• 沒有找到結果。

血藤莖部粗抽物誘導人類血癌細胞 HL-60 細胞凋

第五章 實驗結果

第四節 血藤莖部粗抽物誘導人類血癌細胞 HL-60 細胞凋

一、以 EtBr 染色法檢測細胞凋亡之型態特徵

本實驗是將經過 CMEMM 處理 72 小時之 HL-60 細胞,藉由 EtBr 螢 光染色來觀察細胞核之型態改變。如 Figure 5 所示,經 25 μg/ml CMEMM 處理之細胞,其細胞核型態與對照組相似;而經 50 μg/ml 或 75 μg/ml CMEMM 處理之細胞,其細胞核呈現皺縮 (condensed nuclei)、斷裂 (fragmented chromatin) 或凋亡小體 (apoptotic bodies),與對照組圓形且完 整的細胞核明顯不同。

二、以 annexin V-FITC/PI 雙染色法檢測凋亡細胞之比率

以 annexin V-FITC/PI 雙染色法分析經 CMEMM 處理之 HL-60 細胞,

結果如 Figure 6 所示,CMEMM 會提高 annexin V-positive 凋亡細胞的比 率,且有劑量及時間的依存關係。經過 72 小時的反應過程,HL-60 細胞 以 75 μg/ml CMEMM 處 理 者 , 細 胞 早 期 凋 亡 (annexin V-positive, PI-negtive) 的比率由 8.5%提升至 64.8%,細胞壞死 (annexin V-positive, PI-positive) 的比率由 7.1%提升至 23.4%,而相同條件下對照組則幾無變 化 (細胞早期凋亡比率:1.3%至 2.5%;細胞壞死比率 0.6% 至 1.8%)。

49

三、以流式細胞儀檢測細胞內之活化態 caspase-3

由於 caspase-3 為 caspase 家族主要成員之一,此類的 cysteine protease 可裂解 protein substrate 並產生特異性的凋亡型態 (characteristic apoptotic morphology) ,因此 caspase-3 的活化可以做為細胞凋亡的指標。而為了 瞭解 caspase-3 的活化是否與 CMEMM 所誘導的 HL-60 細胞凋亡有關,本 實 驗 以 具 專 一 性 的 活 化 態 caspase-3 抗 體 (active caspase-3-specific antibody) 做為探針,利用流式細胞儀檢測分析。結果如 Figure 7 所示, 於 24 小時的反應時間下,CMEMM 會誘導 HL-60 細胞內之活化態 caspase-3 提升,且有劑量的依存關係。其中,以75 μg/ml CMEMM 處理之 HL-60 細胞,其活化態 caspase-3 的比率由 2.8%提升至 42.5%。

50

第五節 血藤莖部粗抽物 (CMEMM) 對於裸鼠異位移 植腫瘤實驗之影響

為了瞭解在活體動物模式中,CMEMM 是否也可以抑制 HL-60 細胞 的生長,本實驗先將 HL-60 細胞注入裸鼠,待腫瘤生成後,每天以腹腔 注射的方式,分別將劑量 100 mg/kg 或 500 mg/kg 之 CMEMM 注入裸鼠,

並以給予 PBS 者做為對照組,為期 21 天。結果如 Figure 8 所示,以每日 所測量之腫瘤體積指數 (relative tumor volume) 來看,處理 100 mg/kg CMEMM 之組別與對照組的趨勢相同,而處理 500 mg/kg CMEMM 之組 別相較於對照組由給藥第 5 天起即有顯著差異。實驗結束時,100 mg/kg CMEMM 組與對照組之腫瘤體積指數分別為 16.8 及 16.6,而 500 mg/kg CMEMM 組腫瘤體積指數為 9.4。此外,以最終腫瘤與體重比值 (final tumor-to-body weight) 來看,處理 500 mg/kg CMEMM 之組別相較於對照 組有顯著差異,顯示 CMEMM 抑制腫瘤生長的同時並未使裸鼠體重減 輕。而實驗期間各組均未發生老鼠死亡的情形,且後續的病理切片觀察 (H&E stain) 中,肝臟、腎臟及脾臟皆未發現有病變的情形。

51

第六節 血藤莖部粗抽物與三氧化二砷並用對於人類血 癌細胞 HL-60,Jurkat 及 Molt-3 生長之影響

為評估 CMEMM 與 ATO 並用時對於 HL-60,Jurkat 及 Molt-3 細胞生 長之影響,將上述細胞分別以 25 μg/ml,50 μg/ml,75 μg/ml 之 CMEMM 以及 2.5 μM,5 μM 之 ATO 單獨或是合併處理。經過 24 及 48 小時反應時 間後,各組別之生長情形如 Figure 9 所示,CMEMM 合併使用 ATO 明顯 可以增強對於細胞生長抑制的效果。

以 CalcuSyn 軟體分析藥物交互作用的結果如 Table 4 所示,不同濃度 之 CMEMM 與 ATO 並用對於 HL-60 細胞的生長抑制作用均屬於協同效 果,但對於 Jurkat 及 Molt-3 細胞的生長抑制則依組合的不同而呈現協同、

加成或拮抗效果。

52

第七節 血藤莖部粗抽物與三氧化二砷並用對於對於人 類血癌細胞 HL-60 及 Jurkat 細胞內活性氧化物 之影響

由於 ATO 或某些 DNA damaging agent 可以透過 ROS 的生成來誘導 細胞凋亡,因此本實驗以 DHE 做為探針,檢測 ROS 在 CMEMM 與 ATO 誘導之細胞凋亡是否產生變化。結果如 Figure 10 所示,在 CMEMM 與 ATO 合併處理 48 小時的過程中,HL-60 細胞於處理時間 16 小時開始,

細胞內 ROS 之生成量隨著時間漸漸上升,而 Jurkat 細胞則是從處理時間 8 小時開始顯著提升。

53

第八節 血藤莖部粗抽物與三氧化二砷並用對於人類血 癌細胞 HL-60 及 Jurkat 細胞週期中 sub-G

1

期比 率之影響

由於 CMEMM 與 ATO 並用時,可以協同性地增加對於 HL-60 及 Jurkat 細胞生長抑制的作用,所以本實驗進一步以流式細胞儀分析經藥物處理之 細胞週期的變化。結果如 Figure 11 所示,當處理時間為 24 小時,細胞只 有處理 2.5 μM 之 ATO 者,其處於 sub-G1期細胞的比率都很低 (小於 3%),

而同時再加入 50 μg/ml 之 CMEMM 處理者,sub-G1期的比率將會顯著提 升。若處理時間延長至 48 小時,則 Jurkat 細胞處於 sub-G1期增加的比率 明顯高於 HL-60 細胞。

此外,倘若 CMEMM 與 ATO 並用時再加入抗氧化劑 NAC,當處理 時間為 24 小時,HL-60 細胞處於 sub-G1期細胞的比率將由 8.12%降低為 4.12%,Jurkat 細胞處於 sub-G1期細胞的比率將由 13.27%降低為 2.75%;

若處理時間延長至 48 小時,則抑制幅度更為明顯,HL-60 細胞處於 sub-G1

期細胞的比率將由 10.14%降低為 4.11%,Jurkat 細胞處於 sub-G1期細胞的 比率將由 22.59%降低為 2.37%。顯示 NAC 可以抑制 CMEMM 與 ATO 並 用所造成的 sub-G1期比率增加。

54

第九節 血藤莖部粗抽物與三氧化二砷並用誘導人類血 癌細胞 HL-60 及 Jurkat 細胞凋亡現象之探討

一、以 DAPI 染色法檢測細胞凋亡之型態特徵

本實驗是將單獨處理 50 μg/ml CMEMM、2.5 μM ATO 或是並用處理 之細胞,藉由 DAPI 螢光染色來觀察細胞核之型態改變。如 Figure 12 所 示,於處理時間 24 小時,CMEMM 和 ATO 並用處理之 HL-60 及 Jurkat 細 胞 明 顯 比 單 獨 處 理 者 具 有 細 胞 核 皺 縮 (condensed nuclei) 、 斷 裂 (fragmented chromatin) 或凋亡小體 (apoptotic bodies) 的現象。當處理時 間延長至 48 小時,則並用處理所造成 HL-60 及 Jurkat 細胞的凋亡形態特 徵將更為明顯,而 Molt-3 細胞也開始出現凋亡形態特徵。

二、以 annexin V-FITC/PI 雙染色法檢測凋亡細胞之比率

為了進一步確認在 CMEMM 與 ATO 並用造成細胞凋亡的現象中,

ROS 是否扮演重要的角色,本實驗在 annexin V-FITC/PI 雙染色法檢測凋 亡細胞比率的同時,另外加入一些抗氧化劑如 NAC、BHT 或 α-tocopherol 加以測試。結果如 Figure 13 所示,經過 24 小時的處理時間,單獨處理 50 μg/ml CMEMM 或 2.5 μM ATO 之 HL-60 細胞,其 annexin V-positive 凋 亡細胞的比率分別為 3.65%及 2.18%,但兩者並用處理時此比例會顯著提

55

升至 25.36%,而若同時再加入抗氧化劑 NAC 或 BHT 處理,則 annexin V-positive 的比率則分別會減少至 2.51%或 12.79%。而相同的處理時間 下,單獨處理 50 μg/ml CMEMM 或 2.5 μM ATO 之 Jurkat 細胞,其 annexin V-positive 的比率分別為 3.89%及 6.86%,兩者並用處理時此比例則顯著 提升至 23.81%,若同時再加入抗氧化劑 NAC 或 α-tocopherol 處理,則 annexin V-positive 的比率則分別會減少至 7.70%或 8.55%。以上結果顯 示,CMEMM 與 ATO 並用在所 HL-60 及 Jurkat 細胞所誘導的凋亡現象,

顯然與氧化壓力的形成有關。

56

第十節 利用西方墨點法探討血藤莖部粗抽物與三氧化 二砷並用誘導人類血癌細胞 HL-60 及 Jurkat 細 胞凋亡之相關蛋白質表現

為了進一步探討 CMEMM 與 ATO 並用所誘導細胞凋亡的可能機轉,

本實驗以西方墨點法檢測粒線體路徑相關蛋白質的表現。如 Figure 14 所 示,經過 24 小時以 CMEMM 與 ATO 並用處理之 HL-60 及 Jurkat 細胞,

其活化態的 caspase-3 和 caspase-9 (cleaved caspase-3, caspase-9)以及被切 斷的 PARP (cleaved PARP) 蛋白質表現量都比單獨處理者為高。此外,若 同時加入 NAC 於 CMEMM 和 ATO 並用處理者,這些蛋白質的表現量將 明顯受到抑制,且幾乎與未處理藥物者相同。本實驗結果顯示,CMEMM 與 ATO 並用所誘導細胞凋亡與粒線體路徑有關,並且可以被抗氧化劑 NAC 所調控。

57

58

59 2010; Yao et al., 2009)。所以未來臨床應用上,最佳化的劑量組合將會是 CMEMM 和 ATO 合併療法重要的一環,值得進一步探討。

此外,藥物交互作用分析係基於 median-effect equation 的 mass-action

60 顯著的觀察到協同性地增加 annexin V-positive 的細胞比率 (Figure 13)。

ATO 會刺激細胞內生成 ROS 是眾所周知的事實,一些體外試驗的研 究報導指出,ATO 所誘導的血癌細胞凋亡可能是透過活性氧化物途徑,

例如:NADPH oxidase (Wang et al., 2008), mitochondrial electron transport chain (Pelicano et al., 2003) 或是抑制抗氧化酵素如 thioredoxin reductase 有前氧化物的環境中 (pro-oxidant environment),將會增強血癌細胞凋亡 的現象。

61

有關血藤化學成分方面,本實驗室先前已由莖部分離出多個具有活性 之異黃酮類成分 (Table 2),而本研究以 calycosin、afrormosin 及 genistein 為指標成分,建立 CMEMM 之 HPLC 指紋圖譜 (Figure 2),可供後續研究 (Sanchez et al., 2008),由於先前的本實驗室對於 genistein 在血藤乾燥莖部 的含量分析結果為 0.001% (陳亭亭, 2005),因此可以合理的推斷,genistein 並非 CMEMM 去增強 ATO 誘導 HL-60 及 Jurkat 細胞凋亡的主要成分,

CMEMM 與 ATO 協同性地抗血癌效果可能是透過多個具有抗癌作用的異 黃酮成分 (calycosin、afrormosin、genistein 及 medicarpin) 所產生。

而為進一步探討 CMEMM 與 ATO 並用所誘導的細胞凋亡是否透過

62

caspase-dependent 的路徑,在細胞週期試驗中,也嘗試加入 pan-caspase inhibitor 如 z-VAD-fmk 來觀察雕亡現象是否受到影響。而實驗結果發現,

在處理時間 24 小時的反應中,25 μM 的 z-VAD-fmk 可以顯著地減少 Jurkat 細胞因 50 μg/ml CMEMM 與 2.5 μM ATO 作用所引起 sub-G1期的蓄積;但 是在同樣的條件下,z-VAD-fmk 對於 HL-60 細胞卻顯然無法抑制 sub-G1

的比率 (Figure 15)。然而,經由 annexin V-FITC/PI 的實驗結果可以發現,

HL-60 細胞受 CMEMM 與 ATO 並用所誘導的 necrotic cell 為 13.17%,明 顯比 Jurkat 細胞的 2.22%為高 (Figure 13),因此推測 z-VAD-fmk 對於 HL-60 細胞無法抑制其 DNA 斷裂的原因,可能是因為 HL-60 部分的細胞 已走向細胞壞死的方式。此外,25 μM 之 z-VAD-fmk 對於 HL-60 的細胞 是否濃度過低而不足以作用,或者 z-VAD-fmk 加入時間點過早,以致於 還沒開始作用就被細胞的酵素所分解,這些也都是 z-VAD-fmk 對於 HL-60 細胞反應不明顯的可能原因,至於是否與 caspase-independent 路徑有關則 有待進一步評估。

63

64

物血藤的民俗用法,提供未來 CMEMM 與 ATO 並用於血癌治療上的研究 基礎,提升台灣藥用植物的應用價值,也開啟臨床治療上將化療藥物與中 草藥並用的可能性。

65

參考文獻

Ashe, P.C. and Berry, M.D., 2003. Apoptotic signaling cascades. Prog Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry 27: 199-214.

Bhakuni, D.S., Goel, A.K., Jain, S., Mehrotra, B.N., Patnaik, G.K. and Prakash, V., 1988. Screening of Indian plants for biological activity: Part XIII.

Indian J Exp Biol 26: 883-904.

Burry, L.D. and Seki, J.T., 2002. CNS relapses of acute promyelocytic leukemia after all-trans retinoic acid. Ann Pharmacother 36: 1900-1906.

Chang, Y.F., Chi, C.W., Chern, Y.T. and Wang, J.J., 2005. Effects of 1, 6-Bis[4-(4-amino-3-hydroxyphenoxy)phenyl]diamantane (DPD), a reactive oxygen species and apoptosis inducing agent, on human leukemia cells in vitro and in vivo. Toxicol Appl Pharmacol 202: 1-12.

Chang, Y.F., Hsu, Y.C., Hung, H.F., Lee, H.J., Lui, W.Y., Chi, C.W. and Wang, J.J., 2009. Quercetin induces oxidative stress and potentiates the apoptotic action of 2-methoxyestradiol in human hepatoma cells. Nutr Cancer 61: 735-745.

Choi, Y.J., Park, J.W., Suh, S.I., Mun, K.C., Bae, J.H., Song, D.K., Kim, S.P.

and Kwon, T.K., 2002. Arsenic trioxide-induced apoptosis in U937 cells involve generation of reactive oxygen species and inhibition of Akt. Int J Oncol 21: 603-610.

Chou, T.C., 2006. Theoretical basis, experimental design, and computerized simulation of synergism and antagonism in drug combination studies.

66

Pharmacol Rev 58: 621-681.

Chou, T.C., 2010. Drug combination studies and their synergy quantification using the Chou-Talalay method. Cancer Res 70: 440-446.

Cohen, M.H., Hirschfeld, S., Flamm Honig, S., Ibrahim, A., Johnson, J.R., O'Leary, J.J., White, R.M., Williams, G.A. and Pazdur, R., 2001. Drug approval summaries: arsenic trioxide, tamoxifen citrate, anastrazole, paclitaxel, bexarotene. Oncologist 6: 4-11.

Cornic, M. and Chomienne, C., 1995. Induction of retinoid resistance by all-trans retinoic acid in acute promyelocytic leukemia after remission.

Leuk Lymphoma 18: 249-257.

D'Autreaux, B. and Toledano, M.B., 2007. ROS as signalling molecules:

mechanisms that generate specificity in ROS homeostasis. Nat Rev Mol Cell Biol 8: 813-824.

Editorial Board of Zhong Hua Ben Cao, 1999. Zhong Hua Ben Cao (China Herbal). Shanghai Scientific Technology Press, Shanghai, China; pp.

576-577.

Editorial Committee of the Flora of Taiwan, 1993. Flora of Taiwan. Tah Jinn, Taipei, Taiwan; pp.341-343.

Evens, A.M., Tallman, M.S. and Gartenhaus, R.B., 2004. The potential of arsenic trioxide in the treatment of malignant disease: past, present, and future. Leuk Res 28: 891-900.

Fadok, V.A., Voelker, D.R., Campbell, P.A., Cohen, J.J., Bratton, D.L. and Henson, P.M., 1992. Exposure of phosphatidylserine on the surface of

67

apoptotic lymphocytes triggers specific recognition and removal by macrophages. J Immunol 148: 2207-2216.

Groves, F.D., Linet, M.S. and Devesa, S.S., 1994. Epidemiology of human leukemia. Curr Opin Hematol 1: 321-326.

Hengartner, M.O., 2000. The biochemistry of apoptosis. Nature 407: 770-776.

Ho, C.Y., Kim, C.F., Leung, K.N., Fung, K.P., Tse, T.F., Chan, H. and Lau, C.B., 2006. Coriolus versicolor (Yunzhi) extract attenuates growth of human leukemia xenografts and induces apoptosis through the mitochondrial pathway. Oncol Rep 16: 609-616.

Jing, Y., Dai, J., Chalmers-Redman, R.M., Tatton, W.G. and Waxman, S., 1999.

Arsenic trioxide selectively induces acute promyelocytic leukemia cell

Arsenic trioxide selectively induces acute promyelocytic leukemia cell

相關文件