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本實驗設計之 Luciferase 報導基因由被切割後之γ-secretase 受質胞內端

AICD-GAL4 與 NICD-GAL4 所驅動而表現,故可假設以 Luciferase 受質反應後偵 測其冷光訊號強度與γ-secretase 之活性呈現正相關性,此報導基因之實驗結果中 C99 細胞株對照組與表現 ATP6V0d1 基因之 Luciferase 冷光訊號並無顯著之差異,

而以 DAPT 與 Bafilomycin A1 處理下冷光訊號強度下降(圖七);而在 NG 細胞株內 則可觀察到表現 ATP6V0d1 基因之組別冷光訊號顯著上升為對照組之 2.37 倍,同 時以 DAPT 與 Bafilomycin A1 處理下皆可降低訊號強度(圖八)。

此一階段實驗結果顯示表現 ATP6V0d1 基因會顯著增強 NICD-GAL4 所驅動之 Luciferase 基因表現,但並不會顯著影響 AICD-GAL4 所驅動之 Luciferase 基因表 現。此一實驗中 NICD-GAL4 之增強結果可能是因為 Notch 訊號需要 V-ATPase 活 性之緣故,故增強 V-ATPase 活性導致了 NICD-GAL4 訊號之增強。

免疫螢光染色實驗結果

為進一步了解不同蛋白質於細胞中之交互作用之可能與位置,以免疫染色法觀察 細胞內 ATP6V0d1、NCT 與 LAMP2(Lysosome-associated membrane protein 2)於細 胞內之分布位置,結果顯示 C99 細胞株中 ATP6V0d1 與 NCT 於細胞中具重疊之分

布,同時亦與 LAMP2 具重疊分布(附圖一),顯示其於細胞中可能之交互作用;NG 細胞株中,則可觀察到 ATP6V0d1 與 NCT 於細胞中具重疊之分布,但是與 LAMP2 卻無重疊之分布(附圖二),顯示其可能具不同之作用機制。

討論與結論

首先讓我們重整個實驗之結果,從本次的研究結果顯示 ATP6V0d1 對於γ-secretase 之活性具有選擇性的影響,在 Western blot 實驗中我們在表現 ATP6V0d1 與

γ-secretase 受質之細胞株中可發現 γ-secretase 對於 NΔE 之切割作用受到 ATP6V0d1 表現之抑制(圖一),而其對於 C99-GAL4 之切割作用卻有著增強之效果(圖二);但 是在 Luciferase 報導基因之實驗中卻呈現不同之結果,其結果顯示γ-secretase 對於 NΔE-GAL4 之切割活性顯著的上升(圖八)但是在 C99-GAL4 之切割作用卻無顯著 改變(圖七),而同時我們檢驗可能受到表現 ATP6V0d1 所影響之溶小體,發現其有 明顯之酸化情形(圖五;圖六)。

為什麼會產生如此之差易?而我們又該如何對這樣的結果作出解釋?因為本研究 內容可大致區分成兩條不同之路徑,所以我們個別討論。而先以前人研究較多之 Notch 路徑著手,從實驗結果中我們可以明顯的發現 Western blot 實驗與 Luciferase 報導基因實驗結果互相牴觸,即 Western blot 實驗中代表 Notch 路徑活性之

NICD-GAL4 表現量之顯著下降與 Luciferase 報導基因實驗中受 NICD-GAL4 調控 之 luciferase 表現量顯著上升,面對這樣相互矛盾的結果,我們勢必進一步考慮實 驗設計背後之意義與參考其他人之研究結果以下結論。從 Western blot 實驗中可以 發現γ-secretase 受質之表現量發生了改變,但這是否直接代表了 γ-secretase 之活性,

在假設人為表現之情況下受質蛋白質最初之表現量不變,則最終於 Western blot 被 抗體辨識之蛋白質則已經於細胞中經過了不同的修飾、切割、分泌、運送等等之 過程,而這其中大部分之過程或多或少有 V-ATPase 參與其中,考量 V-ATPase 酸 化胞器之功能足以影響其運輸、分泌或是胞器內酵素之活性,而我們也確實在實

驗中觀察到表現 ATP6V0d1 增強了溶小體(lysosome)之酸化程度,而如此酸化程度 之改變是否也可能造成實驗中所觀察到之結果。有研究指出 Notch 路徑之正常功 能需要仰賴 V-ATPase 之正常活性(Thomas et al. 2010; Yan et al. 2009),如果抑制 V-ATPase 之活性將會造成 Notch 路徑無法正確表現其下游基因,我們在 Western blot 實驗中觀察到表現 ATP6V0d1 增強了 V-ATPase 之活性,同時亦觀察到 Notch 訊息路徑中之 NICD-GAL4 表現量減少,NICD 進入細胞核中調控下游基因之表現,

所以當 NICD 減少時代表 Notch 訊息路徑之功能是受到抑制的,但是在 Luciferase 報導基因實驗中我們卻可以看到 Luciferase 訊號顯著之上升,能代表 Notch 下游功 能並未受到抑制,即 NICD-GAL4 能夠正常的轉移至核內驅動 Luciferase 基因表現,

只是在 Western blot 實驗上所觀察到之 NICD-GAL4 表現量減少了。而從前人的研 究中,γ-secretase 降解 Notch 的反應是會被 V-ATPase 的功能影響(Valapala et al.

2013)。配合本次之研究可以推論,在表現 ATP6V0d1 之狀況下,因強化了溶小體 之酸化反應而提升了其對 Notch 之降解功能,並同時促進了 Notch 下游路徑之活化。

NICD 很難在核內被偵測到(Lubman et al., 2007),可能是因為其帶有 PEST 序列而 能加速其在細胞內之分解(Fryer et al., 2004; Tsunematsu et al., 2004),從這樣的角度 可以推測 ATP6V0d1 之表現對γ-secretase 切割 NΔE 之活性為促進功能,而 Western blot 中所見之表現量下降原因乃因為 NICD-GAL4 被快速的分解所導致,如此亦能 驗證前人之研究,同時我們亦觀察到 ATP6V0d1 與 NCT 於細胞內重疊分布之情形 (附圖二)。

而在γ-secretase 切割 C99-GAL4 之路徑上我們可以從 Western blot 實驗中觀察到 C99-GAL4 表現量之減少(圖二),但是在 Luciferase 報導基因實驗中卻無法顯示出 差異(圖七),這個部分可能需要從數個部分著手來探討,首先 C99 與 APP 於細胞 中可能表現於內質網、高基氏體、細胞膜、內噬體與溶小體(Haass et al. 1992a; Lai et al. 1995; Marquez-Sterling et al. 1997),並且這樣的位置表現為動態的,故 C99 經 常在細胞內各處移動,當 C99 表現在內噬體與溶小體時部分可能會被γ-secretase

切割,而部分則會經由非γ-secretase 調控之機制而水解(Weidemann et al. 1989),而 我們可以從 Lysosensor 實驗中觀察到 V-ATPase 之活性受到表現 ATP6V0d1 而增加,

綜合前人所研究之 V-ATPase 功能而言,這樣的改變可能造成 C99 於細胞表面之回 收量增加、分解量增加或是直接的影響了γ-secretase 之活性,因此我們在 Western blot 上觀察到 C99-GAL4 表現量下降卻無法於 Luciferase 報導基因實驗中得到同樣 之結果。同時當我們以γ-secretase 抑制劑 DAPT 與 V-ATPase 抑制劑 Bafilomycin A1 處理時卻可以看到相似之效果,意即 C99-GAL4 表現量上升與 NICD-GAL4 表現量 下降(圖三、圖四),我們已能預料 DAPT 抑制γ-secretase 活性將會造成如此之結果,

但何以抑制 V-ATPase 之活性會產生同樣之結果,Bafilomycin A1 在細胞中為 V-ATPase 抑制劑,之前所提到之多篇研究已證實其能抑制 Notch 路徑表現,於本 研究中我們也可以在 Luciferase 報導基因實驗中觀察到冷光訊號之下降,而同樣的 訊號下降亦發生於表現 C99-GAL4 之 C99 細胞株,這樣的結果可能顯示了

Bafilomycin A1 透過抑制 V-ATPase 而對γ-secretase 產生抑制作用。而我們亦觀察 到 ATP6V0d1 與 NCT、LAMP2 於細胞內之重疊分布(附圖一),顯示此交互作用可 能發生於溶小體中,此一現象並無其他相關之研究,故值得進一步的研究。

為了進一步證實可能之作用機轉,未來之實驗內容須針對假設一一做出解答,必 須確認表現 ATP6V0d1 對 V-ATPase 之整體功能是否尚有其他之影響,同時能夠更 加精確的追蹤細胞中 V-ATPase、γ-secretase 與其受質蛋白之表現位置、運輸分泌與 降解過程,在 amyloidogenic 路徑中,專注於γ-secretase 受質 C99 於細胞內之表現 動態,與 AICD 對於其下游基因之調控能力使否受到表現 ATP6V0d1 而影響,我

們可以更進一步檢視其路徑所產生之β-類澱粉蛋白是否有種類上之改變,因

γ-secretase 所產生之 β-類澱粉蛋白具有不同之胺基酸長度,其中又以 42 個胺基酸 長度之片段被認為具有較高之細胞毒性與致病能力(Haass and Selkoe 2007),此一 部分亦是需要仔細確認的。而在 Notch 路徑中,則需要進一步了解 NICD 於細胞中 之轉移分佈與其降解過程,以了解何以 NICD 表現量於細胞質中下降但是報導基

因訊號卻顯著上升。有鑑於 V-ATPase 與γ-secretase 在細胞內皆參與廣泛之功能,

表現 ATP6V0d1 於細胞內之影響相信是全面且多元的。

因此,本研究之結論為 ATP6V0d1 對γ-secretase 活性之影響具有選擇性,其對於 NΔE-GAL4 之切割作用受到 ATP6V0d1 表現而促進,可能是透過增強 V-ATPase 活 性而達成此一影響,這一點可由前人之研究而推測,故透過直接抑制γ-secretase 活性或是抑制 V-ATPase 活性可以消除此一影響亦與前人之研究相符合;而對於 C99 之切割作用卻有相較之下更為複雜之影響,於 Western blot 實驗中觀察到

C99-GAL4 表現量增加與無顯著差異之 Luciferase 報導基因實驗呈現不一致之結果,

合理之解釋乃表現 ATP6V0d1 可能增強了溶小體降解蛋白質之能力而增強

C99-GAL4 非γ-secretase 路徑之分解效率,同時亦影響了 γ-secretase 活性之雙重功 效下而造成此一結果。

而因為 V-ATPase 所參與之細胞生理層面相當廣泛,如果想要確認其影響γ-secretase 活性之路徑與方法則尚需要更進一步之實驗方可達成,在此希望本實驗能夠為後 來之研究人員提供一些想法與線索,而在未來之實驗上達到實質之幫助,亦期待 能夠早日發現γ-secretase 其精密之調控路徑,以助於阿茲海默症治療藥物之開發,

提升病患生活品質與降低照護負擔。

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