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任务二 培养基的制作与灭菌

在文檔中 实践教学项目实施方案 (頁 43-54)

一、实验目的:

1. 了解常用培养基的组成成分与特点;

2. 能根据培养的要求配制出适宜的培养基;

3. 掌握培养基灭菌的操作方法。

二、实验原理:

培养基的成分及其供应状况直接关系到培养物的生长与分化,因此了解培养 基的组成成分和特点显得尤为重要。目前所使用的培养基有10 余种之多,大部 分都是在前人研究的基础上经过分析综合和改进而成的。培养基含有植物细胞生 长所必需的各类营养物质,同时也是各种细菌、真菌滋生繁殖的极好场所。因此 必须对培养基进行灭菌处理,以确保无菌操作的顺利进行。

评分标准(满分 100 分)

序号 考核内容

正确熟练 正确不熟练 在指导下完

不能完成

得分

1 各母液配制配方 40 35 25 10

2 母液配制方法 40 35 25 10

3 作业与实训报告完成

情况 20(优) 15(良) 12(合格) 6(不合格)

总 分

优秀:>90 分 良好:81-89 分 中等:71-80 分 合格:60-70 分 不合格:<60 分

三、实验器材及试剂:

【实验药品和试剂】

蔗糖、琼脂、活性炭、1mol/L HCl,1mol/L NaOH;6-BA、NAA、2,4-D 等植 物激素母液及 MS 基本培养基母液。

【实验仪器及用具】

电子天平、烧杯(1000mL, 500mL, 100mL, 50mL)、量筒(1000mL,500mL, 100mL, 50mL)、药勺、称量纸、玻璃棒、移液枪(5mL, 1mL,0.2mL)、电炉

(1000W)、石棉网、标签纸、记号笔、培养瓶、酸度计或 pH 试纸(5.0~9.0)、

冰箱、卧式电压力蒸汽灭菌锅。

四、实验步骤:

(1)根据培养基的配方计算取用量 生姜试管苗增殖培养基:

MS+6-BA1.0 mg/L+NAA0.1 mg/L+ 3%蔗糖+ 0.8%琼脂条(pH5.8),已知各种母 液浓度如下表所示:

试计算配制 1L 生姜试管苗增殖培养基,所需各种母液的用量,蔗糖和琼脂 条各称取多少克?(完成上述表格)

(2)培养基的配制过程

①加水、琼脂及蔗糖:取 1000mL 烧杯一个,倒入 800mL 左右的蒸馏水,将 预先准备好的琼脂倒入烧杯中,将烧杯置于电炉上或微波炉内加热,待琼脂完全 溶化后,加入蔗糖,充分溶解。

注意:在加热琼脂过程中,操作者千万不能离开,否则沸腾的琼脂外溢,就 需要重新称量、制备。此外要注意大烧杯底的外表面不能沾水,否则加热时烧杯 容易炸裂,使溶液外溢,造成烫伤。

母液名称 母液浓度 浓缩倍数 1000mL 培养基吸取量

大量元素 20

微量元素 1000

有机成分 100

铁盐 100

NAA 0.2 mg/mL 6-BA 0.5 mg/mL

②取母液:根据计算结果,将所需的各种母液按顺序放好,将洁净的各种玻 璃器皿等放在指定位置。取 100mL 烧杯一个,用量筒量取大量元素母液,然后用 各母液专用移液枪分别吸取微量元素母液,有机成分母液、铁盐母液和生长物质 母液,置于烧杯中备用。

注意:各种母液的枪头不要混用,以免污染药品。

③培养基定容:将准备好的各种母液混合液缓慢倒入 1000mL 的烧杯(已溶 解了蔗糖和琼脂)中,用蒸馏水将装过母液混合液的烧杯洗三遍,一并倒入烧杯 中,并用玻棒不停搅拌,使其充分混匀。加蒸馏水定容到 1000mL。

④ 调 节 pH 值 : 用 1mol/L HCl 或 1mol/L NaOH 将 培 养 基 pH 值 调 节 至 5.8~6.0。用酸碱调节 pH 值时,应用玻璃棒不断搅拌后,再用 pH 试纸或 pH 计测 试培养基的 pH 值。

注意:1mol/L HCL 配制:用量筒量取 8.3mL 配成 100mL 溶液。

1mol/L NaOH 配制:称取 NaOH 4g 配成 100mL 溶液。

⑤分装:溶化的培养基应该趁热分装,每瓶大约 40~50mL(1/4~1/3),盖 上盖子,贴上标签。用记号笔注明培养基名称、配制时间及配制者姓名,待灭菌 用。

注意:倒入培养基时要注意不要将培养液沾在瓶口,以免让杂菌顺培养液侵 入瓶内。

(3)培养基的灭菌:(灭菌条件:121℃,20-25 分钟)

①检查灭菌锅内水位,水量过少时应添加适量水。把分装好的培养基及其他 需灭菌的各种器具和蒸馏水放入灭菌锅的消毒桶内。

②拧紧锅盖控制阀,注意最好是呈对角线拧紧。然后关闭放气阀,打开电源,

设置好温度和时间参数,按启动键开始加热。

③当高压锅的温度达 121℃,压力为 0.105MPa 时,保持此压力15~30 分钟进 行灭菌。

④灭菌时间结束后,切断电源,让灭菌锅内温度自然下降,待灭菌锅压力表 指针降到 0 时,打开排气阀,旋松控制阀,开启锅盖,取出已灭菌的培养基。

刚灭过菌的培养基成液体状,取出时不要用力摇动,否则会导致部分培养基 沾附在瓶壁。放置在水平桌面上自然冷却。在室温下放置 3 天,观察有无微生物 生长,以确定培养基是否彻底灭菌。经检查没有杂菌生长的方可使用。

要求:每人准备培养基 5 瓶。

注意:①锅内冷空气必须排尽,否则压力表指针虽达到一定压力,但由于锅 内冷空气的存在事实上达不到应有的温度,因而影响灭菌效果。

②当达到一定压力后,注意在保持压力过程中,严格遵守灭菌时间,时间过 长会使一些化学物质遭到破坏,影响培养基成分,时间短则达不到灭菌效果。

③培养瓶中的液体不超过总体积的 50%,否则当温度超过 100℃时,培养基 会喷溢,造成培养瓶壁和瓶盖的污染。

④消毒后的培养基不能立即用于接种,而应放置 24-72h。放置后如果培养 基中没有出现菌落,则说明培养基是无菌的,才可以用于接种。

⑤做好的培养基一般应在 1-2 周内用完,短时间可存放于室温条件,如不能 尽快用完,应放在 4℃条件下。

【练习与思考】

培养基配制过程中应注意哪些问题?培养基为什么要煮沸后再分装?

五、考核评价

任务三植物外植体初代培养 一、实验目的

1.掌握初代培养的关键技术。

2.学会进行外植体的选择和接种。

3.熟悉外植体初代培养过程中易出现的问题,并学会分析和解决这些问题。

评分标准(满分 100 分)

序号 考核内容

正确熟练 正确不熟

在指导下

完成 不能完成

得分

1 各母液配制配方 40 35 25 10

2 母液配制方法 40 35 25 10

3 作业与实训报告完成情况 20(优) 15(良) 12(合格) 6(不合格)

总 分

优秀:>90 分 良好:81-89 分 中等:71-80 分 合格:60-70 分 不合格:<60 分

二、实验仪器

1.电子天平(感量为 0.0001g)、烧杯、接种瓶、容量瓶、试剂瓶、药勺、

玻璃棒、电炉、石棉网、称量纸、滴管、冰箱、超净工作台、接种器械、pH 试 纸

2.母液(大量元素、微量元素。铁盐、有机成分)、激素 6-BA、NAA、

2,4-D、升汞(0.1%)、蒸馏水、活性炭、琼脂粉、酒精(75%和 95%).

三、内容说明

(一)外植体选择

1.材料易得且遗传稳定。

2.再生能力强。

3.容易灭菌。

4.外植体的大小。材料越小,成活率越低,除非用于脱毒,否则不宜将外植 体切得太小。

(二)外植体增殖方式

1.从生芽增殖/直接器官途径。

2.不定芽增殖/间接器官途径。

3.原球茎增殖。

4.胚状体增殖。

四、操作步骤(以薄荷为例)

(1)无菌操作前 30min,首先用 70%酒精棉擦拭超净工作台,然后把接种器 具和培养基等移入接种室,并用 70%酒精喷洒,开启超净工作台和接种室内的紫 外灯照射 20~30min 后,再开启工作台气流 20~30min;

(2)接种员先洗净双手,在缓冲间换好专用实验服,并用 75%酒精喷洒全 身。

(3)进入无菌操作室,检查接种所用的各种器具和物品是否齐全。

(4)接种前,用酒精棉球擦拭双手,然后在酒精灯火焰附近进行各项操作,

操作时动作要轻捷。组培过程中,将消毒的薄荷茎段放到初代诱导培养基上进行 培养,约 7d 后茎段芽开。

五、作业及思考 1.完成实训报告。

2.外植体初代培养中易发生的污染有哪些?

2,4-D、升汞(0.1%)、蒸馏水、活性炭、琼脂粉、酒精(75%和 95%).

增殖培养基:

MS +NAA1.0mg/ L+3%蔗糖+6%琼脂 MS +IAA2.0mg/L+3%蔗糖+6%琼脂 三、内容说明

四、操作步骤

接着初代培养后操作,诱导培养 15d 后将已长出的无菌苗剪成 1—1.5cm 的 茎段接种到增殖培养基中,一星期以后丛生芽较多且生长健壮旺盛。

五、培养条件

本次实验的培养条件为:培养基 pH:5.8;培养温度:(25 士)2℃;光照:

10~12 小时,光照度 2000 lx。在培养基条件适宜的基础上,影响试管苗生长的 主要因素有温度、光照、湿度、氧气、培养基的渗透压及 pH 值等。1.温度植物 组织培养中,大多数植物最适温度为 25±2℃。低于 15℃时,培养的组织生长停 顿,高于 35℃对生长也不利。因此,培养室应安装空调机或其他的控温设备。

视植物生态习性采用变温培养。2.光照光照对植物生长发育有重要作用,是离体 培养中非常重要的环境因素。光照强度、光质以及光周期,对细胞的增殖、器官 的分化都有很大影响。①光照强度,从目前的研究情况看,光照强度对外植体、

细胞的最初分裂增殖和器官的分化有重要影响。一般来说,光照强度较强,幼苗 生长的粗壮,而光照强度较弱幼苗容易徒长。除特殊要求外,一般都采用日光灯 作光源,光照强度 3000~4000Lx 左右。光质对愈伤组织诱导、培养组织的增殖以 及器官的分化都有明显的影响。3.湿度湿度的影响包括培养容器和环境的湿度条 件。培养初期,培养瓶内相对湿度通常是 100%,主要受培养基水分含量和封口 材料的影响。前者又受琼脂含量的影响。在冬季应适当减少琼脂用量,否则,将 使培养基干硬,不利于外植体接触或插进培养基,导致生长发育受阻。环境的相 对湿度可以影响培养基的水分蒸发,一般要求 70~80%的相对湿度,常用加湿器 或经常洒水的方式来调节湿度。湿度过低会使培养基丧失大量水分,导致培养基 的各种成成分浓度的改变和渗透压的升高,进而影响组织培养的正常进行;湿度 过高时,易导致杂菌滋生,大量污染。4.pH 值 pH值适度因植物材料而异,不同 的材料对培养基最适 pH值的要求也是不同的,大多在 5.0~6.5 左右,一般培 养基 pH值皆掌握在 5.8 左右,这基本能适应大多数植物培养的需要。

5. 氧气离体培养的试管苗是需要氧气的,因此,接种时要有部分组织与空 气接触。振荡培养是解决液体培养通气的良好办法。固体培养中,如瓶塞不透气,

培养物也不能(很好)生长,要选择通气性好的培养瓶盖,增加可利用的氧气。

培养室要经常换气,改善室内的通气状况。一般来说当 pH值高于 6.5 时,培养

培养室要经常换气,改善室内的通气状况。一般来说当 pH值高于 6.5 时,培养

在文檔中 实践教学项目实施方案 (頁 43-54)

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