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附錄 3、2 株黑潰瘍病菌 Phomopsissp. 分離株之菌絲外觀與菌絲塊接種番荔枝情 況。採摘於台東地區第 1 和 5 號場區之罹病葉片，分離培養於水培養基、在 28 ℃培養 2 天後，移至馬鈴薯培養基、在 28 ℃培養 2 天後，取(A) P-1 (1-33-1)、
(B) P-1 (1-33-1) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊接種於番荔枝離葉，(C 和 D) 為 5 天後拍照觀察。每組處理 5 重複 (n = 5) 。
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附錄 4、溫度對 2 株黑潰瘍病菌 Phomopsissp. 分離株之影響。將病原菌株培養 於 PDA 培養基 28 ℃ 2 天後，取(A) P-1 (1-33-1) 和 (B) P-2 (5-2-4) 分離株之直 徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，將培養基置於 22、28 和 37 ℃培養箱，
每隔 12 小時記錄其菌絲生長速度，每處理 4 重複(n=4)，利用 SPSS 軟體經由 Duncan 氏檢定法分析(p＜0.05)，星號(*) 代表現統計分析具顯著差異。
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附錄 5、抗生素對 2 株黑潰瘍病菌 Phomopsissp. 分離株之影響。將病原菌株培 養於 PDA 培養基 28 ℃ 2 天後，取(A) P-1 (1-33-1) 和 (B) P-2 (5-2-4) 分離株 之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，將 PCNB (P 5 ppm)、Rifamycin (R 5 ppm)、 Ampicillin (A 100 ppm) 和混和 3 種抗生素(Mix) 添加於菌絲塊 1.5 cm 處紙錠，培養於 28 ℃培養箱，每隔 12 小時記錄其菌絲生長速度，每處理 4 重 複(n=4)，利用 SPSS 軟體經由 Duncan 氏檢定法分析(p＜0.05)，星號(*) 代表現 統計分析具顯著差異。
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附錄 6、4 株黑腐病菌 Lasiodiplodiasp. 分離株之菌絲外觀與菌絲塊接種番荔枝 情況。擷取台東森林公園之罹病植物莖部，分離培養於水培養基、在 28 ℃培養 1 天後，移至馬鈴薯培養基、在 28 ℃培養 1 天後，取 (A) L-1 (BR-2-2)、(C) L-2 (BR-2-4)、(E) L-3 (BR-2-7) 和 (G) L-4 (BR-5-3) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊接 種於番荔枝離葉，(B、D、F 和 H) 為 5 天後拍照觀察。每組處理 5 重複 (n = 5)。
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附錄 7、溫度對 4 株黑腐病菌 Lasiodiplodiasp. 分離株之影響。將病原菌株培養 於 PDA 培養基 28 ℃ 1 天後，取(A) L-1 (BR-2-2)、(B) L-2 (BR-2-4)、(C) L-3 (BR-2-7) 和 (D) L-4 (BR-5-3) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，
將培養基置於 22、28 和 37 ℃培養箱，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度，每 處理 4 重複(n=4)，利用 SPSS 軟體經由 Duncan 氏檢定法分析(p＜0.05)，星號(*) 代表現統計分析具顯著差異。
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附錄 8、芽孢桿菌 Bacillus spp. HS1 及 HS2 對 6 株病原菌菌絲生長之影響。將 HS1 及 HS2 培養於 LB 培養基與病原菌株培養於 PDA 培養基 28 ℃ 2 天後，
取 P-1 (1-33-1) 和 P-2 (5-2-4) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，
將(A) HS1 與 (B) HS2 畫於菌絲塊 1.5 cm 處，每隔 12 小時記錄其菌絲生長速 度。取 L-1 (BR-2-2)、L-2 (BR-2-4)、L-3 (BR-2-7) 和 L-4 (BR-5-3) 分離株之直 徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，將(C) HS1 與 (D) HS2 畫於菌絲塊 2.5 cm 處，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度。每處理 4 重複(n=4)，利用 SPSS 軟 體經由 Duncan 氏檢定法分析(p＜0.05)，星號(*) 代表現統計分析具顯著差異。
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附錄 9、奈米級鈣離子對 6 株病原菌菌絲生長之影響。取(A) P-1 (1-33-1) 和 P-2 (5-2-4) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於含有奈米級鈣離子(2 %) 的 PDA 培 養基，每隔 12 小時記錄其菌絲生長速度。取(B) L-1 (BR-2-2)、L-2 (BR-2-4)、
L-3 (BR-2-7) 和 L-4 (BR-5-3) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於含有奈米級 鈣離子(2 %) 的 PDA 培養基，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度。
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附錄 10、咖啡發酵液對 6 株病原菌菌絲生長之影響。將病原菌株培養於 PDA 培 養基 28 ℃ 2 天後，取(A) P-1 (1-33-1) 和 P-2 (5-2-4) 分離株之直徑 0.8 cm 菌 絲塊放置於含有咖啡發酵液(10 %) 的 PDA 培養基，每隔 12 小時記錄其菌絲生 長速度。取(B) L-1 (BR-2-2)、L-2 (BR-2-4)、L-3 (BR-2-7) 和 L-4 (BR-5-3) 分離 株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於含有咖啡發酵液(10 %)的 PDA 培養基，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度。
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附錄 11、番荔枝種子水萃液對 6 株病原菌菌絲生長之影響。取(A) P-1 (1-33-1) 和 P-2 (5-2-4) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於含有番荔枝種子水萃液(10 %) 的 PDA 培養基，每隔 12 小時記錄其菌絲生長速度。取(B) L-1 (BR-2-2)、L-2 (BR-2-4)、L-3 (BR-2-7) 和 L-4 (BR-5-3) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於含 有番荔枝種子水萃液(10 %) 的 PDA 培養基，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度。
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附錄 12、混合藥劑與農藥對 6 株病原菌菌絲生長之影響。將病原菌株培養於 PDA 培養基 28 ℃ 2 天後，取(A) P-1 (1-33-1) 和 (B) P-2 (5-2-4) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置於 PDA 培養基，將混合藥劑 (NTTU 001、NTTU 002)、賽普護 汰寧(S 1500) 及撲克拉錳 (Mn 6000) 添加於菌絲塊 1.5 cm 處紙錠，培養於 28
℃培養箱，每隔 12 小時記錄其菌絲生長速度。取(C) L-1 (BR-2-2)、(D) L-2 (BR-2-4)、(E) L-3 (BR-2-7) 和(F) L-4 (BR-5-3) 分離株之直徑 0.8 cm 菌絲塊放置 於 PDA 培養基，將混合藥劑 (NTTU 001、NTTU 002)、賽普護汰寧(S 1500) 及 撲克拉錳 (Mn 6000) 添加於菌絲塊 1.5 cm 處紙錠，培養於 28 ℃培養箱，每隔 8 小時記錄其菌絲生長速度。每處理 4 重複(n=4)，利用 SPSS 軟體經由 Duncan 氏檢定法分析(p＜0.05)，星號(*) 代表現統計分析具顯著差異。
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附錄 13、利用孢子接種進行複合性植物保護添加劑防治效果試驗之判斷標準。
Level-0 ：無病徵、 Level-1 ：病徵面積 10 % 以下、 Level-2 ：病徵面積 30 % 以下、 Level-3 ：病徵面積 50 % 以下和 Level-4 ：50 % 以上。
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附錄 14、田間進行綜合病害處理複合性植物保護添加劑防治效果試驗之判斷標 準。Level-0 ：無病徵、 Level-1 ：病徵面積 25 % 以下、 Level-2 ：病徵面積 50 % 以下、 Level-3 ：病徵面積 75 % 以下和 Level-4：75 % 以上。