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魚藤素 (deguelin) 對肝癌, 血癌, 乳癌以及口腔癌細胞具有腫瘤毒 殺性和誘發癌細胞 DNA 受損導致細胞週期停滯之特性;除此之外,魚

藤素亦可抑制癌細胞的生長及轉移,誘發癌細胞走向凋亡,達到抗癌的 效果。目前應用中草藥物干擾癌細胞生長, 代謝, 增殖等過程,最後誘導 細胞凋亡,已成為治療癌症之新途徑。因此本研究計畫主要以分子層次 來研究魚藤素 (deguelin) 對人類非小細胞肺癌 NCI-H460 細胞株之凋 亡作用機轉,探討魚藤素是否能有效抑制肺癌細胞生長並誘發凋亡途 徑,達到抗癌的功效。

第二章 材料與方法

1. Deguelin, purity > 98% (HPLC):購自 Sigma

2. 3,3’-Dihexyloxacarbocyanine iodine (DiOC6):購自 calbiochem 3. 40% Acrylamide/Bis (29:1):購自 Amresco

4. Agarose:購自 MD 生化有限公司

5. Ammonium persulfate (APS):購自 Amresco

6. Annexin V-FITC apoptosis detection kit:購自 BD 7. BioMax Flim:購自 Kodak

8. Bovine serum albumin (BSA):購自 Merck

9. Dimethyl sulfoxide (DMSO):購自 Sigma Chemical Co.

10. Disodium hydrogen phosphate (Na2HPO4):購自 Merck 11. 10X TG-SDS buffer:購自 Amresco

12. ELC kit (Enhanced chemiluminescent kit):購自 Amresco 13. Ethanol:購自 TEDIA

14. Fetal bovine serum (FBS):購自 Invitrogen 15. Formaldehyle:購自 Sigma Chemical Co.

16. Glycine :購自 Amresco 17. L-Glutamine:購自 Invitrogen

18. Low melting agarose (LMA):購自 USB

19. Methanol:購自 TEDIA

20. Methylthiazolyldiphenyl-tetrazolium bromide (MTT) :購自 Amresco 21. N,N,N’,N’-Tetramethyl-ethylenediamine (TEMED):購自 Amresco 22. Normal melting agarose (NMA):購自 USB

23. Penicillin-Streptomycin (PS):購自 Invitrogen 24. Phenethyl isothiocyanate:購自 Sigma Chemical Co.

25. PhiPhi Lux® kit:購自 OncoImmunin (Gaithersburg, MD, USA) 26. CaspaLux8® kit:購自 OncoImmunin (Gaithersburg, MD, USA) 27. CaspaLux9® kit:購自 OncoImmunin (Gaithersburg, MD, USA) 28. Potassium chloride (KCl):購自 Merck

29. Potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4) :購自 Merck 30. Propidium iodide (PI):購自 Sigma Chemical Co.

31. Protein assay-Dye reagent concentrate:購自 Bio-Rad

32. Protein extraction solution (PRO-PREP):購自 iNtRON Biotechnology, Inc.

33. Protein marker:購自 Fermentas

34. RNase A (Ribonuclease A):購自 Amresco 35. RPMI-1640 medium:購自 Invitrogen 36. Sodium chloride (NaCl):購自 Merck

37. Sodium dodecyl sulfate (SDS):購自 Amresco

38. Tris (Tris(hydroxoymethyl)-aminomethane):購自 Amresco 39. Triton X-100:購自 Sigma Chemical Co.

40. Trypan Blue:購自 Sigma Chemical Co.

41. Trypsin-EDTA:購自 Sigma Chemical Co.

42. Tween-20:購自 Amresco 43. 顯影劑:購自 Kodak

44. 定影劑:購自 Kodak

45. AKT kinase kit: 購自 Cell Signaling Technology 46. Primary antibody (1°antibody)

(1) Anti-β actin:購自 Sigma Chemical Co.

(2) Anti-AIF:購自 BD

(3) Anti-Apaf-1:購自 Calbiochem

(4) Anti-Bad:購自 Cell Signaling Technology (5) Anti-p-Bad:購自 Cell Signaling Technology (6) Anti-Bax:購自 upstate

(7) Anti-Bcl-2:購自 biovision (8) Anti-Bid:購自 Chemicon

(9) Anti-Caspase-3:購自 Sigma Chemical Co.

(10) Anti-Caspase-9:購自 biovision (11) Anti-Caspase-8:購自 biovision

(12) Anti-p53: 購自 Cell Signaling Technology (13) Anti-PI3K p110: 購自 biovision

(14) Anti-PI3K p85α: 購自 biovision (15) Anti-AKT: 購自 biovision

(16) Anti-p-AKT (Thr308): 購自 Millipore (17) Anti-p-AKT (Ser473): 購自 Millipore (18) Anti-cytochrome c:購自 biovision

(19) Anti-Bcl-X: 購自 Cell Signaling Technology 47. Secondary antibody (2°antibody)

(1) Goat anti-mouse IgG (HRP) horseradish peroxidase conjugated antibody:

購自 Chemicon

(2) Goat anti-rabbit IgG (HRP) horseradish peroxidase conjugated antibody:

購自 Chemicon

(3) Goat anti-mouse IgG (HRP) horseradish peroxidase conjugated antibody:

購自 Chemicon 三, 儀器設備

1.無菌操作臺, 細胞培養皿, 細胞培養箱, 冷凍管, 恆溫離心機, 血球 計 數 板 , 倒 立 式 顯 微 鏡 , Dispenser, 1.5/ 15/ 50 ml 離 心 管 , Pipetmen。

2.去離子水製造機, 電源供應器, 酸鹼值測定器 (pH meter), PVDF menbrane, 震盪器, SDS-PAGE 電泳槽套組, Transfer Cell Bolt Kit 加熱板。

3.流式細胞儀, 高速離心機, 酵素免疫分析儀, 單細胞電泳槽。

第二節 實驗方法

圖九 本研究實驗流程圖

一、藥品配製

Deguelin 為固體粉末藥物,分子量為 394.42,純度為 98% 以上。利 用 DMSO 為溶劑配製成 10 mM 的庫存液 (stock solution),並分裝於 1.5 ml 微量離心管。庫存液儲存於 -20℃ 冰箱中備用,於每次實驗前利 用 DMSO 稀釋成所需之濃度。

二、人類非小細胞肺癌 NCI-H460 細胞株培養與繼代

NCI-H460 細胞株所使用之培養基為 RPMI-1640,額外添加胎牛血清 (FBS), 抗生素 (PS) 與 L-Glutamine,使細胞培養基最終含有 10 % FBS, 1 % PS 與 2 mM L-Glutamine,培養於 5 % CO2 , 37 ℃ 之環境。由於 NCI-H460 細 胞 株 為 貼 附 型 細 胞 , 因 此 每 次 繼 代或分盤時需要利用 Trypsin-EDTA 將細胞懸浮。首先利用磷酸緩衝液 (phosphate buffer saline,

PBS) 清洗細胞,再加入 0.5 mg/ml Trypsin-EDTA,等待 3~5 分鐘,當 細胞完全懸浮時,加入培養基以終止 Trypsin-EDTA 的反應。離心 1500 rpm,5 分鐘,完成後去除上清液,加入培養基稀釋細胞,取出稀釋後的

Propidium iodine (PI) 是一種核酸染劑,會與 DNA 雙股螺旋中之A=T, C≣G 鍵結的氫鍵 (hydro bond) 結合。當細胞死亡時,其細胞膜會失去 完整性,使得 PI 可進入細胞內與核酸結合;相反之,存活的細胞因其 細胞膜完整,因此 PI 無法進入細胞內與核酸結合。經 PI 染色完成的細 胞可利用流式細胞儀偵測,死亡的細胞會呈現較強紅色螢光,然而存活

的細胞則呈現較弱紅色螢光。

實驗方法:

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/ml 的濃度種於 12 孔培養盤中,待細胞 貼附後加入不同濃度之魚藤素 (deguelin),等待 48 小時,將上清液收至 離心管,加入 PBS 清洗細胞,利用 Trypsin-EDTA 使細胞懸浮。待細 胞懸浮後加入 1 ml 培養基中和反應並將細胞收至離心管,完成離心後,

除去上清液,加入 PI 染劑,均勻混合後利用流式細胞儀進行樣品分析。

樣品之活細胞與死細胞數量及比率,利用 CellQuest® 軟體分析。

六、細胞生長抑制分析46 實驗原理:

利用 Trypan blue 染料會滲入死細胞中而呈色,而活細胞因細胞膜完 整,染料無法滲入而不會呈色,藉此來分辨出活細胞與死細胞,再配合 血球計數盤以倒立式位像差顯微鏡觀察便可以計算出活細胞數。

實驗方法:

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/ml 的濃度種於 12 孔培養盤中,待細胞 貼附後加入 250 nM 濃度之魚藤素 (deguelin),等待 0, 24, 48, 72 小 時,將上清液收至離心管,加入 PBS 清洗細胞,利用 Trypsin-EDTA 使 細胞懸浮,待細胞懸浮後加入 1 ml 培養基中和反應並將細胞收至離心 管。完成離心後,除去上清液,加入 10 ml 培養基於細胞懸浮液中。

最後取 10 ml 細胞液與 90 ml Trypan blue ( 0.4% w/v trypan blue ) 溶 液,混合均勻後以血球計數板計算 0, 24, 48, 72 小時之活細胞數目。

七、細胞染色質凝集現象47 實驗原理:

DAPI (4- 6-diamidino-2-phenylindole) 是 一 種 可 與 DNA 上 的 小 溝 (minor groove) AT 區域結合之核酸螢光染劑。細胞凋亡時會出現染色質 凝集 (chromosomes condensation) 與 DNA 斷裂 (DNA fragmentation) 的現象。當凋亡現象越嚴重,DNA 斷裂也越嚴重,minor groove 暴露出

八、DNA 膠體電泳分析 (DNA gel electrophoresis)48 實驗原理:

細胞凋亡時會伴隨 DNA 斷裂現象的發生,其細胞核內 DNA 會裂解成 180~200 bp (base pair)。因此純化 DNA 後,經電泳跑膠,觀察 DNA 斷 裂現象。若有 DNA 斷裂情形,其膠體經 UV 照射後會呈現階梯狀 (ladder),可藉由 DNA marker 來得知其斷裂鹼基對,判斷是否為細胞凋 亡之特徵。

實驗方法:

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/ml 的濃度種於 12 孔培養盤中,細胞貼

附後利用不同濃度之魚藤素 (deguelin),等待 48 小時,利用 Tissue and Cell Genomic DNA Purification Kit (Gene Mark) 純化 DNA。將上清 液收至離心管中,加入 PBS 清洗細胞,利用 Trypsin-EDTA 使細胞懸

高速離心;丟棄液體,加入 600 μl Washing solution,高速離心;丟棄 液體,加入 600 μl Washing solution ,高速離心 5 分鐘;丟棄液體,

並更換已去上蓋之新 1.5 ml eppendorf,放入 55℃ 烘箱 3~5 分鐘,藉 以揮發殘留 Ethanol;將Elution Solution 預熱至 70℃,每個樣品加入 60 μl Elution solution 後,高速離心 1 分鐘,其液體內含 DNA。將樣品 與 6X DNA loading dye 以5:1 比例混勻,注入至 2% agarose (1g agarose, 50 ml 0.5X TBE buffer, 10μl Ethedium bromide) 膠體,以 100 V 進行電泳跑膠,完成後將膠體放至 UV 下照射拍照。

九、彗星試驗 (Comet assay)49 實驗原理:

彗星試驗又稱作單細胞電泳分析 (Single cell gel electrophoresis assay),可 用來分析及定量 DNA 受損的程度,屬於一種簡單, 快速以及敏感性高 的技術。當 DNA 受損後發生斷裂,藉由電泳之方式將斷裂 DNA 拖出 膜外,之後加以染色。 DNA 受損越嚴重,拖尾現象越明顯,由此可藉 由拖尾的長短,觀察 DNA 損傷程度。

實驗方法:

表一 Alkaline buffer (pH=13)

組成 重量 (g)

NaOH 12 g

EDTA 0.347 g

DDW 將體積定量至 1000 ml

表二 Lysis buffer (需新鮮配製,pH=8~10)

組成 體積 (ml)

5M NaCl 100 ml

1M Tris 2 ml

0.5M EDTA 40 ml

Triton X-100 2 ml

DDW 56 ml

Total 200 ml

表三 Tris buffer (0.4 M,以 HCl 調整 pH=7.5)

組成 重量 (g)

Tris 48.456 g

DDW 將體積定量至 1000 ml

十、Annexin V affinity assay50 實驗原理:

細 胞 進 行 程 式 性 死 亡 - 細 胞 凋 亡 (apoptosis) 時 , phospholipid phosphatidylserine (PS) 會從細胞膜內層向外轉移至外層,由於 Annexin V 為一種具有鈣離子依存性的磷脂質,它會與 PS 具有高度的專一性,

因此當在 Annexin V 上標記螢光物質時,便可偵測 PS 外翻的情形,同 時搭配 Propidium Iodide (PI) 染劑,透過雙染模式區別凋亡與壞死細胞。

實驗方式:

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/ml 的濃度種於 12 孔培養盤中,待細胞 貼附後加入 250 nM 濃度之魚藤素 (deguelin),等待0, 24, 30, 36, 48 小

時,將上清液收至離心管,加入 PBS 清洗細胞,利用 Trypsin-EDTA 使

十一、粒腺體膜電位 (Mitochondrial membrane potential,

m) 之檢測51 實驗原理:

在活細胞中,粒線體內膜電位較高,此時粒線體內膜間會充滿 H+,致使 膜電位探針 DiOC6 (3-3-Dihexyloxacarbocyanine iodine) 穿透細胞膜,專 一性結合於活細胞之粒腺體表面,此時利用流式細胞儀測得之螢光亮度 也越強;反之,細胞凋亡的過程中,粒腺體上由多個蛋白組成之通透性 轉變通道 (PT pore) 打開,使得粒腺體內膜通透性改變,造成粒腺體內 膜 H+ 梯度下降,相對結合的 DiOC6 變少螢光強度變弱。其螢光強度的 改變可反映出細胞膜電位 (mitochondrial membrane potential) 改變的情 形。

十二、鈣離子 (Ca2+)釋出之檢測52 實驗原理:

細胞內鈣離子可作為細胞信號傳遞的分子,是細胞啟動過程中重要的功 能因子。將螢光染劑 Fluo-3/AM 導入細胞後,在細胞內被內生性的 (endogenous esterases) 水解 (hydrolyze) 成 Fluo-3 , Fluo-3 能滯留在細 胞內並跟鈣離子具有專一性的結合力。隨著細胞內鈣離子濃度的改變,

利用Caspase-3 substrate (PhiPhiLux-G1D2) 來檢測凋亡蛋白 caspase-3 之 活性。PhiphiLux- G1D2 基質是種含有螢光物質之胺基酸序列 ( amino acid sequence ),當 caspase-3 具有活性時,可裂解胺基酸序列之特定位 置,使得內含之螢光物質釋放出來,如此可利用流式細胞儀分析螢光含 量得知 caspase-3 活性。

實驗方法:

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/ml 的濃度種於 12 孔培養盤中,待細胞 貼附後加入 250 nM 濃度之魚藤素 (deguelin),等待 0, 12, 24, 36, 48 小 時,將上清液收至離心管,加入 PBS 清洗細胞,利用 Trypsin-EDTA 使 細胞懸浮,待細胞懸浮後加入 1 ml 培養基中和反應並將細胞收至離心 管,離心完成去除上清液,加入 Caspase-3 substrate (PhiPhiLux-G1D2),

混合均勻於 37℃ 水浴槽反應。反應完成,加入 Flow Cytometer Buffer , 利用流式細胞儀進行樣品分析。樣品之螢光量以 CellQuest®軟體分析。

十四、西方墨點法 (Western blotting)53 實驗原理:

藉由抗體抗原反應來觀察蛋白質的變化。藉由特定抗體對特定胺基酸序 列具有專一性特性,當抗體與蛋白質抗原結合後,再以帶有 Horseradish peroxidase (HRP) 的二級抗體與一級抗體做結合。再利用 Enhanced chemiluminescent (ECL)呈色後,藉由感光底片吸收冷光而產生曝光。經 過顯影與定影步驟後,根據曝光程度區域大小就可以知道蛋白質表現量 的變化。

實驗方法:

(一)、蛋白質萃取 (protein extration)

NCI-H460 細胞株以 1×105 cells/dish 的濃度種於培養皿中,待細胞貼附

(二)、蛋白質定量分析

之後注入上層膠 (Stacking gel) 並插上齒梳 (comb),避免氣泡產生,待 上層膠凝固後,將鑄好的膠體放置於電泳槽中,加入電泳緩衝液 (1X TG-SDS buffer),接著將萃取出的蛋白依定量後之體積與 5X protein loading dye 混合,並以 95℃ 乾浴加熱 10 分鐘使蛋白質變性。完成後 依序將標示標準分子量的 Marker 及各樣品注入孔槽中,通以電壓80 volts,待樣品通過 stacking gel 後,電壓調為 110 volts,繼續電泳直到 染劑到達底端並停止。

(2) 轉漬

將轉漬夾打開後,黑色面朝下,將海綿墊片以 transfer buffer 潤濕並鋪在

將轉漬夾打開後,黑色面朝下,將海綿墊片以 transfer buffer 潤濕並鋪在