第四章 材料與方法
4.3 樣本分析
4.3.4 Real-time 分析
4.3.4.1 Internal Inhibitor Control (IIC) 樣本測試
環境樣本中的 DNA 萃取物中可能含有 PCR 放大抑制物,會造成 qPCR 分析 時未能有效放大 DNA 而被儀器偵測,使得 DNA 濃度定量上有低估的情形,當 樣本進行適當稀釋後,PCR 抑制物也會同步被稀釋,因此可藉由稀釋方式使抑 制物達到去除或不影響 DNA 放大的效果 (C.A Heid, J Stevens, K.J Livak, et al, 1996),本研究將雨刷水 DNA 樣本則進行 5 倍及 10 倍的 DNA 稀釋,自來水樣 本則是進行 5 倍的 DNA 稀釋。
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用 LightCycler® 480 System (Roche Diagnostics GmbH, Basel, Switzerland) 進 行各樣本中 IIC 分析,其 IIC 為 neomycin phosphotransferase gene (GenBank Accession No. V00618)的片段 (bp 472-603)中截取之 DNA (Chen et al., 2010),故 研究中可同步進行分析 Legionella spp. 及 IIC 測試。
每個待測樣本中加入 1l internal inhibitor control (IIC, Biotech)及 300 nM 的 IIC probe (5'-Red610-TGCAATGCGGCGGC-3')於 Legionella spp. PCR 混合試劑中,
並加入 5l 環境 DNA 樣本同步進行 IIC 樣本抑制及 Legionella. spp.濃度測試,
每批次分析中皆含有 IIC control,以 PCR 無菌水 (Roche Diagnostics)取代 5l Legionella DNA 樣本於添加有 IIC 的 PCR 混合試劑中,藉此確認每批次 IIC 測 試皆有正常範圍的放大效率。
試劑 體積 / 樣本 (l) 最終濃度
2× probe master mix (Roche) 10 1×
Leg_forward primer (10M) 0.6 300nM Leg_reverse primer (10M) 0.6 300nM
Leg probe (10M) 0.6 300nM
IIC probe (10M) 0.6 300nM
IIC 1 25fg/PCR
Sterile water 1.6 -
利用在樣本中添加已知 DNA 濃度範圍的 IIC,確認最佳稀釋濃度樣本未受 到抑制物影響,選取 IIC 已知濃度標準為其 Ct 平均值+SD 作為濃度範圍標準值,
若環境樣本之 IIC Ct 值低於此標準值,則視為通過 IIC 測試,而當環境樣本之 IIC Ct 值高於此標準值,視為樣本中的 PCR 抑制物尚未完全去除,則 IIC 濃度 會同步抑制而無正常放大,必須再次進行更多倍數稀釋,並於稀釋後重複進行 Legionella spp.濃度及 IIC 測試,直至 IIC 測試符合標準,並以 IIC 測試符合標
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準時所得樣本稀釋倍數及濃度視為該樣本的 Legionella. spp.濃度。
4.3.4.2 Legionella. spp.real-time PCR 分析
Real-time PCR 之分析方法用 LightCycler® 480 System (Roche Diagnostics GmbH, Basel, Switzerland)進行各樣本中 Legionella. spp.濃度分析,並利用 LegF (5'-CGAGCGCAACCCTTATTGTTAGT)及 LegR (5'-GTCACCGGCAGTCTCATTA GAG)兩種 primer 來辨識及定量 16S rRNA 中的 67-bp 區域之基因,並將其基因 片段進行放大後,搭配 Legionella-specific TaqMan MGB probe (5'-FAM-TCCCC GCCATTACATG -MGBNFQ-3')來進行偵測 (Chen and Chang. 2010)。
定量 Legionella. spp.的混合試劑 (20 l)中含有 10l 之 LightCycler® 480 Probes Master Mix (Roche Diagnostics),300 nM 之 primers (Mission Biotech Co., Taipei, Taiwan),300 nM 的 TaqMan MGB probe (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA),及 5l 環境 DNA 樣本或是 Legionella spp. DNA 標準品,因 Legionella spp.樣本與 Internal Inhibitor Control 樣本進行同步分析,於 Legionella spp.混合 試劑中另外亦會加入 IIC control。
用以 L. pneumophila 分析之 PCR 反應設定如下,先進行 10 分鐘於 95℃下之 活化作用後,進行 50 次的放大步驟 (95℃下 10 秒及 60℃下 1 分鐘),最後在 40
℃下冷卻 10 秒鐘完成 real-time PCR 之結果分析與定量。
Legionella spp.標準品利用 DNA 萃取生長於 BCYEα agar 上之 L.pneumophila SG1 (ATCC33152),並以吸光值 A260nm 定量其濃度,再利用 TE buffer 進行標
Program Cycle Temperature Time
Pre-incubation 1 cycle 95℃ , 10 mins Amplification 50 cycles 95℃ 10 secs
60℃ 1 min
Cooling 1cycle 40℃ 10 secs
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準品稀釋後,配置 Legionella spp.標準品檢量線濃度範圍在 2.33~2.33×105 cells/μl,
其範圍含蓋本研究中環境樣本之濃度分布。
4.3.4.3 L. pneumophila real-time PCR 分析
選擇有最高的 Legionella spp.濃度以及通過 IIC 測試的稀釋倍數,進行 L.
pneumophila real-time PCR 分析,其分析同樣使用 LightCycler® 480 System (Roche Diagnostics GmbH, Basel, Switzerland)進行,並利用 mip-LpF (5'-ACAC TGGTCGTCTGAT) 及 mip-LpR (5'-CCAATAGGTCCGCCAA)來辨識及定量 L.
pneumophila 中的 193-bp 區域之基因,並將其進行放大後,搭配 mip-specific TaqMan MGB probe (5'-FAM-CCATAAGCAAGACCTGC-MGBNFQ-3') 來進行偵 測 (Chen and Chang. 2010)。
PCR 偵測定量 L. pneumophila 之混合試劑 (20 l)中含有 12.5 l 之 LightCycler® 480 Probes Master Mix (Roche Diagnostics),375 nM 之 primers (Mission Biotech Co., Taipei, Taiwan),及 375 nM 的 TaqMan MGB probe (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA),最後加入 5l 萃取之環境 DNA 樣本或是 L.
pneumophila DNA 標準品,每批次分析樣本會有一組加入 PCR 無菌水 (Roche Diagnostics) 作為陰性樣本。
標準品為利用 Mission Biotech 公司合成之 L. pneumophila,並偵測其基因表
試劑 體積 / 樣本 (l) 最終濃度
2× probe master mix (Roche) 12.5 1x Lp_forward primer (10M) 0.75 375 nM
Lp_reverse primer (10M) 0.75 375 nM
Lp probe (10M) 0.75 375 nM
Sterile water 0.25 1x
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現量 (copies/ng) 為 3.1×108 copies/ng,本研究利用 TE buffer 進行標準品稀釋後,
配置 L. pneumophila 標準品檢量線濃度範圍在 3.1×10-1 ~ 3.1×105 copies/μl 此範圍 含蓋本研究中環境樣本分析結果之濃度分布情形。
用以 L. pneumophila 分析之 PCR 反應設定如下,先進行 10 分鐘於 95℃下之 活化作用後,進行 50 次的放大步驟 (95℃下 10 秒及 60℃下 1 分鐘),最後在 40
℃下冷卻 10 秒鐘完成 real-time PCR 之結果分析與定量。
每批次標準品於 real-time PCR 分析完後,利用各濃度 L. pneumophila DNA 標準品所得之 Ct 值與已知的相對應 log DNA copy numbers 製作 L. pneumophila 標準檢量線,每批次 real-time PCR 反應的放大效率及檢量線迴歸係數之 R2將經 由 real-time PCR 反應後確認結果是否正常,而每批次所得的檢量線將用以定量 環境樣本中 L. pneumophila 濃度。
4.3.5 培養法分析