Khodarev, B. Roizman, R. R. Weichselbaum, Molecular pathways:

interferon/stat1 pathway: role in the tumor resistance to genotoxic stress and aggressive growth. Clin Cancer Res18, 3015-3021 (2012).

20

20. K. Meissl, S. Macho-Maschler, M. Müller, B. Strobl, The good and the bad faces of STAT1 in solid tumours. Cytokine89, 12-20 (2017).

21. N. Khodarev et al., Cooperativity of the MUC1 oncoprotein and STAT1

pathway in poor prognosis human breast cancer. Oncogene29, 920-929 (2010).

22. M. A. Zimmerman et al., Unphosphorylated STAT1 promotes sarcoma development through repressing expression of Fas and bad and conferring apoptotic resistance. Cancer Res72, 4724-4732 (2012).

研究相關發表

1.

期刊論文:本研究成果目前已經撰寫成 manuscript 進行投稿 (Cannabinoids orchestrate cross-talk between cancer cells and endothelial cells in colorectal cancer, Manuscript under revision,共同作者。

2. 研討會論文:大麻相關研究成果於 2020 年 11 月 8 日由「台灣藥學會/台灣 臨床藥學會」舉辦的『第二屆台灣藥學聯合學術研討年會』獲選口頭報告 (口頭報告編號:#0131),報告人:林文嵃。

3. 科普文章:於「台大景福醫訊」發表參與『第二屆台灣藥學聯合學術研討

3. 科普文章:於「台大景福醫訊」發表參與『第二屆台灣藥學聯合學術研討

在文檔中 以細胞及動物模型探討 (頁 13-27)

相關文件