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差動共焦顯微術

在文檔中 聲頻調變顯微鏡的發展 (頁 14-20)

第二章 實驗理論

2.2 差動共焦顯微術

[2.10]、原子力顯微術(Atomic force microscopy, AFM)[2.11]與近場 掃描光學顯微術(Near-field scanning optical microscopy, NSOM)[2.12]

等,同樣都是閉迴路系統,所以對測量及顯像的速度都會造成限制。

為了達到快速測量及顯像的目的,除了更進步的電子技術及快速 精密位移儀器來提高閉迴路的反應速度之外,只有採用開迴路

(Open-loop)的偵測方法。但是要開迴路的偵測系統達到毫微米的 解析度,卻有兩項困難需求:

(1) 在開迴路的操作下,系統對高度的反應必須極為敏感。簡而言 之,系統要能直接、正確放大物體微小高度變化所造成的訊號差,而 不像閉迴路系統,需要依靠回授訊號來換算高度變化。

(2) 系統必須提供足夠的動態範圍(Dynamic range)。由於在開迴 路的偵測系統中並沒有鎖定物體高度的機制,如果沒有足夠的動態範 圍,對表面高度變化量過大的樣本就無法提供正確的測量結果。因為 這兩個主要的條件不容易同時達成,造成開迴路的毫微米解析度量測 技術比較少見。

差動共焦顯微術(Differential confocal microscopy)[2.13],正是 同時具有高解析度及大動態範圍的開迴路掃描顯微技術。這技術本身 是利用共焦顯微術縱向反應曲線的線性區,來同時達成我們所需要的 要求,如圖 2-2 所標示。

圖 2-2 共焦顯微術的縱向反應曲線及線性區[2.14]

在 1982 年,D. K. Hamilton 與 T. Wilson 發表以共焦顯微術來呈 現物體表面高度的三度空間掃描技術[2.15],利用共焦顯微術縱向反 應曲線的極大值來定位物體表面高度。簡而言之,因為縱向反應曲線 的極大值在空間中所對應的高度正是聚焦物鏡的焦平面,所以只要在 掃描物體表面的同時,保持表面與聚焦物鏡鏡頭之間的距離與物鏡的 工作距離相等,在掃描的時侯記錄物體或物鏡移動的高度,就可以得 知表面三度空間的高度變化。

由縱向反應曲線可以得知,在縱向反應曲線極大值的附近,曲線 的斜率都接近零,也就是說訊號大小的變化對物體表面高度不敏感,

因此限制了縱向解析度。換句話說,如果將樣本表面移開物鏡的焦平 面,利用縱向反應曲線斜率最大的線性區來偵測訊號的變化,由圖 2-3 可以看出,樣本微小的高度差異就能夠導致訊號產生很大的變 化,因此縱向解析度能夠大幅的提高,達到毫微米的精準度,而在線 性區進行偵測,動態範圍幾乎能夠包涵由 sinc2(u/2)函僂的極大值到 第一零點的距離,亦即由u =0到u =2π

圖 2-3 縱向反應曲線線性區訊號變化

共焦反應曲線的線性區對高度變化很敏感的性質,類似電路學中

「差動放大器」的槪念,當輸入訊號的直流成分為零時,差動放大器

工作在線性區。在線性區中,輸入-輸出轉換曲線有很大的斜率,因 此輸入微小的訊號就會被差動放大器有效率的放大。共焦顯微術利用 縱向反應曲線線性區放大物體表面微小高度差的槪念,和差動放大器 利用輸入-輸出轉換曲線放大微小電訊號的原理十分相同,所以此技 術被叫做「差動共焦顯微術」。

因為差動共焦顯微術在開迴路操作下具有很高的縱向解析度與 大的動態範圍,在即時顯像的毫微米顯微技術上有很大的潛力。再加 上差動共焦顯微術的非接觸性、非侵入性的特點,非常適合用來觀察 液體或生物胞表面微小的動態行為。由於差動共焦顯微術不依賴光的 干涉來達成高解析度,因此在訊號光源與激發光源完全不同調性的情 形下,差動共焦顯微術的高縱向解析度與大動態範圍仍然存在,使得 差動共焦顯微術可以配合螢光顯微術,選擇性地的探測生物細胞中特 定物質的縱向運動等……,這是 STM 或 AFM 等非光學顯微技術無 法達成的。

Reference

[2.1] Joseph R. Lakowicz, “Principles of fluorescence spectroscopy 2nd edition” KA/PP (1999).

[2.2] Z. Gaviola, Z. Phys. 42, 833 (1926),

[2.3] Gratton E., “The measurement and analysis of heterogeneous emissions by multifrequency phase and modulation fluorometry” ,

Appl. Spectrosc. Rev. 20(1) 55 (1984).

[2.4] Gratton E., “Multifrequency phase and modulation fluorometry” ,

Annu. Rev. Biophys. Bioeng. 13, 105 (1984).

[2.5] Bright F. V. et al., “Advances in multifrequency phase and modulation fluorescence analysis” , Anal. Chem. 21, 389 (1990).

[2.6] Lakowicz J. R., “Frequency-domain fluorometry for resolution of time-dependent fluorescence emission” , Spectrosc. 1, 28 (1985).

[2.7] Rabinovich et al., “A compact, LED-based phase fluorimeter -detection system for chemical and biosensor arrays” , Proc,

SPIE3258, 2 (1998).

[2.8] Hui-Hui Zeng et al., “Real-time determination of picomolar free Cu(II) in seawater using a fluorescence-based fiber optical

biosensor” , Anal. Chem. 75, 6807 (2003).

[2.9] Lakowicz J. R. et al., “Frequency-domain fluorescence spectroscopy” , Plenum Press, New York (1991).

[2.10] J. A. Golovchenko, “The tunneling microscope: a new look at the atomic world” , Science 232, 48 (1994).

[2.11] G. Binnig, C. F. Quate, and Ch. Gerber, “Atomic force microscope”

, Phys. Rev. Lett. 12, 930 (1986).

[2.12] E. Betzig and J. K. Trautman, “Near-field optics: microscopy, spectroscopy, and surface modification beyond the diffraction

limit”, Science 257, 189 (1992).

[2.13] 李超煌, “差動共焦顯微術及其應用” 國立台灣大學電機工程 學研究所博士論文, 民國 86 年.

[2.14] Chau-Hwang Lee, Jyhpyng Wang and Chin-Lin Guo, “Nanometer imaging by differential confocal microscopy and its applications in biology” , Opt. Lett. 23 (1998).

[2.15] D. K. Hamilton and T. Wilson. “Three-dimensional surface

measurement using the confocal scanning microscope” , Appl. Phys.

B 27, 211 (1982).

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