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第二章 研究背景與文獻回顧

2.3 離心分配層析 (centrifugal partition chromatography, CPC)

2.3.4 影響固定相滯留量的因素

在離心分配層析中,液體固定相在管柱中滯留的多寡影響了分離 的效率,在較高的固定相滯留量下可提高對樣品的承載量和分離的解 析度。影響固定相滯留量及分離的效率的因素分為下列幾點[23]:

(a) 溶劑系統:在選擇適當的溶劑系統時必頇考慮溶劑極性、對溶質 的選擇性以及溶質在不同溶劑中的溶解度。一般而言,分析物在 兩相溶劑間最佳的分配係數 KD需在 0.2 ~ 5 之間,才能獲得較佳的

分離效果。但在二元的溶劑系統中,KD值要落在此範圍不容易,

因此,常藉由加入第三種甚至第四種可溶於原先兩者的溶劑,用 來調和原先溶劑在極性或是界面張力的差異。然後依 KD來判斷分

19

離結果,並決定移動和固定相。

(b) 儀器轉速:在較高的轉速下,固定相越容易滯留在管柱中,且因 為轉動速度大,離心力也較大,因此還可以加速移動相與固定相 的分層,這兩個結果均可提供較高的固定相滯留量,在有關於離 心分配層析分離效果的研究中,若可以得到固定相滯留量越大,

解析度也較佳,所以在 CPC 機械結構可以承受的轉速之下,轉動 速度越快,分離效果越好。

(c) 移動相流速:當移動相流速越快時,越容易將固定相推出管柱,

因此固定相的滯留量會比較低。反之移動相流速若較慢,會達到 較佳的固定相滯留量,且可提高分離解析度,但相對地分離時間 會變長。

2.3.5 離心分配層析儀的應用 因為 CPC 的固定相與一般填充管柱相比,能有較大的固定相體 積,且具有放大特性,所以在 CPC 的研究以天然物製備分離為主流 [24],而在對於化學品的純化分離方面研究亦不在少數。近年來也有 學者將 CPC 與鏡像選擇物結合,應用在分離鏡像異構物的分子[25],

或是蛋白質的純化[26],最後也都成功將其分離。

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第三章 實驗 3.1 實驗樣品和溶劑

(1) 洋蔥

購自 愛買 量販店的美國紅洋蔥。

(2) 溶劑

Deionized water, purified from Milli-Q plus, (Bedford, MA, USA) Ethanol, 99.5%, (景明化工股份有限公司)

Formic acid, 98% up, (ACROS, Geel, Belgium, USA)

Tetrahydrofuran, HPLC/Spectro grade, 99.8% (TEDIA, Fairfield, OH, USA )

n-Hexane, HPLC grade, 95%,(景明化工股份有限公司)

Methyl t-Butyl Ether (MTBE), HPLC grade, 99.8%, (TEDIA, Fairfield, OH, USA)

Acetonitrile (ACN), HPLC grade, 99.9%, (TEDIA, Fairfield, OH, USA)

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3.2 實驗儀器

(1) 離心分配層析儀

CPC 是由 Sanki (Tokyo, Japan)所生產,型號是 CPC 240,內部主 體由 12 個 disks 所構成,包含 2136 個 channels,最高可耐壓為 6.2×106 N/m2 (900 psi),管柱總容積大約 240 毫升,此儀器的轉速可以控制在 0 - 2000 rpm。藉由轉動外部控制閥,就可輕易選擇上升模式或下降 模式的操作模式。

(2) 往覆式幫浦

此幫浦為 Series II Digital HPLC pump ,流速可由 0.01 mL/min - 9.99 mL/min,購買自 Pharma-Tech Research Company (Baltimore, MD, USA)。

(3) 高效能液相層析管柱

由 Polymer Laboratories 製造的 PLRP-S column (250 mm × 4.6 mm, 15 μm),屬於 reverse phase column。

(4) 紫外光-可見光偵測器(UV-Visible Detector)

型 號 為 Bio-Rad Model 1801 UV-Visible detector (Bio-Rad, Hercules, CA, USA),偵測器外部與個人電腦連接,利用色層分析儀 數據處理系統(訊華公司,台北市)擇取實驗訊號。

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(5) 紫外光-可見光譜儀(UV-Visible Spectrophotometer) Hewlett Packard 8453, (Waldronn, Germany)。

(6) 離心機

型號為 EBA20 (Hettich, Germany),最大轉速 6000 rpm,最大離 心力為 3421 g。

(7) 迴旋減壓蒸餾器

廠牌為 Buchi (Switzerland),型號是 R-114。

(8) 分管收集器

廠牌為 Advantec (Tokyo, Japan),型號是 CHF1215A。

(9) ESI-MS

廠牌為 Micromass (Manchester, England),型號是 Quattro Micro,

主要使用分子量小於 2000 電灑游離法質譜。

(10) 果汁機

廠牌為 Gibson,型號是 GSN-6060G。

23

24

25

26

(6) 第二次平衡後,開啟 UV-Vis 偵測器(370 nm),並等待訊號穩定。

(7) 注入洋蔥樣品溶液 5 mL,首先以上層相當移動相來沖提, 上升 模式,時間為 30 分鐘,並在樣品注入的同時紀錄層析訊號。

(8) 上層相沖堤 30 分鐘後,切換以中層相沖堤當移動相,上升模式,

時間 50 分鐘,持續記錄層析訊號。

(9) 最後,切換到下層相沖堤當移動相,並轉換為下降模式,時間 120 分鐘,記錄層析訊號。

(10) 每 1 分鐘收集一管,即每管中含有 1.2 mL 的樣品液。

(11) 實驗完成後,CPC 停止轉動,用氮氣將管柱內的液體吹出並收 集,紀錄有機相和水相的體積,上層有機相(移動相)的體積與總體積 相除就是固定相滯留率。

(12) 在 CPC 停止轉動的情況下,先以 300 mL 甲醇沖洗管柱,再以 300 mL 去離子水清洗,未流出之去離子水保存在 CPC 中。

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圖3-1、CPC實驗儀器裝置

包含了梯度幫浦、CPC 儀器、紫外光偵測器、以及分管收集器。

圖3-2、三相溶劑系統示意圖

3.3.6 HPLC 分析收集液實驗步驟

HPLC 實驗儀器裝置如圖 3-3 所示

(1) 每支收集管先用迴旋減壓蒸餾裝置把溶劑抽乾,再加入 1 mL 的 HPLC 沖堤的移動相溶解樣品,選擇用此移動相來溶解樣品,可避免 掉因為溶劑不同而產生的背景干擾訊號。

上層相 中層相 下層相

Hexane / MTBE / ACN / H2O 體積比 ( 2 : 2 : 3 : 3 )

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(2) 使用 reversed phase HPLC 系統,先以純的 Acetonitrile 清洗管柱,

再用 solvent A [Tetrahydrofuran:0.1%(v/v) formic acid = 20:80 (v/v)]

當移動相沖堤管柱。

(3) 開啟 UV-Vis 偵測器,偵測波長設定在 370 nm,並等待訊號穩定。

(4) 注入洋蔥樣品溶液於六向閥的 20 μL sample loop 中,並將六向閥 由 inject 調至 load 的同時紀錄層析訊號。

圖3-3、HPLC實驗儀器裝置

包含了梯度幫浦、HPLC 管柱、紫外光偵測器。

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第四章 結果與討論 4.1 乙醇萃取洋蔥的濃度選擇

在進入 HPLC 與 CPC 分析之前,嘗試利用 300 mL 不同濃度的乙 醇水溶液(40%、60%、80%,v/v)做萃取。研究中,想分離出洋蔥中 的類黃酮成分,而在 60%的乙醇中所能萃取到的類黃酮成分較多,

最後選用其為萃取條件。

4.2 以 HPLC 分析洋蔥萃取出的黏稠物 4.2.1 HPLC 移動相的選擇

實驗中以依序分別為(A)、(B)三組不同的溶劑系統(表 4-1)分別當 為 HPLC 移動相,圖 4-1、上圖中,滯留時間在 2~5 min 之間的吸收 峰,以及下圖中,滯留時間在 4~8 min 之間的吸收峰,所屬的混合物 是極性較小的物質,波峰的解析度不佳,所含的物質較為複雜,所以 並沒收集鑑定之;而 peak a 與 peak b 兩波峰解析度較佳,並猜測可 能為類黃酮物質,於收集之後做 ESI-MS 鑑定分析,最後分析結果並 未發現另兩黃酮化合物。圖 4-1 層析圖譜結果顯示(B)組的溶劑系統 有較佳的解析度,故本實驗最後選用移動相 [Tetrahydrofuran:0.1%

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(v/v) formic acid = 20:80 (v/v)]為 HPLC 移動相條件。

表4-1、HPLC移動相

Tetrahydrofuran 0.1%(v/v) formic acid

(A) 25 75

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4.2.2 HPLC 分析結果

我們將洋蔥的萃取物,利用 HPLC 分離,流速 0.5 mL/min,可 以在 40 分鐘內,以波長 370 nm 的 UV-vis 偵測器偵測,得到層析圖(圖 4-1 下圖),其將層析圖中兩波峰標記依序為 a 和 b,其依序的滯留時 間為 20.9 min 和 25.4 min,經由收集後以 ESI-MS 偵測之。

4.3 以質譜鑑定洋蔥成分的結構

藉由 HPLC 分離並收集 a、b 兩個目標物,分別收集後,再用減 壓迴旋蒸餾將溶劑抽乾,然後進一步由 ESI-MS 正電荷做結構鑑定,

此儀器是選用低解析度的模式,準確值到整數位。

4.3.1 以質譜鑑定 peak a 結構

經由 ESI-MS 正電荷分析結果(圖 4-2)可由圖中發現,〔M+H〕+ 為 627.1 m/z 的訊號,是加一個質子的離子訊號。465.1 m/z 是(〔M+H〕

+ -glucoside)失去一個葡萄糖苷基的訊號;而在 303.1 m/z 則是(〔M+H〕

+-glucoside-glucoside )失去兩個葡萄糖苷基的訊號,因此可知 peak a 主成分是 Quercetin-3,4-di-O-glucoside (Q3,4G)。

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4.3.2 以質譜鑑定 peak b 結構

由 ESI-MS 正電荷分析結果(圖 4-3)可由圖中發現,〔M+H〕+ 為 465.1 m/z 的訊號,是加一個質子的離子訊號。而 303.1 m/z 是(〔M+H〕

+-glucoside)失去一個葡萄糖苷基的訊號,因此可知 peak b 主成分為 Quercetin-4-O-glucoside (Q4G)。

圖4-2、peak a 測ESI-MS正電荷質譜圖

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圖 4-3、peak b 測 ESI-MS 正電荷質譜圖

4.4 離心分配層析儀製備分離的實驗結果

4.4.1 配製不同的溶劑系統

一開始嘗試利用下列五組兩相溶劑系統(表 3-1),針對洋蔥中兩 種類黃酮分析物以 HPLC 的波峰面積計算其分配係數,結果顯示兩分 析物皆傾向分佈在下層相,分佈情況不理想,所以此五組溶劑系統不 適合應用在 CPC 分離本實驗的洋蔥萃取物。

根據文獻[16;17]的研究,並開始嘗試三相系統的可行性。由文 獻得知,不同的溶劑比例,可使得分析物在各層中的分佈情況會有所 不同。故本實驗首先針對此三相溶劑系統,改變成分溶劑比例,來得

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35 ethyl acetate / butanol / water

(2/1/4)(v/v) 0.15 --

ethyl acetate / butanol / water

(2/2/4) (v/v) 0.13 --

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根據文獻[11]應用在逆流層析儀中的研究,並開始針對三相系統 結合離心分配層析儀的可行性。過程中首先,針對(Hexane / Methyl tert-butyl ether / Acetonitrile / Water)的三相溶劑系統,改變各成分溶劑

的 比 例 ,來 得到平 衡 後 的上 、中、 下 層 相的 體積比 , 上 層相 為 Hexane-rich,中層相為 Acetonitrile-rich,下層相則是 Water-rich。

4.4.3 三相系統結合離心分配層析儀沖堤時間的選擇

實驗過程中,首先以上層相做沖堤,接著以中層相沖堤,最後再 轉換為下層相做逆沖堤,所以各層相沖堤時間不同也是可能是影響分 析物是否可以被分離出來的因素之一。圖 4-4 中,沖堤時間為上層相 首先沖堤 30 分鐘,沖堤模式為上升法,接著中層相沖堤 40 分鐘,最 後以下層相轉為下降模式沖堤 50 分鐘,可以觀察到在 80 分鐘左右,

兩層析峰重疊區域太多,造成解析度太差,判斷為分析物在溶劑系統 中,沒有足夠的時間來分離開;而將中層相時間延長為 50 分鐘(圖 4-5),結果發現在 80 分鐘處的 peak,明顯比圖 4-4 中的 peak 解析度 還要更佳,所以中層相(移動相)的適當的分離時間可直接影響 80 分 鐘處吸收峰的解析度。在 70 分鐘一個直線型的落差(spike)所造成的 因素是,當上升模式切換到下降模式時所造成的訊號。最後選擇上層

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min

相沖堤時間 30 分鐘,中層相沖堤時間 50 分鐘,下層相沖堤時間 120 分鐘做為本實驗三相系統的最佳化分析時間 (圖 4-5)。

圖4-4、以CPC來分離洋蔥萃取物,Hexane / Methyl tert-butyl ether / Acetonitrile / Water = 2:2:3:3 (v/v),沖堤時間30-40-50 min

(上-中-下層)

圖4-5、以CPC來分離洋蔥萃取物,Hexane / Methyl tert-butyl ether / Acetonitrile / Water = 2:2:3:3 (v/v),沖堤時間30-50-120 min

(上-中-下層)

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圖4-6、以CPC來分離洋蔥萃取物,Hexane / Methyl tert-butyl ether / Acetonitrile / Water = 2:2:3:2 (v/v),沖堤時間30-50-120 min

(上-中-下層)

mAU

min

39

40

4.4.6 三相系統結合離心分配層析法的分離結果 實驗參數如表 4-4 所示。

經由上述實驗參數進行 CPC 分離,所得到的結果(圖 4-5),可看 到存在 I、II、III、IV 四個波峰,使用分管收集器收集這四個波峰,

波峰 I 收集 74-82 分鐘,波峰 II 收集 92-99 分鐘,波峰 III 收集 112-124 分鐘,波峰 IV 收集 133-145 分鐘。圖譜(圖 4-5)中,觀察到 80 分鐘 以前的訊號較為不穩定,應屬於沖堤上層相與中層相所造成的固定相 的流失,固定相流失速度大約為 1 mL/hr;當切換到下層相當移動相 時,就無固定相流失現象,所以訊號趨為穩定。

之後將波峰 I、II、III、IV 收集進行 HPLC 分析,在圖 4-7 上圖 中觀察到圖譜中在 a 位置波峰即為 quercetin-3,4-di-O-glucoside,且佔

之後將波峰 I、II、III、IV 收集進行 HPLC 分析,在圖 4-7 上圖 中觀察到圖譜中在 a 位置波峰即為 quercetin-3,4-di-O-glucoside,且佔

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