• 沒有找到結果。

五、Electrophoresis Mobility Shift Assay (EMSA)

1. Topo clonning

將心臟發育上三個非常重要的轉錄因子:tin、pnr、dmef2,取得 其cDNA,以 LA Taq (proof reading Taq)進行 PCR 反應,並設計 primer 將整段cDNA 放大,以洋菜膠電泳分離不同大小的 DNA 片段,選取 cDNA 全長大小的片段,挖下存有該片段之洋菜膠體,以 DNA/RNA Extraction Kit (Viogene) 將洋菜膠內的 PCR 產物萃取出來,進行 Topo cloning。

將萃取之PCR產物 0.5 μl,加入ddH2O 0.5 μl、Dilute salt 0.25 μl、

pENTR/TEV/D TOPO vector 0.25 μl,室溫下靜置反應 30 分鐘,便可 得到將PCR產物轉入pENTER/TEV/D的質體,隨即將質體以電穿孔 (electroporation)方式,轉型入大腸桿菌勝任細胞Top 10 內,以抗生素 Karnamycin篩選成功轉型的菌落,再以rTaq作PCR確認,無誤後大量 養菌,並純化其質體DNA (pENTR/TEV/D-gene X)。

2. LR Clonase II reaction

將下列三項依指定濃度、體積混合:

pENTR/TEV/-geneX 以 1X TE buffer 稀釋至 50 ng/μl 取 1.25μl;

目的質體 (pTWF 或 pDEST-17)以 1X TE buffer 稀釋成 150 ng/μl 取 0.25μl;LR clonase II (震盪兩次) 取 0.5 μl;混合後於室溫下靜置反

應1~2 小時,加入 0.25 μl proteinase K 於 37℃下反應 10 分鐘以終止 反應,便能得到標的質體 (pDEST17-gene X)。隨即以電穿孔方式將 標的質體轉入Top 10 勝任細胞中,以抗生素 Carbenicillin 篩選轉型成 功之菌株,以rTaq PCR 檢查再佐以 DNA 定序之方式,確認所轉入之 cDNA 序列正確無誤,以期能表現正確之轉錄因子蛋白 (Tin、Pnr、

Dmef-2)。

確定無誤後,大量養菌並抽取質體 DNA,純化後以電穿孔方式 將標的質體轉型入專司表現蛋白質之勝任細胞—BL21 (plyss),準備 表現蛋白質。

3. 萃取 Tin、Pnr 及 Dmef2 等轉錄因子蛋白質

將轉型成功之 BL21 細菌以千分之ㄧ Carbenicillin 抗生素之 LB 培養液共10 c.c.作隔夜培養,隔天將菌液倒入 50 c.c.同樣含千分之ㄧ 抗生素之培養液中,於37℃培養至 O.D.600 約為 0.6~0.8 左右,加入 IPTG 至最後濃度為 1mM,放回 37℃搖 3.5 小時。取出後,將菌液倒

入50ml 離心管並以 4℃ 6,000 rpm 離心 5 分鐘,去上清液,加入 2 ml 6xHis-Tag Binding buffer 劇烈震盪,加入 125 μl Protease Inhibitor Cocktail,以超音波震盪將細菌震碎,以 4℃ 14,000 rpm 離心 10 分鐘,

取上清液通樹酯管柱 (His-Tag Column)以純化蛋白。

4. 純化 6xHis-Tag 之蛋白質

準備好樹酯管柱,先以ddH2O洗一次後,加入Charge buffer靜置 10 分鐘,再以Binding buffer洗一次,便可準備純化蛋白。將離心好的

上清液全數吸入樹酯管柱內,均勻混勻後,搖4 小時~隔夜(4℃),之 後以Wash buffer洗兩次,加入 200~300μl之Elution buffer靜置 10 分

鐘,以針筒將管柱內液體擠出,便得到純化完成之蛋白質,最後以 Bradfod試劑定量蛋白質,便可進行EMSA。

5. Electrophoresis Mobility Shift Assay (EMSA)

Him enhancer 的後半段 2.2 kb 為模板,以 tin、pnr、dmef-2 之 轉錄因子接合認知序列搜尋,找到一個符合的認知序列,並向前後同 時延長,取總長約25 bp 的一段 DNA 如下:

Tin-5’ ATTGTAACGCACTTGAAGTGCACTC Tin-3’ GAGTGCACTTCAAGTGCGTTACAAT Pnr-5’ CAAGCGAAGCGATAGGGAGACATAT Pnr-3’ ATATGTCTCCCTATCGCTTCGCTTG

Dmef-2-5’ GTTATGTTTTATTTTTAATCCCACA Dmef-2-3’ TGTGGGATTAAAAATAAAACATAAC

將設計好的正反雙股序列加在一起升溫至 95℃,等 5 分鐘後,停止 加熱並使其緩緩冷卻,兩互補股便會慢慢結合成雙股序列。將雙股 DNA 稀釋至 2.5μM 加入 Binding buffer(15mM HEPES-KOH pH 8.0, 40mM KCL, 1mM EDTA, 0.5mM DTT, 5% Glycerol)最後加入定量濃 度的純化蛋白(Tin、Pnr、Dmef2-)總體積為 20 μl,室溫下靜置反應 30 分鐘,然後立即以 6% acrylamide Gel/0.5X TBE 以電壓 80V 先跑 10 分鐘後,再以 120V 跑至 60% ~ 70%,以千分之ㄧ濃度的 SYBR Green (染 DNA)染色 20 分鐘,用一次水洗 10 秒兩次,便可照相;或 者染SYPRO Ruby (染蛋白質)隔夜,再退染後以 Typhoon 照相 (Ryan, 2007 #12; Grove, 1998 #25; Jing, 2003 #128; Gajewski, 2001 #33;

Stronach, 1999 #129)。

相關文件