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第三章、材料與方法

一、實驗設計

3T3-L1 Cell

探討 HBP1 在脂肪分化(adipocyte differentiation)過程的表現 Aim 1

Aim 2

HBP1 的表現量影響脂肪細胞分化過程

利用 siRNA 將細胞中 HBP1 表現降 解,觀察 HBP1 對脂肪分化的影響

Aim 3

Quercetin 透過對 HBP1 的調控影響 脂肪分化過程

Quercetin 是否可抑制 脂質生合成

Quercetin 階段性調控 HBP1 影響脂質生合成

第三章 材料與方法 Bovin Serum Albumin USBiological USA 4℃

Bromophenol Blue Bio Basic Inc. Canada 室溫

DNase I stock solution Qiagen Germany -20℃

第三章 材料與方法

3-isobutyl-1-methyl-xanthine Sigma US -20℃

L

L-Glutamine Gibco USA -20℃

Luria Bertani medium Himedia India 室溫 Luria Bertani Agar Himedia India 室溫 Lipofectamine TM 2000 Invitrogen USA 4℃

Lipofectamine TM RNAi MAX

Invitrogen USA 4℃

第三章 材料與方法

Penicillin/Streptomycin Gibco USA -20℃

Phosphatase Inhibitors Cocktail

Sigma US -20℃

Polybrene Sigma US -20℃

Protease Inhibitors Cocktail Sigma US -20℃

Protein Assay Dye Reagent Bio Rad CA 4℃

第三章 材料與方法

MultilmageTMLight Cabinet Alpha Innotech Corporation Mulpid®-2 plus electrophoresis ADVANCE

CLC-110 chemiluminescence detector TOHOKU

CLC-10 CL counter TOHOKU

PowerPacTM Basic Power Supply BioRad Thermo Scientific NanoDrop 1000

第三章 材料與方法

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三、細胞培養

資料來源:10 (一) 細胞株

3T3-L1前脂肪細胞株:購自ATCC®Catalog NO. CL-173TM,組織來源:小 鼠纖維母細胞。

HEK-293T人類胚胎腎臟上皮細胞株,由賴志河老師實驗室機構所贈。

(二) 試劑配置

DMEM ( high glucose)

Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) 粉末溶於800 ml 的無菌水中,

加入1.5 g Sodium Bicarbonate (Sigma),再以1N HCl 調整pH值為7.1~7.2之間,定 量1 L後以過濾膜 (0.22 μm) 過濾,加入 10%Bovine serum (3T3-L1 cell) /Fetal Bovine Serum (293T cell)、2% L-Glutamine 與1% Antibiotic Antimycotic,而成為 最終之細胞培養液。

1X磷酸緩衝液(Phosphate-buffer saline;PBS)

以10X PBS (UniRegion Bio-Tech)以滅菌水稀釋為 1X PBS,經 121℃、30分鐘高 壓滅菌後使用並存放於室溫備用。

第三章 材料與方法

3-isobutyl-1-methyl-xanthine/10 μg/mL insulin 於 high glucose DMEM 培養兩 天,每兩天更換 10 μg/mL Insulin / 100 μg/mL Biotin 培養液,持續培養至分

Dexamethasone(Sigma) 0.098g 0.25M

DMSO 1 mL

先將0.098 g DEX power 溶於 1 mL DMSO中,即為0.25M

第三章 材料與方法

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藥品 需要量 Stock conc. conc.

0.25M DEX 10 μl 0.25 mM 0.25μM

DMSO 10 mL

先將0.25M DEX以DMSO 稀釋為0.25 mM DEX,分裝於滅菌 eppendorf中,

貯存於-20℃。

2、0.5 M 3-isobutyl-1-methyl-xanthine(MIX) :1000x stock

藥品 需要量 Stock conc. conc.

3-isobutyl-1-methyl-xanthine(MIX) (Sigma)

0.111g 0.25 M 0.25 mM

DMSO 1 mL

先將0.111g MIX power 溶於 1 mL DMSO中,分裝於滅菌 eppendorf中,貯存 於-20℃。

3、100μg/ mL Biotin:1000x stock

藥品 需要量 Stock conc. conc.

Biotin(Sigma) 0.01 g 100 μg/ mL 0.1 μg/ mL

二次水 100 mL

先將0.01g biotin power 溶於 100 mL二次水中,以0.2μm filter過濾分裝於 eppendorf中,貯存於-20℃。

第三章 材料與方法

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4、10 mg/ mL Insulin:1000x stock

藥品 需要量 Stock conc. conc.

第三章 材料與方法

取Oil-red O 212 mg加入isopropanol 60 mL中,蓋上蓋子,stir at 4℃ overnight,

以 Whatman 3MM paper過濾,過濾後Oil-Red O solution:dd water=3:2混勻後,

4 ℃ overnight , 最 後 再 以 Whatman 3MM paper 過 濾 , 4 ℃ 待 使 用 。 10 % formalin/PBS 是取 27.3 mL 37% formaldehyde solution+ 72.97 mL PBS。

細胞染色

將分化至第八天的3T3-L1 脂肪細胞,吸除培養液,以 PBS潤洗兩次,加入 2 mL 的10% formalin/PBS固定細胞一小時,再以dd water清洗數次,加入 1.5 mL Oil-red O(蓋過細胞即可)染10 min,吸除染劑,以dd water 清洗數次,室溫倒扣 晾乾於顯微鏡下即可照相。

第三章 材料與方法 PGL3-HBP1-LUC transient overexpressing HBP1 RSV-β-gal (Rous sarcoma virus β-galactosidase) internal vector control

質體來源:Dr. Yee Lab 機構.

(二) 實驗步驟

轉型 (Transformation)

將 DH5α competent cells (ECOS 101;Yeastern Biotech) 自-80℃取出後回

第三章 材料與方法

質體小量製備--使用QIAGEN® Plasmid Mini Kit (QIAGEN)

將上述培養 24 小時之菌體離心15 分鐘 (6000g,4℃) 後,將上清液倒掉,

第三章 材料與方法

質體大量製備--使用QIAGEN Plasmid Maxi Kit (QIAGEN)

將上述質體鑑定正確之小量質體,放入含有Ampicillin之LB培養液300 ml 培

第三章 材料與方法

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pellet使其乾燥5~10 分鐘後,以200~300μl 二次水將其溶解,保存於-20℃。

七、冷光酵素報導基因分析法--Luciferase Gene Reporter Assay

資料來源:73 (一) 原理

生物發光現象是 Luciferin 在 Luciferase 的催化下進行氧化反應所產生。

Luciferase + O2

Luciferin---products + CO2 + light Other+ elements

(二) 實驗步驟 轉染

以 lipofectamineTM 2000 轉染 0.4 μg HBP1 -2kb promoter 和 0.2 μg RSV-β -gal (internal control)質體至培養於 24 well 每一孔盤中的 293T 細胞,24 小時後,

給予不同濃度的 insulin、TZD 和 GW9662 24 小時後,以 luminometer 分析 Luciferase 活性。

打破細胞

使用 4℃的 PBS 清洗細胞兩次,加入含有 DTT 的 Lysis buffer(DTT final 0.5mM),24 well 每一個 well 25μl,在搖晃機上搖 30 分鐘(冰上),將細胞放置 eppendorf,以 11800 rpm,離心 2 分鐘,將上清液放置新的 eppendorf,放到-80

℃冰箱中保存備用。

分析

加入 12.5μl 的 buffer A 至每一 well,將 2-10μl(5μl)的 test sample 加入 至 well,等待 10 分鐘,等待的時間配置 bufferB,稀釋 galacton-plus substrate 至 bufferB (1:100),加入 buffer B,每個 well 加入 50μl,測量 Luciferase。放置 室溫 30 分鐘,加入 50μl Accelerator II,等 1-2sec,立刻測量β-galactosidase。

第三章 材料與方法

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八、Transient HBP1 knockdown 之3T3-L1 細胞株

資料來源:74 (一) RNA干擾術(RNA interference;RNAi)

背景

RNAi 最早 於 1990 年時 被 發 現, 植 物學 家 Jorgensen 等 將 查 爾酮 合 酶 (chalcone synthase) 的基因置於一個 promoter 後面,於矮牽牛花中,希望藉由增 加一套基因使花色更鮮豔,結果發現不但多一套的基因沒有表現,原本存在的那 一 套 基 因 反 而 失 去 功 能 而 出 現 白 花 , 當 時 稱 此 現 象 為 「 共 同 抑 制 (co-suppression)」。1995年,Guo 和Kemphues 利用反義股RNA (anti-sense RNA) 阻斷了parf-1 肌肉蛋白的表現,同時,在對照組實驗中,發現 sense RNA 亦可 抑制parf-1的表現。1998 年,Fire 與Mello 在線蟲(Caenorhabditis elegans) 上也 發現這種RNA 干擾現象,並首度被稱為RNAi。直到2001 年初,Thomas Tuschl 證明了在哺乳動物細胞中,亦可以使用RNAi 來抑制特定基因的表現,因此RNAi 核酸誘導沉默複合體 (RNA-induced silencing complex;RISC) 辨識並結合,使雙 股的siRNA解開,形成sense 與antisense 兩個單股的RNA,並將其中的正義股 (sense) 分解,保留反義股 (antisense)。而保留的反義股則會引導RISC結合至互 補的 mRNA上,之後,mRNA會被RISC切斷進而降解,使其無法轉譯成蛋白質,

因此,目標基因遭到抑制並失去功能。

第三章 材料與方法

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應用

RNAi 技術的應用相當廣泛,在疾病治療應用上,許多疾病的發生是因為特 定基因表現異常或過度表現,我們可以依所需來關閉非必要或致病基因的功能,

以抑制這些異常或過度活化的基因。理論上說,若能關閉致病基因的表達,則很 多疾病將被治癒。因此,利用RNAi 技術可應用於抑制病毒感染與複製能力、對 抗癌症、心血管與腦血管疾病、糖尿病…等各種疾病的新療法。

圖3-1 RNAi 之作用原理 資料來源:(75)

第三章 材料與方法

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(二) 使用的siRNA

StealthTM RNAi Negative Universal Control Duplexes Lot. 130942A01做為控制組 Mouse HBP1 siRNA購自Thermo SCIENIFIC,其target Sequence如下:

TARGETplus SMARTpool L-054764-01-0005,Mouse HBP1,NM_153198,5 nmol ON-T TARGETplus SMARTpool siRNA J-054764-09,HBP1

Target Sequence:AAUAAAGGUUGGUCGUCAU ON-T TARGETplus SMARTpool siRNA J-054764-10,HBP1

Target Sequence:CCUCAGAUAUACCGGAAAA ON-T TARGETplus SMARTpool siRNA J-054764-11,HBP1

Target Sequence:GGUCAAGAGUUUUCGGGAU ON-T TARGETplus SMARTpool siRNA J-054764-12,HBP1

Target Sequence:CUGAAAGGCACGCGGCUGU

(三) 實驗步驟 轉染至3T3-L1細胞

將3T3-L1細胞培養至10 cm 培養皿中,待長滿後進行繼代培養2~3次,進行 實 驗 。將100 nM siRNA與serum free medium(Opti-MEM®) 混 合 , 加 入 RNAi duplex-Lipofectamine TM RNAi/MAX反應10-20分鐘後,進行Reverse Transfection,

接著加入500μl含有400,000顆3T3-L1細胞於3.5 cm 培養皿,置於37℃、5% CO2

之培養箱內培養,待細胞長滿後即可移至6 well培養皿進行分化和並抽取RNA和 蛋白質以做鑑定。

第三章 材料與方法 (13000rpm),接著換到含有SUPERase-In(RNase inhibitor) 1.5 ml collection tube,

加入30 μl RNase-free water,於室溫下靜置1分鐘,離心1 分鐘(10000 rpm),再

第三章 材料與方法

十、RT-PCR (Reverse Transcriptase PCR)--使用SuperScriptTMⅢ One-Step

RT-PCR System with Platinum

®

Taq DNA Polymerase Kit (Invitrogen)

資料來源:77 (一) 原理

RT-PCR (Reverse Transcriptase PCR,反轉錄酶PCR),其原理是將一段待測 的RNA序列經反轉錄酶的作用轉錄成cDNA,再利用PCR技術將基因片段以幾何

第三章 材料與方法

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Reaction protocol:

Temperature Time Cycle cDNA synthesis

55℃ 30 min 1

Denaturation

94℃ 2 min 1

PCR amplification

94℃ 15 s

55℃ 40 s 40

68℃ 45 s

Final extension

68℃ 5 min 1

4℃ ∞

將 RNA、primer 與試劑混合後,放入PCR 專用之小管中,放入iCycler,

設定上述之反應條件即可。反應完成後,每管加入6 倍之DNA loading dye,再 以含有0.26%之EtBr 之1% Agarose 跑膠,並以MultilmageTMLight Cabinet 分析影 像並儲存。

第三章 材料與方法

HBP1 Forward 5’-ACTCCTGTGATGAGCACATGGA-3’ 501bp Reverse 5’-AGCAGTGCCAAATGGTGGAT-3’

PPAR-γ Forward 5’-TTTTCAAGGGTGCCAGTTTC-3’ 198 bp Reverse 5’-AATCCTTGGCCCTCTGAGAT-3’

CEBP/α Forward 5’- GAACAGCAACGAGTACCGGGTA-3’ 225 bp Reverse 5’- GCCATGGCCTTGACCAAGGAG-3’

C/EBPβ Forward 5’- GCAAGAGCCGCGACAAG-3’ 154bp Reverse 5’- GGCTCGGGCAGCTGCTT-3’

C/EBPδ Forward 5’- AAAGTGCAGGCTTGTGGACT-3’ 87bp Reverse 5’- TTACTCCACTGCCCACCTGT-3’

aP2 Forward 5’-AAGACAGCTCCTCCTCGAAGGTT-3’ 183 bp Reverse 5’-GCGTAAATGGGGATTTGGTCACCA-3’

十一、Quantiative -PCR(Quantiative Reverse Transcription-PCR)使用Taq Man®

One-Step RT-PCR Master Mix Reagents (Roche)

資料來源:78 (一) 原理

Quantiative RT-PCR(即時螢光定量 PCR) 其原理為在 PCR 反應系統中,加入 螢光基團,利用螢光信號積累即時監測整個 PCR 過程,最後以標準曲線對未知 的樣品進行定量分析的方法。Ct 值的含義是 C 為 Cycle,t 代表 threshold,每個

第三章 材料與方法

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反應管內的螢光信號到達設定的閾值時所經歷的 cycle 數,因此,即時螢光定量 PCR 是一種採用外標準曲線定量的方法。

(二) 實驗步驟 Reaction set up:

Component Volume TaqMan®2X Universal PCR Master Mix 20 μl 40X MultiScribeTM and RNase Inhibitor Mix 1 μl

25X primer&probe 1.6 μl

RNA (60 ng) X μl

DEPC-H2O to 40μl

將 RNA、primer 與試劑混合後,放入 real time PCR 96 well 專用之小管中,

放入 Applied Biosystems PRISM®7900HT,上機,設定所需之反應條件即可。

十二、蛋白質萃取

(一) 原理

利用細胞刮除法使細胞破裂並使用 RIPA 裂解液讓細胞快速裂解,使蛋白 溶解變性並抑制蛋白酶的活性使蛋白穩定,再利用超高速離心,取上清液蒐集總 蛋白。

(二) 實驗步驟 藥品配置

第三章 材料與方法

第三章 材料與方法

第三章 材料與方法

第三章 材料與方法

Stock solutions 8%Resolving gel 10%Resolving gel 4%stacking gel

40%Acrylamide 1.6 ml 2 ml 0.39 ml

第三章 材料與方法

第三章 材料與方法

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實驗步驟

膠體的配製依蛋白質分子量的大小而決定配製成 8、10 % 的 SDS-PAGE。

待鑄好的 SDS-PAGE 組合放置電泳槽中,倒入適量的 1× running buffer。將製備 好的蛋白樣品以及標準品小心加入於固定於垂直電泳槽內的 stacking gel 的 well Western lightening chemiluminescence reagent plus 進行呈色反應,利用LAS-4000 mini FUJIFILM 冷光影像系統分析。

第三章 材料與方法

第三章 材料與方法

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樣品分析(每秒不超過 300 顆細胞,每個數據收集 10000 顆細胞),數據以 Modfit LT 軟體進行分析。

十六、統計分析

實驗結果均以平均值 ± 標準差 (Mean ± SD) 表示,利用 Student’s t test 或 Duncan’s multiple range test 比較組間差異。所有數據通過常態分佈檢定,否則 轉型為對數值 (Log)。統計分析以 SAS 套裝軟體 ( version 9.0, SAS institute,

Cary, NC ) 分析,統計比較以 p< 0.05 為具有顯著之差異。

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