• 沒有找到結果。

Robson T, Price ME, Moore ML, et al., 2000. Increased repair and cell survival in cells treated with DIR1 antisense oligonucleotides: implications for induced

radioresistance. Int J Radiat Biol 76, 617-23.

Samuel D, Liu YJ, Cheng CS, Lyu PC, 2002. Solution structure of plant nonspecific lipid transfer protein-2 from rice (Oryza sativa). J Biol Chem 277, 35267-73.

Sarowar S, Kim YJ, Kim KD, Hwang BK, Ok SH, Shin JS, 2009. Overexpression of lipid transfer protein (LTP) genes enhances resistance to plant pathogens and LTP functions in long-distance systemic signaling in tobacco. Plant Cell Rep 28, 419-27.

Sels J, Mathys J, De Coninck BMA, Cammue BPA, De Bolle MFC, 2008. Plant pathogenesis-related (PR) proteins: A focus on PR peptides. Plant Physiology

and Biochemistry 46, 941-50.

Sheoran IS, Olson DJ, Ross AR, Sawhney VK, 2005. Proteome analysis of embryo and endosperm from germinating tomato seeds. Proteomics 5, 3752-64.

Shin YJ, Chong YJ, Yang MS, Kwon TH, 2011. Production of recombinant human granulocyte macrophage-colony stimulating factor in rice cell suspension culture with a human-like N-glycan structure. Plant Biotechnol J 9, 1109-19.

Sobajima H, Takeda M, Sugimori M, et al., 2003. Cloning and characterization of a jasmonic acid-responsive gene encoding 12-oxophytodienoic acid reductase in suspension-cultured rice cells. Planta 216, 692-8.

Sossountzov L, Ruiz-Avila L, Vignols F, et al., 1991. Spatial and temporal expression of a maize lipid transfer protein gene. Plant Cell 3, 923-33.

Soufleri IA, Vergnolle C, Miginiac E, Kader JC, 1996. Germination-specific lipid transfer protein cDNAs in Brassica napus L. Planta 199, 229-37.

Sun JY, Gaudet DA, Lu ZX, Frick M, Puchalski B, Laroche A, 2008. Characterization and antifungal properties of wheat nonspecific lipid transfer proteins. Mol Plant

Microbe Interact 21, 346-60.

1992. In Vitro Antifungal Activity of a Radish (Raphanus sativus L.) Seed Protein Homologous to Nonspecific Lipid Transfer Proteins. Plant Physiol 100, 1055-8.

Thoma S, Hecht U, Kippers A, Botella J, De Vries S, Somerville C, 1994.

Tissue-specific expression of a gene encoding a cell wall-localized lipid transfer protein from Arabidopsis. Plant Physiol 105, 35-45.

Tomassen MM, Barrett DM, Van Der Valk HC, Woltering EJ, 2007. Isolation and characterization of a tomato non-specific lipid transfer protein involved in polygalacturonase-mediated pectin degradation. J Exp Bot 58, 1151-60.

Vignols F, Wigger M, Garcia-Garrido JM, Grellet F, Kader JC, Delseny M, 1997. Rice lipid transfer protein (LTP) genes belong to a complex multigene family and are differentially regulated. Gene 195, 177-86.

Wang C, Yang C, Gao C, Wang Y, 2009a. Cloning and expression analysis of 14 lipid transfer protein genes from Tamarix hispida responding to different abiotic stresses. Tree Physiol 29, 1607-19.

Wang NJ, Lee CC, Cheng CS, et al., 2012. Construction and analysis of a plant non-specific lipid transfer protein database (nsLTPDB). BMC Genomics 13

Suppl 1, S9.

Wang SY, Wu JH, Ng TB, Ye XY, Rao PF, 2004. A non-specific lipid transfer protein with antifungal and antibacterial activities from the mung bean. Peptides 25, 1235-42.

Wang X, Wang H, Li Y, Cao K, Ge X, 2009b. A rice lipid transfer protein binds to plasma membrane proteinaceous sites. Mol Biol Rep 36, 745-50.

Wu G, Robertson AJ, Liu X, et al., 2004. A lipid transfer protein gene BG-14 is differentially regulated by abiotic stress, ABA, anisomycin, and sphingosine in bromegrass (Bromus inermis). J Plant Physiol 161, 449-58.

Ye X, Al-Babili S, Kloti A, et al., 2000. Engineering the provitamin A (beta-carotene) biosynthetic pathway into (carotenoid-free) rice endosperm. Science 287, 303-5.

Yeats TH, Rose JK, 2008. The biochemistry and biology of extracellular plant lipid-transfer proteins (LTPs). Protein Sci 17, 191-8.

Yu LM, 1995. Elicitins from Phytophthora and basic resistance in tobacco. Proc Natl

Acad Sci U S A 92, 4088-94.

Yu SM, Kuo YH, Sheu G, Sheu YJ, Liu LF, 1991. Metabolic derepression of

alpha-amylase gene expression in suspension-cultured cells of rice. J Biol Chem

266, 21131-7.

Yubero-Serrano EM, Moyano E, Medina-Escobar N, Munoz-Blanco J, Caballero JL, 2003. Identification of a strawberry gene encoding a non-specific lipid transfer protein that responds to ABA, wounding and cold stress. J Exp Bot 54, 1865-77.

Zachowski A, Guerbette F, Grosbois M, Jolliot-Croquin A, Kader JC, 1998.

Characterisation of acyl binding by a plant lipid-transfer protein. Eur J Biochem

257, 443-8.

Zavallo D, Lopez Bilbao M, Hopp HE, Heinz R, 2010. Isolation and functional characterization of two novel seed-specific promoters from sunflower (Helianthus annuus L.). Plant Cell Rep 29, 239-48.

Zhang D, Liang W, Yin C, Zong J, Gu F, 2010. OsC6, encoding a lipid transfer protein, is required for postmeiotic anther development in rice. Plant Physiol 154,

149-62.

柒、圖表

A.

B.

圖一、Osm10 在液態培養基中的含量變化情形。

A. 懸浮培養水稻細胞期間,定期取定量培養基 (10 μL) 進行 15% SDS-PAGE 及 銀染呈色。B. 將圖 A 的銀染呈色結果,利用 Fujifilm LAS-3000 影像分析儀進行 拍攝,並以 Multi Gauge V2.1 影像分析軟體分析 Osm10 蛋白質含量的變化情形,

圖中的數據為三個重複的平均值及其標準差。

0 2 4 6 8 10 12 14

2 4 6 8 10 12 14

Culturing days Osm10 intensity (x106 U)

A.

B.

圖二、水稻細胞培養七天後,分泌性蛋白質樣品中 Osm10 的測量值與總蛋白質 量的相關性。

A. 在水稻細胞培養七天後,將 80%硫酸銨飽和度鹽析的分泌性蛋白質 2.5 – 15 μg 進行 15% SDS-PAGE 及 CBB 呈色。B. 將圖 A 的 CBB 呈色結果,利用 Fujifilm LAS-3000 影像分析儀拍攝,並以 Multi Gauge V2.1 影像分析軟體分析 Osm10 蛋 白質含量,作出 Osm10 測量值與分泌性蛋白質總量的線性關係圖。

y = 385363x + 2E+06 R² = 0.9962

0 1 2 3 4 5 6 7 8

0 2 4 6 8 10 12 14 16

Amount of secretory proteins (μg) Osm10 intensity (x106 U)

圖三、水稻細胞培養七天後,Osm10 佔全部分泌性蛋白質的比例分析。

培養七天後的水稻細胞分泌性蛋白質樣品 (10 μg) 進行 15% SDS-PAGE 及 CBB 呈色。Lane 1 – 4 為各自獨立的水稻分泌性蛋白質樣品。

表一、培養七天後的水稻細胞分泌性蛋白質樣品中,Osm10 的含量比例。

將圖三的 CBB 呈色結果,利用 Fujifilm LAS-3000 影像分析儀拍攝,並以 Multi Gauge V2.1 影像分析軟體分析樣品的 Osm10 含量與總蛋白量的測量值,將兩者 相除即為 Osm10 含量比例。

Sample # Osm10 含量 (U) 總蛋白量 (U) Osm10 含量比例 (%)

1 78518586.16 277067826.39 28.3

2 77294278.16 254157218.39 30.4

3 76342898.16 237931894.39 32.1

4 77389817.16 238502078.39 32.4

平均 77386394.91 251914754.4 30.7

標準差 890550.3 18376851 4.8

圖四、水稻細胞分泌性蛋白質的二維膠體電泳分析結果。

水稻細胞分泌性蛋白質 (10 μg) 經過 80%飽和濃度硫酸銨濃縮與二次水透析之 後,以 pH 3-10 的 IEF 膠體電泳與 15% SDS 膠體電泳進行分離,並以 CBB 染色。

圖中標示 I、II、III 為取樣進行 LC-MS/MS 蛋白質定序的樣品位置。

表二、Osm10 蛋白質的胺基酸定序結果。

灰底為樣品定序與蛋白質資料庫的序列吻合的片段,sequence coverage 為樣品定序符合蛋白質資料庫序列的比例。

Sample Gene locus Amino acid sequence Sequence

coverage

Designated name I Os11g0114900 MARPANNNYAAAVMVVALLVAAPAASAVTC

GQVVSMLAPCIMYATGRVSAPTGGCCDGVR TLNSAAATTADRQTTCACLKQQTSAMGGLR PDLVAGIPSKCDVNIPYAISPSTDCSRVH

42% Osm10-I

II Os12g0114500 MARAANNKYVAAVMVVALLLAAPAASAVTC GQVVSMLAPCIMYATGRVSAPTGGCCDGVRT LNSAAATTADRQTTCACLKQQTSAMGGLRPD LVAGIPSKCGVNIPYAISPSTDCSRVH

66% Osm10-II

III Os01g0822900 MAPRCATLAVVVVLVAAVVAPPTAVRAAISCS AVYNTLMPCLPYVQAGGTVPRACCGGIQSLLA AANNTPDRRTICGCLKNVANGASGGPYITRAA ALPSKCNVSLPYKISTSVNCNAIN

66% Osm10-III

表三、Osm10 的推定物化性質。

MW: molecular weight, pI: isoelectric point

Signal peptide 為 SignalP 3.0 Server 分析結果;MW 與 pI 為 ExPASy Proteomics Server 分析結果。

Desinated name Chromosome # Signal peptide (aa) MW (kDa) pI Osm10-I 11 27 12.00 (9.39)* 8.49 (8.20) Osm10-II 12 26 11.98 (9.41) 8.90 (8.52) Osm10-III 1 26 12.09 (9.46) 9.28 (9.07)

*註:括號中的數值是除去 signal peptide 之後的 MW 與 pI 值。

圖五、Osm10-I~III 的胺基酸序列特徵分析結果。

灰底為 LTP 保守性的 8-Cys motif;方框為 LTP1 的兩段保守性胺基酸序列 (T/S-X-X-D-R/K 與 P-Y-X-I-S) (Douliez et al., 2000);H1 ~ H4 是形成 α-helix 的序 列。

表四、Osm10 與已知功能的 LTP 之胺基酸序列相同度比較。

Amino acid sequence identity Function Reference Osm10-I Osm10-II Osm10-III

Osm10-I 100% 96% 39%

Osm10-II 96% 100% 39%

Osm10-III 39% 39% 100%

P29420 52% 52% 35% Antifungal activity Terras et al. 1992 Q43871 49% 50% 44% Antifungal activity Molina and

Garcia-Olmedo 1993

Q43766 46% 50% 40% Antifungal activity Molina and

Garcia-Olmedo 1993 Q43767 49% 52% 43% Antifungal activity Molina and

Garcia-Olmedo 1993 Q41258 27% 26% 23% Antifungal activity Cammue et al. 1995 Q2QYL3 48% 49% 42% Antifungal activity Cammue et al. 1995 ABO28527 54% 55% 42% Antifungal activity Kirubakaran et al. 2008 Q8W453 -* 23% 24% SAR Signaling Maldonado et al. 2002 CAA65680 49% 50% 38% Cutin formation Hollenbach et al. 1997 Q9SW93 53% 52% 41% Pollen tube growth Park et al. 2000 Q03461 53% 54% 47% Cell wall loosening Nieuwland et al. 2005

*註:「-」表示序列間相同度太低,BLAST 結果不具參考意義。

圖六、Osm10-I、Osm10-II、Osm10-III 的保守性胺基酸序列立體位置。

本研究利用 SWISS-MODEL Server 模擬 Osm10 的立體結構,Osm10-I 與 Osm10-II 的模板編號都是 1fk5A,與模板的序列相同度分別是 59.14%以及 60.22%;

Osm10-III 的模板編號是 2algB,與模板的序列相同度是 48.91%。使用 PyMOL 軟體以「cartoon」模式呈現 Osm10 模型,紅色部分是 LTP1 保守性序列

T/S-X-X-D-R/K,藍色部分是 LTP1 保守性序列 P-Y-X-I-S,superimpose 為將兩模 型重疊在一起。

A. B.

圖七、Osm10-I & II 與 Osm10-III 的疏水性凹陷開口之差異。

使用 PyMOL 軟體以「surface」(左) 及「cartoon」(右) 模式呈現 Osm10 模型,紅色部分是 LTP1 保守性序列 T/S-X-X-D-R/K,藍色部 分是 LTP1 保守性序列 P-Y-X-I-S,黃色部分是非極性胺基酸,Osm10 的疏水性凹陷開口處之差異以紅圈標示。A、B 圖為以不同角度 觀察 Osm10 立體模型的影像。

A.

B.

圖八、Osm10-I~III 與其他功能性蛋白質的立體結構比對。

取具有不同生物功能的 LTP 與 Osm10-I~III 以 PyMOL 軟體進行立體結構的相似 程度分析。ABO28527 (抗真菌活性) 的模板編號是 1fk5A,與模板的序列相同度 是 68.48%;Q8W453 (SAR 訊息傳遞分子) 的模板編號是 2rknA,與模板的序列 相同度是 100%;Q9SW93 (與花粉管生長相關) 的模板編號是 2algB,與模板的 序列相同度是 57.14%。

A. Osm10-I~III 與 ABO28527、Q8W453 及 Q9SW93 的基本立體結構比對。

B. Osm10-I~III 與基本立體結構相似的 LTP(ABO28527 及 Q9SW93)的立體結 構比對。

表五、Osm10 基因的啟動子區域所含有的 cis-acting elements 一覽表。

「Y」代表啟動子包含的 cis-acting elements,「N」代表啟動子不包含的 cis-acting elements。

相關文件