我們預期應觀察到隨著粒徑越小，細胞吸收的效率會增加，但從 影 片 中 我 們 卻 意 外 地 發 現 ， 雖 然 螢 光 出 現 速 度 最 快 的 組 別 是 HP4-Curcumin (粒徑最小)，但卻會滯留在細胞膜，並未很快的進入細 胞的中間，而反觀 HS-Curcumin 的組別，雖然出現螢光訊號的時間較 晚，但螢光信號進入細胞內部的速度卻是比 HP4-Curcumin 組別來的 快的，而 HP1-Curcumin 出現螢光的時間雖然比 HP4-Curcumin 的組 別晚，也較 HS-Curcumin 的組別早，但螢光進入細胞中的組別卻是三 組當中最差的。有這個情況的原因目前推測是由於 HP4-Curcumin 組 別的粒徑最小，在培養液中移動的速度較快，所以螢光訊號出現的時 間最早，但因為同時間太多的顆粒要進入細胞，導致在最開始發現的 螢光訊號都滯留於細胞的邊緣，進入的效果並不好，直到細胞膜慢慢 的能夠消化顆粒的流量，讓乳液可以進入細胞當中才看到螢光進入到 細胞的內部。HP1-Curcumin 的組別粒徑相較於 HP4-Curcumin 組別來 的大，卻比 HS-Curcumin 來的小，所以在培養液當中移動的速度中 等，螢光出現的時間也在 HS-Curcumin 與 HP4-Curcumin 中間，但跟 HP4-Curcumin 的組別一樣，出現了細胞膜來不及消化乳液顆粒流量 導致滯留膜上的情況，且由於顆粒較大細胞膜並沒有辦法像消化
41 HP4-Curcumin) 螢光最大值出現的時間並無明顯差異，螢光的亮度卻 是 HP1-Curcumin 最低，而 HS-Curcumin 及 HP4-Curcumin 兩組亮度 則無明顯差異。目前推測可能是如上述說的 HS-Curcumin 移動較慢讓 細 胞 膜 能 夠 完 全 消 化 乳 液 顆 粒 的 流 量 順 利 進 入 細 胞 ， 而 HP4-Curcumin 的組別由於粒子移動速度快，導致在最開始會滯留在 細胞膜上，但是當細胞膜消化這些顆粒的流量後，乳液顆粒依然可以 順利的進入細胞當中，而 HP1-Curcumin 的組別則是因為移動速度稍 快 使 乳 液 顆 粒 滯 留 在 細 胞 膜 中 ， 卻 又 無 法 像 粒 徑 最 小 的 HP4-Curcumin 讓細胞膜可以順利消化流量使乳液進入細胞，所以進 入細胞的狀況相較於 HS-Curcumin 與 P4-Curcumin 較差，故可以觀察 到雖然 HS-Curcumin、HP1-Curcumin、HP4-Curcumin 三組螢光最大 值出現的時間無明顯差異，而亮度卻有差異的結果。
42
在傳統藥物吸收的系統當中，測量 TEER 值的時候，發現電阻值 有下降後回升的情況，目前推測可能細胞需要時間進行分化作業所導 致，但也不排除可能是部分細胞死亡後導致的下降，之後細胞慢慢又 長回來使電阻值又再度回升的情況。在 HPLC 的結果當中，我們觀察 到了 HS-Curcumin、HP1-Curcumin、HP4-Curcumin 三組是有被細胞 吸收的，而 HS-Curcumin 跟 HP4-Curcumin 在第 24 小時的吸收率差 異 並 不 大 ， 可 能 還 需 要 更 多 的 時 間 才 會 出 現 較 明 顯 的 差 異 ， HP1-Curcumin 的吸收率則是三組薑黃素乳液中最差的，此結果與先 前拍攝影片的結果相同。
本研究所建立的藥物吸收活細胞即時影像觀測系統相較於傳統 的吸收模型更加的快速以及便利，活細胞即時影像觀測系統從將細胞 培養在 35 mm 的 glass bottom culture dishes 中培養到實驗結束，所花 費的時間在三天以內，而傳統的細胞模型在等待細胞分化的過程就耗
43
有螢光訊號等，但相較於曠日廢時且不直觀的傳統觀測方式，本研究 所建立的觀測系統更加的省時、方便，是個有潛力值得繼續完善的藥 物吸收觀測平台。
44