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第四章 材料與方法

4.2 實驗方法

4.2.7 血漿葡萄糖濃度測定

4.2.3 樣品餵食劑量

Pioglitazone hydrochloride 組(Pio30):溶液濃度為 30 mg/mL,餵食量為 30 mg/kg B.W.

Gallic acid 高劑量組(GA30):溶液濃度為 30 mg/mL,餵食量為 30 mg/kg B.W.

Gallic acid 低劑量組(GA10):溶液濃度為 30 mg/mL,餵食量為 10 mg/kg B.W.

4.2.4 口服葡萄糖耐受性試驗

5 組大鼠經 12 小時禁食後,先採取空腹血糖,再管餵 1.5 g/mL/kg B.W.的葡 萄糖水,之後分別於 30、60、90、120 分鐘(含 0 分鐘共 5 個時間點),使用斷尾 方法各採血一次,採後將血液於 4℃下離心 3000 rpm、20 min,取上清液分析葡 萄糖濃度。

4.2.5 血液的收集與處理

將全血置於含 15 mL 離心管,將血液於 4℃下離心(3000 rpm、20 min),取 上清液分析。

4.2.6 臟器的採集

大鼠犧牲時,採集腹週脂肪及副睪脂肪,秤重後冰-20℃。

4.2.7 血漿葡萄糖濃度測定

取血漿 10 uL 與葡萄糖 Enzymatic kits(Audit Diagnostics)試劑 1mL 混合均 勻,於 37℃水浴 10 分鐘,利用分光光度計測定 500 nm 波長下吸光值,換算葡 萄糖含量。測定原理為 glucose 經由 glucose oxidese 作用,氧化成 gluconic acid 及 H2O2再經由 peroxidase 轉換 phenol 及 4-aminoantipyrine 成為 red quinine,在 500 nm 波長下測定 red quinine 含量。

43 4.2.8 血漿胰島素濃度測定

取 25 uL 血漿及 50 uL Enzyme conjugate ,在室溫下以 70 rpm 搖擺震盪 2 小 時,以 wash buffer 清洗後,加入 TMB 試劑反應 15 分鐘,反應後加入 50 uL stop solution,利用分光光度計測定 450 nm 吸光值。

4.2.9 脂質代謝相關訊息傳遞蛋白測定 a.脂肪細胞蛋白質萃取方法

秤取 0.5-1 g 腎週脂肪(perirenal fat pad),加入生理食鹽水清洗,加入 3 倍量 (1:3)的 RIPA buffer 於均質管中,於冰浴下以組織均質機固定轉速均質 10 分鐘,

移至 15 mL 離心管,於 4℃下離心 3000 rpm/5 min 後,取下層澄清液至 eppendorff,於 4℃下離心 15000 g/20 min,再取下層澄清液至新 eppendorff,冰 -80℃貯存。

b.蛋白質萃取液溶液配置

ddw 8.7 mL / 10x RIPA buffer 1 mL / 100mM PMSF 100 uL / Phosphatase Inhibitor Cocktail2 100 uL / Phosphatase Inhibitor Cocktail3 100 uL

c.西方墨點法分析 1.蛋白質定量

以胎牛血清(BSA)做為蛋白質標準液,配置由不同濃度所構成的檢量線 (0-500 ug/mL),分別取 10 uL 的組織均質液及 BSA 至 96 well,加入 190 uL Bio-Rad protein assay dye,利用分光光度計測定 595nm 吸光值,再以蛋白標準品的濃度 與吸光值做出標準曲線,求得樣品蛋白質濃度。

2.蛋白質變性(denature)

將脂肪蛋白質溶液,加入 sample buffer 混合,以 95℃加熱 10 分鐘,經冰浴

44 冷卻後,冰-20℃貯存。

3.蛋白質電泳(electrophoresis)

選用適當的隔板厚度(1.0、1.5 mm)的長玻璃,製備 10%之焦集膠(stacking gel) 及分離膠(separation gel),凝固後將膠片組合架至電泳槽心上,倒入電泳緩衝液。

利用針筒清理 stacking gel 內的殘膠,依序注入 protein marker 及蛋白溶液,以固 定電壓 50V 進行電泳 40 min,待樣品蛋白進入 separation gel 階段,改用 100-120V 繼續電泳,待追蹤染料(Dye)跑離膠體後,取出膠片,浸泡轉印緩衝溶液 10min。

4.蛋白質轉印(transfer)

將 PVDF 膜浸泡甲醇(Methanol)溶液 10 min 後,使用轉印緩衝溶液浸泡 10 min。若使用半乾式轉漬槽,其底部為陽極電極板,上部為陰極電極板,放置順 序由下而上為濾紙、PVDF 膜、膠片、濾紙,蓋上蓋後設定電壓 10-15V、30-60 分鐘。若採用濕式電泳槽,黑色槽心為陰極,紅色槽心為陽極,放置順序由黑色 夾片為底依序為濾紙、膠片、PVDF 膜、濾紙,黑色夾片面向黑色槽心放置,於 電泳槽中放入攪拌棒(Stir bar)並置於攪拌器上、蓋上蓋後設定電壓 100V、60 min,並於 4℃低溫條件下處理。

5.蛋白質阻斷(blocking)

將轉漬完成的 PVDF 膜,置入含有 5%脫脂奶粉的 Blocking Buffer,浸漬 2-8 小時。

一級抗體(primary antibody)

將 Blocking 完成的 PVDF 膜,利用 TBST buffer 先漂洗 1 次,再浸漬含有 3%

胎牛血清的一級抗體,一抗濃度為 1:1000-1:2000,於 4℃條件下,緩速搖盪 2-8 小時。

二級抗體(secondary antibody)

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將浸漬一級抗體後的 PVDF 膜,利用 TBST buffer 先漂洗 2 次,每次 10 分 鐘,再浸漬含有 5%脫脂奶粉的二級抗體,二抗濃度為 1:5000-1:10000,於室溫 條件下,緩速搖盪 2 小時。

6.數位影像擷取與分析

將浸漬二級抗體後的 PVDF 膜,利用 TBST buffer 先漂洗 3 次,每次 10 分 鐘,最終再用 TBS buffer 先漂洗 1 次後加入 ECL buffer,於照膠系統中設定壓片 時間並拍攝電泳圖。拍攝後將已編輯過的圖片,點選工具列 Image Tool 選項,

跳出另一視窗並點選 Crop,此時將出現一個紅色框,拉選四個角落的矛點即可 將所要的畫面擷取出來,選擇 Crop,選擇上方工具列 File → Export → Export for Publication,此時將出現一個視窗,選擇 Current View 600 dpi,點選下方 Export,

選擇需要的副檔名(tif,jpg,bmp,png)。

7.西方墨點法之溶液配置 2X Sample buffer

ddw 3.55 mL / 0.5 M Tris-Base (pH6.8) 1.25 mL / glycerol 2.5 mL / 10% SDS 2 mL / 0.5% Bromophenol blue 0.2 mL/ β-mercaptoethanol 500 uL

1.5 M Tris-Base / pH 8.8

藥品 MW 終濃度 100 mL

Tris-base 121.14 1.5 M 18 g Add ddH2O dilute to 100 mL / 0.22 或 0.45 filter 過濾/ 4℃

0.5 M Tris-Base / pH 6.8

藥品 MW 終濃度 100mL

Tris-base 121.14 0.5 M 6 g Add ddH2O dilute to 100 mL / 0.22 或 0.45 filter 過濾/ 4℃

10%SDS buffer

46

47 TBST buffer

藥品 MW 終濃度 1 L

Tris-base 121.14 4 mM 2.4 g NaCl 58.44 100 mM 29 g

Tween-20 0.01% 1 mL

Add ddH2O dilute to 1 L / pH=7.6

Blocking Buffer 3% (for primary antibody) BSA 3 g / 100 mL TBST buffer

Blocking Buffer 5% (for blocking&secondary antibody) Skim milk powder 5 g / 100 mL TBST buffer

Stripping buffer

藥品 MW 終濃度 1 L

Glycine 75.07 192 mM 14 g

SDS 288.38 0.1% 1 g

Tween-20 0.1% 10 mL

Add ddH2O dilute to 1 L / pH=2.2

4.3 統計方法

實驗結果是以平均值 ±標準偏差(Mean±SD)表示,數據統計採用 SAS ( Statistical Analysis System, SAS Institute Inc., USA )軟體執行 One way ANOVA 分 析,並依鄧氏多變域測驗(Duncan’s multiple range test)檢定各實驗組間之差異,

在統計上 P<0.05 視為具顯著差異。

48 第五章 結果

5.1 灌食沒食子酸 4 週後大鼠進行口服葡萄糖耐受性試驗血漿葡萄糖濃度之變化 大鼠灌食沒食子酸 4 週後行口服葡萄糖耐受性試驗,結果如圖 5-1 所示。HF 組的血漿葡萄糖濃度,於 0、30、60、90、120 分鐘均明顯高於另外 4 組。GA30 組的血漿葡萄糖濃度,於 0、30 分鐘均明顯低於 GA10 組,但於 60、90、120 分 鐘則無顯著差異。

5.2 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中葡萄糖濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中葡萄糖濃度,結果如圖 5-2 所示。

HF 組的血漿葡萄糖濃度顯著高於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、GA30 組、GA10 組之間沒有顯著差異。

5.3 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中果糖胺濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中果糖胺濃度,結果如圖 5-3 所示。

HF 組的血漿中果糖胺濃度顯著高於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、GA30 組、GA10 組之間沒有顯著差異。

5.4 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中胰島素濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中胰島素濃度,結果如圖 5-4 所示。

HF 組的血漿胰島素濃度顯著高於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、GA30 組、GA10 組之間沒有顯著差異。

5.5 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中

C 胜鏈濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中葡萄糖濃度,結果如圖 5-5 所示。

HF 組的血漿葡萄糖濃度顯著低於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、GA30

49 組、GA10 組之間沒有顯著差異。

5.6 灌食沒食子酸 4 週後大鼠體內脂肪組織堆積之變化

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪及副睪脂肪進行秤重,結果如圖 5-6 所示。HF 組的脂肪組織克數顯著高於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、

GA30 組、GA10 組之間沒有顯著差異。

5.7 灌食沒食子 4 酸週後大鼠於禁食情況下血漿中三酸甘油酯濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中三酸甘油酯濃度,結果如圖 5-7 所 示。HF 組的血漿中三酸甘油酯濃度顯著高於另外 4 組(p<0.05)。Normal 組與 Pio 組、GA30 組、GA10 組之間沒有顯著差異。Pio 組濃度顯著低於 GA30 組(p<

0.05),但與 GA10 組沒有顯著差異。

5.8 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中游離脂肪酸濃度之變化

大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中游離脂肪酸濃度,結果如圖 5-8 所 示。HF 組的血漿中游離脂肪酸濃度顯著高於 Normal 組及 Pio 組,但與 GA30 組、

GA10 組沒有顯著差異。Normal 組濃度顯著高於 Pio 組,但與 GA30 組、GA10 組沒有顯著差異。

5.9 灌食沒食子酸 4 週後大鼠於禁食情況下血漿中高密度脂蛋白濃度之變化 大鼠飼養 17 週後,禁食犧牲分析血漿中高密度脂蛋白濃度,結果如圖 5-9 所示。HF 組的血漿中高密度脂蛋白濃度顯著低於 Normal 組及 Pio 組,但與 GA30 組、GA10 組沒有顯著差異。Normal 組與 Pio 組、GA30 組、GA10 組之間沒有 顯著差異。

5.10 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 Glut4 蛋白表現量之影響

50

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-10 所示。HF 組的 Glut4 蛋白表現量顯著低於 Normal 組、Pio 組、GA30 組,

但與 GA10 組沒有顯著差異。

5.11 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 IR 蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-11 所示。HF 組的 IR 蛋白表現量顯著低於 Normal 組、Pio 組、GA30 組,

但與 GA10 組沒有顯著差異。

5.12 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 PKC-ζ蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-12 所示。HF 組的 PKC-ζ蛋白表現量顯著低於另外 4 組。GA30 組及 GA10 組表現量顯著高於 Normal 組。

5.13 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 PFK 蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-13 所示。HF 組的 PFK 蛋白表現量顯著低於 Normal 組、HF 組、GA10 組,

但與 Pio 組沒有顯著差異。

5.14 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 PK 蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-14 所示。HF 組的 PFK 蛋白表現量顯著低於 Normal 組,但與另外 4 組沒有 顯著差異。

5.15 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 FAS 蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如

51

圖 5-15 所示。HF 組的 FAS 蛋白表現量顯著低於 Pio 組及 GA30 組,但與另外 2 組沒有顯著差異。

5.16 灌食沒食子酸 4 週後對大鼠腎周脂肪 ATGL 蛋白表現量之影響

大鼠飼養 17 週後,犧牲採集腎周脂肪均質後,進行西方墨點法測定結果如 圖 5-16 所示。HF 組的 ATGL 蛋白表現量顯著低於 Normal 組、Pio 組、GA30 組,

但與 GA10 組沒有顯著差異。Pio 組顯著高於所有組別。

52 第六章 討論

6.1 高果糖動物模式

本實驗中以高果糖飼料餵食大鼠 11 週後,造成血糖、血脂、血漿中胰島素 的濃度顯著增加。因此證實長期餵食高果糖飼料可誘發大鼠體內產生高血糖、高 血脂、高胰島素血症等現象(Punithavathi et al., 2011; Prince, 2011)。

6.2 灌食沒食子酸對高果糖誘導高血糖大鼠高血糖症之影響

實驗動物灌食沒食子酸 4 週後,觀察 OGTT、犧牲後血漿葡萄糖濃度及血漿

實驗動物灌食沒食子酸 4 週後,觀察 OGTT、犧牲後血漿葡萄糖濃度及血漿