外源性碳水化合物增補對運動表現及合成分解賀爾蒙之影響

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(1)國立臺灣師範大學運動與休閒學院體育學系碩士論文 Department of Physical Education College of Sports and Recreation. National Taiwan Normal University Master’s Thesis. 外源性碳水化合物增補對運動表現及合成分解賀爾蒙之影響 Effects of Exogenous Carbohydrate Supplement On Exercise Performance and Synthetic Decomposition Hormones. 翁于涵 WONG, Yu-Han 指導教授：徐孟達博士中華民國 109 年 9 月 September 2020.

(2) 謝辭很高興終於在碩士班的第三年要畢業了，從碩一開始懵懵懂懂的修課及尋找研究方向，撰寫統整性文章，到實驗及口試結束，這一路走來，首先，要特別感謝徐孟達博士，在研究的路上，一直非常和藹的教導我如何去思考及探究問題，並在文章及論文寫作上給予我許多的幫助與指導，讓我的寫作能力能越來越進步，且在每次的發表都給予我許多的指導與鼓勵，讓我能更加有自信地完成發表。同時，感謝我的口試委員陳玉英老師及劉宏文老師，在實驗方法及過程中遇到問題時，都很熱心的提供我許多寶貴的建議及方向，讓我的研究能更加完整。接著，感謝各位研究夥伴的關懷與鼓勵，在我需要幫忙時都及時伸出援手相助，並要特別感謝江俊源學弟，從前導實驗一直幫忙我做測試者，且提供我許多回饋，非常感謝。再來，謝謝我的二阿姨曹如明護士，每次都一大早配合我的實驗，千里迢迢從天母來學校幫忙我進行實驗血液採集，並當我的助手，關心受試者狀況，十分貼心；也謝謝吳冠蓁學妹抽空幫忙我進行血液採集與實驗協助，讓我的實驗能順暢進行。最後，要感謝我的母親曹梅珍女士，不僅在經濟及精神上給予大力支持，也擔任我實驗的助手，才能讓我能順利完成學業。來到台師大，讓我看到了很不一樣的學習環境及氛圍，使我能有許多的成長，真心感謝每一位曾幫助過我的人，使我邁向更好的未來，謝謝。. i.

(3) 外源性碳水化合物增補對運動表現及合成分解賀爾蒙之影響 2020 年 9 月研究生：翁于涵指導教授：徐孟達摘要. 背景：藉由外源性碳水化合物的增加，能減少內源性肌糖原的使用，讓運動時間及反覆次數增加，以提升總做功，進而提升肌肥大訓練的效益。目的：本研究旨在探討運動前與期間增補不同類型的碳水化合物，對運動表現及肌肉合成分解之效益。方法：招募 11 名有阻力訓練經驗之健康年輕男性，以重複量數及平衡次序設計，進行阻力訓練 (共進行 3 回合的硬舉、臥推、腿推蹬、坐姿划船、腿伸展、肩推等動作，前 2 回合各 8RM，而第 3 回合至力竭，組間休息 90 秒，每個動作間則休息 2 分鐘) 。此外，受試者分別於訓練前 10 分鐘、每 2 個訓練動作後增補濃度為 6%的碳水化合物溶液 118ml (蜂蜜或葡萄糖或安慰劑) ；且於運動前立即、運動後 5 及 20 分鐘進行採血，以進行葡萄糖、胰島素、皮質醇、睪固酮、T/C ratio 之濃度的檢測。結果： (1) 蜂蜜 GI 值為 91.94。 (2) 總做功及次數：在腿伸展上，蜂蜜組顯著高於葡萄糖組及安慰劑組 (p＜ .05) ；在坐姿划船與總做功上，增補組顯著高於安慰劑組 (p＜ .05) ；在肩推的總做功上，蜂蜜組顯著高於安慰劑組，其餘皆無顯著差異。 (3) 血液指標：三組血糖皆在運動後 5 分鐘顯著高於前測 (p＜ .05) ；胰島素在運動後的時間點上，增補組皆顯著高於安慰劑組 (p ＜ .05) ；三組睪固酮濃度在運動後 20 分皆顯著較運動前、運動後 5 分鐘低 (p＜ .05) ；而皮質醇則與睪固酮相反；至於在 T/C ratio 的變化上，葡萄糖組與安慰劑組在運動後 20 分鐘明顯較運動前、運動後 5 分鐘低 (p＜ .05) ，而蜂蜜組則無明顯變化。結論：在從事單次高強度肌肥大阻力訓練前與運動期間，增補蜂蜜能維持較高的血糖濃度，以供作用肌群使用，因此，能有效增加總做功量及次數。. 關鍵詞：肌糖原、蜂蜜、阻力訓練 ii.

(4) Effects of exogenous carbohydrate supplement on exercise performance and synthetic decomposition hormones September,2020 Author： Wong, Yu-Han Advisor： Hsu, Mong-Da Abstract. Introduction：Increasing the exogenous carbohydrate can reduce the use of endogenous muscle glycogen, increase the exercise time and the number of repetitions, so as to increase the total work and improve the effectiveness of muscle hypertrophy training. Therefore, the purpose of this study explores the benefits of supplementing different types of carbohydrates before and during exercise on exercise performance and muscle metabolism. Method: Recruit 11 healthy young men with resistance training experience, and conduct resistance training (deadift, bench press, leg press, seated row, leg extension, shoulder press 3 set of fatigue, at 8RM, with 90 seconds between each set and 2 minutes between the exercises), and supplement with 6% 118ml carbohydrate solution (honey or glucose or placebo) every 10 minutes before training and after every 2 training movement . Blood was collected three times for each experiment, immediately before exercise, 5 minutes after exercise, and 20 minutes after exercise. The detection indexes were the concentrations of glucose, insulin, cortisol, testosterone, and T/C ratio. Results: (1) The GI value of honey was 91.94. (2) Total work and frequency: Leg extension was significantly higher in the honey group than the glucose group and the placebo group (p <.05); Seated row and Totle were significantly higher in the honey group and the glucose group than the placebo group (p＜ .05); totle work of shoulder press were significantly higher in the honey group than the placebo group (p＜ .05). (3) Blood sampling: the blood glucose of the three groups was significantly higher than the pre at 5 minutes after exercise (p< .05); at two time points after insulin, the two supplement groups were significantly higher than the placebo group iii.

(5) ( P <.05); all three groups of testosterone were significantly higher than 20 minutes after exercise before exercise and 5 minutes after exercise (p < .05); Cortisol and testosterone were completely opposite; and the T/C ratio before exercise and 5 minutes after exercise was significantly higher than 20 minutes after exercise (p <.05), but there was no significant change in the honey group. Conclusion: Supplementing honey before and during a single highintensity resistance training could maintain a high blood glucose concentration for the use of muscle groups. Therefore, it could effectively increase the total work amount and frequency.. Keywords: muscle glycogen, honey, resistance training. iv.

(6) 目次. 謝辭……………………………………………………………………………………………..i 中文摘要…………………………………..…………………….…………………………..ii 英文摘要……………………………………………………………………………………iii 目次………………………………………………………………….…………...………v 表次…………………………………………………………………………………..…….vii 圖次…………………………………………………………………................……….….viii. 第壹章緒論…...………………………………………………………………1 第一節研究背景……………………………………….………………………………1 第二節研究目的…...…………………………………………………………………..2 第三節研究假設…...…………………………………………………………………..2 第四節名詞操作性定義………...……………………………………………………..2 第五節研究範圍及限制…...…………………………………………………………..3 第六節. 第貳章. 研究重要性……………………………………………………………………3. 文獻探討…...…………………………………..…………………….4. 第一節蜂蜜介紹…………………...…………………..………………………………4 第二節肌糖原與阻力訓練………………….…………………………………………5 第三節. 增補對運動表現之影響……………….……………………………………7. 第四節增補對內分泌之影響………………………………………………………...12 第五節. 攝取碳水化合物之劑量與機轉……………………………………………...16. 第六節. 本章總結…………...…………………………………………………………18 v.

(7) 第參章研究方法…...…………………………………..……………………19 第一節受試對象………………………………………………………………..….…19 第二節實驗時間與地點………………………………………………………..….…19 第三節實驗流程………………………………….…………………………….….…19 第四節實驗方法與步驟……………..…………………………………………….…21 第五節資料分析及處理...……………………………………………………..……..25. 第肆章. 結果………………………………………………………………….26. 第一節. 受試者基本資料...……………………………………………………..……..26. 第二節蜂蜜 GI 值……………………………………………………………………27 第三節. 外源性碳水化合物增補後的運動表現情形……………………………...28. 第四節. 外源性碳水化合物增補後的血液指標變化狀況………………………..31. 第伍章. 討論與結論………………………………………………………….38. 第一節蜂蜜 GI 值……………………………………………………………………38 第二節. 增補處理對阻力訓練總做功與次數之影響 ………………………...39. 第三節. 增補處理對阻力訓練期間之血液生化指標影響………………………...40. 第四節. 結論與建議…………………………………………………………………...43. 參考文獻………………………………………………………………………44 附錄………………………………………………………………………49 附錄一健康及訓練情況調查表……………………………………………………...49 附錄二實驗參與者知情同意書…………………………………………………...…50 vi.

(8) 表次表 1 運動期間增補對運動表現之影響……………………………………..……………10 表 2 訓練前中增補對賀爾蒙之影響……………………………………………………..14 表 3 蜂蜜增補建議劑量…………………………………………………………………..17 表 4 受試者基本資料……………………………………………………..……….……..26 表 5 各組飲用後 2 小時之 GI 血糖總面積………………………………………………..27 表6各個動作之總做功及次數………………………………………………...30 表7各項生化指標於不同時間點之變化………………………………………………...37. vii.

(9) 圖次圖 1 實驗流程及程序……………………………………………………………….……….20 圖 2 血糖在不同增補處理和時間點之變化……………….……………………………..31 圖 3 血糖在 Post5 到 Post20 之曲線下面積變化………………………………..….32 圖 4 胰島素在不同增補處理和時間點之變化……………………………………..33 圖 5 睪固酮在不同增補處理和時間點之變化…...……………….………………...34 圖 6 皮質醇在不同增補處理和時間點之變化………………...….........…..........35 圖 7T/Cratio 在不同增補處理和時間點之變化……….……………...………36. viii.

(10) 第壹章. 緒論. 第一節研究背景阻力訓練是近來十分熱門的一項運動模式，其包含了四大訓練目標，分別為肌力、肌耐力、爆發力與肌肥大，其中，肌肉肥大是相當重要的一個環節。而運動員、健美選手，甚至一般大眾皆會把肌肉肥大放進訓練前期的課表中，因為肌肉肥大不只是增加肌肉質量外，亦能使肌力、爆發力顯著增加，進而提升運動表現、改變身體組成等。因此，不論是對於運動員或一般大眾，肌肉肥大的訓練是不可或缺的一項重要訓練目標。然而，肌肉肥大訓練過程中最強調的是高總做功量，同時搭配較短的休息時間及高反覆次數的訓練來達成，使身體內的代謝壓力到達高峰，因而需要較大的能量提供肌肉做使用。所以，如果能在阻力訓練前與過程中透過攝取外源性碳水化合物，不僅能減少內源性肌糖原的使用，維持穩定的血糖濃度，還能夠增加鈣離子在肌纖維內的釋放，增加肌肉收縮速率，以及活化中樞神經，使延緩疲勞的速率，進而延長訓練時間並增加訓練時的輸出功率，達到更佳的訓練成效 (Thomas, Erdman, & Burke, 2016) 。不過，Escobar, VanDusseldorp 與 Kerksick (2016) 研究亦指出在阻力訓練中，使肌糖源耗盡的可能性很小，且基因轉譯的關鍵調節酶 (signalling of the mammalian target of rapamycin complex 1, mTORC1) 不受碳水化合物限制及低肌肉糖原濃度的影響。即使如此，在訓練前中期增補的目的是減少內源性糖原分解與延緩疲勞產生的速率，提升總做功才是在訓練前中期需優先考量的要素，除此之外，在訓練前中期進行增補時，骨骼肌血流量會增加，將能提高葡萄糖攝取率，使營養物質向目標接受器傳遞，造成胰島素等合成性賀爾蒙增加，延緩皮質醇等分解性荷爾蒙的釋放速率 (Tarpenning, Wiswell, Hawkins, Marcell ,2001) 。所以在探討增補效益時，也需考慮內分泌賀爾蒙的影響、碳水化合物的類型及適當的增補時機。因此，本研究欲驗證是否在阻力訓練前與過程期間攝入碳水化合物，能使肌纖維疲勞速率下降，延長訓練時間，並提升運動表現及肌肉合成之效益。. 1.

(11) 第二節研究目的本研究目的在：一、驗證利用全身阻力訓練的模式，並增補碳水化合物，進而提升運動表現。二、考驗阻力訓練前與期間攝取蜂蜜水或葡萄糖或安慰劑，對於提升訓練次數、增加合成性荷爾蒙濃度及降低壓力荷爾蒙的效益。. 第三節研究假設基於上述的研究目的，本研究計畫的研究假設如下：一、在全身阻力訓練前與期間攝入碳水化合物對運動表現 (訓練次數、總做功) 沒有明顯的效益。二、使用蜂蜜水增補對阻力訓練的運動表現效益和使用葡萄糖和安慰劑組沒有差別。三、使用蜂蜜水增補對分解性賀爾蒙及合成性賀爾蒙沒有太大的影響。. 第四節名詞操作性定義一、碳水化合物增補本研究根據 Jäger 等 (2017) 實驗的增補劑量參照，制定出每次增補 6%碳水化合物溶液 118ml；蜂蜜增補採用龍眼蜜 (蜂蜜工廠，台灣）；葡萄糖增補採用 100%葡萄糖粉 (糖寶，台灣) ；安慰劑增補採用 100%赤藻糖醇 (SENTOSA，美國) 。二、全身阻力訓練本研究使用 6 個動作，順序為六角槓硬舉、臥推、腿推蹬、坐姿划船、腿伸展與肩推，重量為 80%1RM，每位受試者共進行 3 回合的訓練。前 2 回合每個動作最多做 8 下，而第 3 回合則至衰竭，組間休息 90 秒，動作間休息 2 分鐘。三、運動表現 2.

(12) 本研究所稱運動表現為反覆次數、總做功 (組數×次數×位移) 。四、血液指標本研究之血液指標為血糖、胰島素、皮質醇、睪固酮、T/C ratio 之濃度。. 第五節研究範圍及限制一、本研究以 11 名有阻力訓練經驗的健康男性作為研究對象，年齡介於 20-31 歲，其研究所得知結果僅能推估到相同條件之受試對象上。二、本研究受試者在每次測驗前一天的飲食盡量一致，尚未給予標準餐，僅監控測驗前一天晚餐的飲食，因而可能導致不同的實驗結果。. 第六節研究重要性過去針對阻力訓練增補的研究大多都探討訓練後增補蛋白質為主，因其是影響肌肉合成最主要且直接的關聯，然而，較少人從訓練前增補碳水化合物對於運動表現及之後賀爾蒙變化的觀點進行探討。目前針對阻力訓練建議的碳水化合物攝取都是每日的攝入量，較少對於單次訓練期間的建議，其原因或許是阻力訓練屬於短時間高強度的訓練，雖然會消耗能量，但在組間都會進行休息，因而對於增補的必要性尚未得知。不過，在 Lambert, Flynn, Boone, Michaud 與 Rodriguez-Zayas (1991) 研究發現阻力訓練前增補 1 g kg–1 的 CHO，且訓練期間再增補 0.5 g kg–1 的 CHO 能提升總訓練量，表示增補 CHO 是有效益的。另外，本研究選用蜂蜜做為碳水化合物的溶劑，因蜂蜜是一種複合式的天然的 CHO，而它本身不僅能提供能量，還有一些抗發炎的物質。因此，若能證明在訓練前與期間增補蜂蜜能提升阻力訓練的表現，且減少蛋白質的分解與疲勞的產生，則能提供給選手、教練以及要進行肌肥大訓練的族群作為參考。. 3.

(13) 第貳章. 文獻探討. 本章文獻探討共分為五個小節：第一節、蜂蜜介紹；第二節、肌糖原與阻力訓練；第三節、增補對運動表現之影響；第四節、增補對內分泌之影響；第五節、攝取碳水化合物之劑量與機轉；第六節、本章總結. 第一節蜂蜜介紹近年來蜂蜜越來越多人使用，不僅被當作甜味劑使用，亦成為養生保健食品，甚至在運動場上，也能看到有些選手會利用蜂蜜水進行增補。蜂蜜屬於複合式碳水化合物，主要成分為果糖 40%和葡萄糖 35%，還有 5%蔗糖和約 25 種不同的低聚醣、水 13.6-19.2 ％與少量的澱粉酶、氨基酸、芳香化合物和銅、鈣、鐵、錳、鎂、鉀、磷、鈉和鋅等礦物質、維生素 B6、菸酸、硫胺素、酚酸、酶（葡萄糖氧化酶、過氧化氫酶）、0.3-25mg/kg 膽鹼和 0.06 至 5mg/kg 乙醯膽鹼 (Bogdanov, Jurendic, Sieber 與 Gallmann,2008) 。其中，多酚類物質及乙醯膽鹼，對於心血管和腦功能以及細胞膜組成和修復至關重要 (Heitkamp & Busch-Stockfisch,1986) ；而黃酮類 (flavonoids) 物質可使血小板活性降低，減少動脈粥樣硬化斑塊形成，並預防低密度脂蛋白氧化 (Oxidized low-density lipoprotein； Ox-LDL)，以及改善冠狀動脈舒張功能；酚類則可抑制脂質過氧化作用，這些物質會抑制經典補體途徑 (classical complement pathway) 、活性氧化物 (reactive oxygen species, ROS) 形成以及環氧合酶 (cyclooxygenase,COX-2)，並活化一氧化氮合酶，使其對抗發炎及氧化 (Alvarez-Suarez, Tulipani, Romandini, Bertoli, Battino, 2010) 。對於運動員而言，經由長時間劇烈運動會造成 ROS 產生，使肌肉受傷風險提高、運動表現下降。然而 Jurcău 與 Jurcău (2017) 實驗利用 32 名長時間久坐健康男性分為 4 組，對照組(無增補)、增補一週、增補兩週、增補三週，每週進行一次增補，在運動前服用每公斤體重 1g 的麥盧卡蜂蜜，並使用自行車訓練 60 轉/分鐘踏板速度、30 瓦的功 4.

(14) 率持續 3 分鐘後開始逐漸增加功率至力竭，且在運動前 10 分鐘、運動後 30 分鐘、運動後 4 小時進行血液採集，結果發現丙二醛 (malondialdehyde,MDA) 在運動後 30 分鐘顯著增加，其中控制組增加最劇烈，3 週增補組增加幅度最低，因此長時間增補蜂蜜對於久坐男性進行訓練能減少細胞組織的損傷；Hatchett 等 (2016) 利用 20 名大學男性足球員，經 80%1RM 深蹲 10 次重複 4 組，使誘發延遲性肌肉痠痛 (delayed onset muscle soreness, DOMS）的情形，再增補 240ml 的巧克力牛奶或生乳加蜂蜜，在 24 小時後發現蜂蜜組疼痛感明顯降低；而蜂蜜搭配有氧舞蹈運動更能增加骨形成標誌物 (alkaline phosphatase, ALP) ，促進骨骼健康 (Ooi FK, 2011) 。因此，蜂蜜應用在運動中能對骨骼、炎症反應、氧化壓力和生長激素等賀爾蒙產生許多有益的影響 (Yusof, Ahmad, Hamid, Khong, 2018) 。然而，蜂蜜的成分相當多變，其主要原因是蜜蜂所採的花蜜來源不同所導致，而季節性、環境和處理方式等因素也會對其成分造成影響。也使蜂蜜的升糖指數在 32 到 85 之間變化很大，這取決於蜜蜂採取花蜜的植物來源，其內含的果糖成分越高，升糖指數 (GI) 則越低。. 第二節肌糖原與阻力訓練阻力訓練是現今盛行的一項運動模式，藉由良好的飲食增補策略，不僅能提升運動表現，更能增加訓練後的恢復及肌肉合成效益。然而，在阻力訓練前與期間利用碳水化合物進行增補其最大的優勢為減少內源性肌糖原的利用，使訓練時肌肉的能量充足得以持續輸出，就能增加肌肉力量輸出、運動時間及延緩疲勞的產生。以下針對阻力訓練的肌糖原差異及增補對運動表現的影響進行探討。大多數糖原儲存在人的肝臟約 100 克、肌肉約 350-700 克，而糖原儲存量會與訓練狀態、飲食、肌纖維類型組成、性別、體重的不同而有所差異 (Knuiman, Hopman＆ Mensink,2015) 。有研究讓無訓練經驗的年輕男性進行 75%1RM 胸推、肩推、下拉三組十次重複及腿推蹬八組十次重複，共 45 分鐘的訓練後發現其肌糖原顯著下降 (Koopman, 5.

(15) Manders, Jonkers, Hul, Kuipers 與 van Loon,2006) ；而另一個研究則利用 8 名男性健美運動員進行二頭彎舉 80%1RM3 組 10 下重複的訓練，也發現到在第三組時肌糖原顯著降低，且肌酸降低與乳酸升高，導致疲勞產生 (Macdougall, Ray, Sale, Mccartney, Lee＆ Garner,1999) 。所以，不管有無訓練經驗者從事阻力訓練，皆會使肌糖原降低。另外，在 Robergs 等 (1991) 研究則是比較不同訓練強度 70％1RM 或 35％1RM 的腿伸展，但相同的總做功量，發現肌肉糖原分解量是相同的，而 Gorostiaga 等 (2012) 實驗則以腿推蹬 5 組 10RM 與 10 組 5RM 兩種不同的訓練模式進行比較，組間休息皆為 2 分鐘，結果 5 組 10RM 肌肥大訓練模式導致肌肉磷酸肌酸濃度顯著減少，表示阻力訓練總做功量越大，對於肌糖原分解程度越大，以提供 ATP-PC 及乳酸系統做使用，讓訓練得以持續進行。不過，Escobar, Van Dusseldorp 與 Kerksick (2016) 也表示雖然阻力訓練會減少肌糖原，但並不會使糖原耗盡，所以對運動表現並不會有太大影響。經由上述文獻整理，了解在阻力訓練中，肌糖原是扮演能量供應非常重要的角色，雖然人體內肌糖原不會耗盡，但若空腹或飢餓狀態下進行訓練，則訓練前的體內糖原則為偏低的狀況，若此時進行訓練，是否會對訓練品質造成影響，以下將針對此疑點進行探討。在 Leveritt 與 Abernethy (1999) 實驗中分別進行 3 組 80％1RM 深蹲重複至力竭，組間休息 3 分鐘以及等速腿伸展，每組分別以 1.05、2.09、3.14、4.19 和 5.24 弧度/每秒 (rad‧s-1) 收縮速度進行五次重複，結果深蹲次數受到低糖原的影響而減少了，但等速腿伸展無差異。其原因或許是腿伸展所使用的肌群較小，所需消耗的能量較少，且中間有 5 分鐘休息時間，能量已有所恢復的緣故。除此之外，當糖原濃度過低時，則會抑制肌漿網釋放 Ca2+速率和鈉－鉀腺苷三磷酸酶 (Na+-K+ATPases) 途徑，而影響到 ATP 再合成，使疲勞產生 (Jensen, Nielsen & Ørtenblad,2020) ，經由 Dreyer, Fujita, Cadenas, Chinkes, Volpi 與 Rasmussen (2006) 實驗發現即使是在正常糖原的情形下，利用 10 組 10 次重複 75%1RM 的腿伸展後發現不僅腺苷單磷酸活化蛋白激酶 (5'-AMP-activated protein kinase, AMPK) 活性增加，且會抑制 ATP 再合成，使 mTOR 信號降低，蛋白質合成減少，而在另一個研究使用 60%1RM 單腿膝伸展且在每分鐘增加阻力至力竭，發現若在運動前增補 CHO 就能顯著降低脂肪氧化率與 AMPK 的活性 (Akerstrom et al,2006) 。 6.

(16) 因此，有足夠的肌糖原對於阻力訓練的能量代謝相當重要的，特別是在高組數及反覆次數的肌肥大訓練前與期間的肌糖原含量需特別關注。雖然在低醣原的情況下會降低 mTOR 訊號，不過 Camera, Hawley 與 Coffey (2015) 實驗以低糖原的情況下使用單腿推蹬 8 組 5 次重複 80％1RM 測驗，並在訓練結束後立即和 2 小時後增補胺基酸與麥芽糊精，發現低糖原腿可以藉由腫瘤抑制因子 (tumor suppressor p53) 和 PPAR gamma coactivator-1α (PGC-1α) 信號傳導，增強粒線體相關的適應且不會減弱骨骼肌合成代謝反應。Camera ,et al. (2012) 的文獻也支持上述的論點，認為運動前的糖原含量不影響運動後增補 CHO 與蛋白質對於雷帕黴素的哺乳動物靶標 (mechanistic target of rapamycin complex 1,mTORC1) 和肌肉蛋白質合成 (muscle protein synthesis, MPS) 的反應。因此，尚若運動後有進行增補，就不會抑制肌肉合成效益。綜上所述，在運動前進行增補能擁有足夠的糖原供給給肌肉進行收縮，進而支撐更大的訓練量，而運動後增補則能增加其肌肉合成之效益。. 第三節增補對運動表現之影響為了要使運動表現提升，營養增補是一個很棒的方式，經由前一節所提及的肌糖原會影響阻力訓練效益，因此，本節更進一步探討增加外源性糖原 (增補碳水化合物) 對於運動表現之影響。根據 Cholewa, Newmire 與 Zanchi (2019) 研究指出在中等強度 50~75 ％1RM 且反覆次數 10 次以上及訓練時間 50 分鐘以上的阻力訓練前進行 CHO 增補，能夠延長訓練時間，所以在運動前的 CHO 攝取十分重要。不過，尚若訓練少於八組，運動持續時間少於 45 分鐘且強度大於 85％1RM 的訓練計畫，則低糖原或 CHO 可用性不會對運動表現產生負面影響。然而 Fayh, Umpierre, Sapata, Neto 與 de Oliveira (2007) 研究讓 8 名 23 歲左右的男性在訓練前 2 小時吃一份標準餐 (60%CHO,15%蛋白質,25%脂質) ，且在訓練前 15 分鐘攝入 1g·kg-1CHO 麥芽糖糊精加 250 毫升的水或安慰劑 (PLA) ，並進行 45％1RM 臥推、45％1RM 腿推蹬、70％1RM 蹲舉 7 次 3 回合，結果雖然 15 分鐘後血糖上升，但總做功、心率和乳酸無差異。其原因可能是實驗設計並未達到 Cholewa, 7.

(17) Newmire 與 Zanchi (2019) 所提及的訓練次數與訓練時間，造成增補組的運動表現無提升效益。另外，在 Wax, Brown, Webb 與 Kavazis (2012) 實驗讓 8 名 23 歲左右的健美健力選手在 10 小時禁食的情況下，使用 50％等長最大自主收縮 20 秒後休息 40 秒，且每五分鐘的等長收縮最後 3 秒變成最大自主收縮加肌電刺激，不斷重複直至力竭。並在訓練前 30 分鐘攝取 1g·kg-1CHO10％或 PLA 與運動期間每 6 分鐘再攝取 0.17g·kg-1CHO10％或 PLA，結果發現增補後輸出力量與訓練時間都有增加，還能延遲疲勞時間，不過因為運動模式為訓練至力竭的緣故，使測量疲勞指標的血乳酸沒有差異。而 Lambert, Flynn, Boone Jr, Michaud 與 Rodriguez-Zayas (1991) 研究使用 10RM 腿伸展重複 15 回合，直到腿伸展無法達到 170°即停止，並在運動前立即增補 1g·kg-1CHO10％或 PLA 以及第 5 組增補 0.17g·kg-1CHO 或 PLA，結果發現訓練至第 7 組時，血糖和乳酸皆顯著提高，但運動組數與次數尚未增加，運動結束時，血糖仍顯著增加但乳酸無差異，且反覆次數已有提升的趨勢，或許運動強度不夠，所以增補的效益不明顯。接著在 Wax, Kavazis 與 Brown (2013) 與 Wax, Brown, Webb 與 Kavazis (2012) 皆使用相同的訓練方式，讓 6 名男性在運動前立即與運動期間每 6 分鐘皆增補 0.17 g·kg-1CHO10％或 PLA，結果發現增補後血糖及輸出力量皆有增加，但游離脂肪酸、甘油無差異。而同樣在運動前與期間進行增補的研究 Haff 等 (2001) 讓 8 名有訓練經驗的男性從事持續 56.9 分鐘的 16 組 10 次重複等速腿伸屈測驗，在訓練前飲用 1g·kg-1 麥芽糖糊精加右旋糖溶液 20％或 PLA，並在第 1、6、11 組訓練後再增補 0.3 g·kg-1 或 PLA，結果發現增補後的總做功、平均功、峰值都增加，但乳酸和游離脂肪酸 (FFA) 、心率、運動自覺量表皆無差異。經由上述研究發現，因阻力訓練的能量系統以 ATP-PC 及乳酸系統為主，而游離脂肪酸與甘油皆是有氧系統的代謝產物，所以即使訓練至力竭，還是以醣類代謝作為能量消耗，並且對游離脂肪酸與甘油影響不大。對於同一天需進行兩次訓練的運動員，飲食增補更為重要。Oliver 等 (2016) 利用自行車訓練 70％V̇O2max 騎 60 分鐘後再使用 6 次 120％V̇O2max 衝刺 1 分鐘來消耗肌糖原，之後分別飲用高分子量低滲透壓碳水化合物 (high molecular weight, low osmolality 8.

(18) carbohydrate, HMW) 、低分子量高滲透壓碳水化合物 (low molecular weight, high osmolality carbohydrate, LMW) 或調味水 (PLA)，增補劑量為 1.2 克/公斤 CHO，2 小時後進行 75％1RM 背蹲舉 5 組 10 次重複，組間休息 3 分鐘，結果發現在長時間的劇烈耐力運動後攝入碳水化合物溶液可提高之後阻力訓練的動作速度和力量輸出，若飲用 HMW 的碳水化合物效果更佳。另外，Haff 等 (1999) 以 6 名 24 歲的男性在上午做 2 組深蹲、速度蹲、單腿蹲 40-50％1RM 前增補 1g·kg-1CHO (20％麥芽糊精加葡萄糖溶液) 或 PLA，在 09 點 45 至 10 點 30 每 15 分鐘增補一次，1130 至 14 點半每 1 小時增補一次，每次增補 0.51g·kg-1CHO 或 PLA，而下午測驗每組 10 次 55％1RM 的平行蹲舉至力竭，結果發現增補組的訓練次數顯著增加，同時也顯著減緩游離脂肪酸的釋放，表示增補 CHO 能使乳酸系統運作順暢，提供能量的效率較佳進而提升總訓練量。不過，在 Haff 等 (2000) 研究利用 8 名受過訓練的 24 歲左右男性，進行使用 65％1RM 背蹲舉，45％ 1RM 速度蹲、10％1RM 單腿蹲皆訓練 3 回合 10 次重複，組間休息 3 分鐘，且運動前 10 分鐘增補 1g·kg-1CHO20％或 PLA 與運動中每 10 分鐘以 0.3g·kg-1CHO 或 PLA 劑量增補，過了 5 分鐘後，再使用等速腿伸展進行測量，結果雖然發現增補組的肌糖原含量比顯著高於安慰劑組，表示能減少糖源流失，但總做功、游離脂肪酸、乳酸無卻差異，或許是腿伸展為單關節得訓練動作，所使用的能量較少，且在第一次的訓練量不夠，導致增補對於運動表現未達顯著效益。Kulik 等 (2008) 實驗使 8 名 23 歲左右男性在 45％、 55％、65％、75％1RM 深蹲，皆重複 5 次 1 回合，並在訓練前、每兩回合結束後增補 0.3g·kg-1 麥芽糖糊精和右旋糖溶液 20％或 PLA，組間休息 3 分鐘，之後測驗以 85％1RM 至衰竭。結果顯示增補組的運動組數、次數、總做功不會顯著增加，因為使用 85%1RM 進行測驗的運動強度較高，相對能量代謝以 ATP 為主，疲勞的時間較快，所以此測驗模式與肌糖原的多寡較無關聯，也使的增補不會提升此測驗的訓練量。最後，在 8 週的長期研究找 29 名年輕男性，分別在早餐前 20-30 分鐘攝入 5 克蜂王漿加 45 克蜂蜜或玉米澱粉，並且每週 4 天每次 2 小時的金字塔模式的阻力訓練，動作包括臥推、肩推、深蹲、硬舉、二頭肌彎舉，組間休息 3 分鐘，動作間休息 3-5 分鐘，並且在第四、第八週早上空腹採血，訓練前、第四、第八週訓練後測驗最大肌力，結果 9.

(19) 發現增補組除了硬舉皆無顯著差異外，其餘動作力量皆顯著增加，且在血液指標上，增補組的胰島素、濾泡刺激素(follicle stimulating hormone)顯著增加，表示長期增補蜂蜜對肌力及合成性荷爾蒙 (胰島素) 皆有幫助 (Büyükipekçi, Sarıtaş, Soylu, Mıstık & Silici, 2018)。綜整上述相關研究整理為下表 1，發現阻力訓練前與期間進行碳水化合物增補對於單次、長期以及二次訓練都是具有良好的效果，而其效益主要是能維持訓練模式的能量代謝運作，才得以讓肌肉持續收縮，達到更大的訓練量。表1. 運動期間增補對運動表現之影響作者(年代) Fayh 等. 受試者男8名. 運動介入 -. 前 15 分鐘 1g·kg 1. (2007). Wax 等. 時間劑量. 男6名. (2012). CHO 麥芽糖糊精+250 毫升水或 P 前：1g.kg-1CHO 10％或P 中：0.17g.kg-1CHO 或 P. Lambert 等. Wax 等. (2016). 每 5 分鐘訓練的最大自主收縮倒數 3 秒+ 肌電刺激重複至力竭 10RM 腿伸展，重複 15 組. 男6名. 前 30 分及每 6 分鐘增同上補 0.17 g.kg-1CHO 或 P. 男8名. 前：1g·kg-1CHO 或 P 中：0.51 g·kg-1 或 P. 男 16 名. 自行車訓練後： 1.2g.kg-1HMW 或 LMW 或 P. (2001) Oliver 等. 20 秒 50％股四頭肌最大等長收縮，休息 40 秒，不斷重複，. 前：1g·kg-1 CHO 或 P 中(5、10、15 組)： 0. 17g·kg-1CHO 或 P. (2013) Haff 等. 臥推、腿推蹬 45%、血糖↑、總蹲舉 70％1RM7 次 3 做功、心組率、乳酸(×). 男7名. (1991). 10. 運動表現. 總做功、時間↑、乳酸 (×). 血糖和乳酸 ↑ 組數次數(×) 總做功↑、 FFA、甘油 (×). 16 組 10 次等速膝伸總做功、平展持續 56.9±0.2 分鐘均功↑；乳酸、FFA(×) 70％V̇O2max60 分 HMW 與鐘，6 次 120％ LMW 組的 V̇O2max1 分鐘衝背蹲舉力量刺。75％1RM 背蹲速度↑ 舉 5 組 10 次重複.

(20) Haff (1999). 男6 名. 前：1g.kg-1CHO 或 P 中：0.51g.kg-1 CHO 或P. Haff 等. 男8名. 前 10 分鐘：1g·kg-1 CHO 或 P 每 10 分鐘：0.3g·kg-1 CHO 或 P. (2000). Kulik 等. 男8名. (2008). Büyükipekç i 等(2018). 男 29 名. 上午：2 組深蹲、速度蹲、單腿蹲 40-50 ％1RM，間隔 4 小時下午：每組 10 次 55 ％1RM 的平行蹲舉至力竭 3 組 10 次重複的 65 ％1RM 背蹲舉，45 ％1RM 速度蹲、10 ％1RM 單腿蹲、等. 第二次訓練次數、血糖 ↑、FFA↓. 速腿伸展測驗至力竭訓練前、每兩回合 0.3 45％、55％、65％、 g·kg-1 20％麥芽糖糊 75％1RM 深蹲，皆精和右旋糖溶液或 P 重複 5 次 1 回合，組間休息 3 分鐘，之後測驗以 85％1RM 5 次至衰竭早餐前 20-30 分鐘攝每週 4 天 2 小時的金入 5 克蜂王漿+ 45 克字塔模式，臥推、肩蜂蜜或 P (玉米澱粉)，推、深蹲、硬舉、二. 平均扭矩(×) 運動組數、次數、總做功(×). 共8週. 肌糖原↑；膝伸展總做功、平均功、峰值與. 1RM 肌力及胰島素、濾泡刺激素↑. 頭肌彎舉，組間休息 3 分鐘，動作間休息 3-5 分鐘. 註：high molecular weight, low osmolality carbohydrate, HMW 為低滲透壓碳水化合物；low molecular weight, high osmolality carbohydrate, LMW 為高滲透壓碳水化合物；P 為安慰劑. 11.

(21) 第四節增補對內分泌之影響阻力訓練進行碳水化合物增補除了能讓運動表現增加外，還能造成體內的內分泌改變，尤其是增補提升了外源性糖原，因而會使胰島素跟著增加，這樣一來不僅能維持血糖的恆定外，由於胰島素本身就是合成性荷爾蒙，所以還能促進蛋白質的合成，為肌肉合成帶來更大的效益。以下針對阻力訓練增補造成賀爾蒙的改變進行探討。在 de Oliveira Quirino, Gonçalves, de Oliveira, dos Santos 與 Silva (2012) 研究利用 7 名有阻力訓練經驗男性以 60％1RM 的強度進行臥推、啞鈴推舉、啞鈴仰臥拉舉、過頭下拉 (back lat pulldown) 、後拉下壓 (back lat push-down) 、平推 (front press) 、槓鈴彎舉、三頭肌滑輪下壓、二頭彎舉、仰臥三頭肌延伸，各 3 回合 12-15 下重複且組間休息 90 秒共訓練 75 分鐘，在訓練前與每 2 個動作後攝入 180ml 麥芽糖糊精 8％或 PLA，共 1080 ml (86.4g) ，結果發現 CHO 增補雖然能增加胰島素活性，但並不會影響肌肉分解代謝 (皮質醇、肌酸激酶) 。而 Jung, Ryu 與 Kang (2018) 實驗由 10 名年輕男性分為運動組與運動增補組，進行 8RM 腿推蹬 5 組且組間休息 1 分鐘全部完成為一回合，之後休息 30 分鐘再重新進行，共重複四回合訓練，並在每回合運動結束後進行增補 1.2 g· kg-1CHO 加上 300ml 水或 PLA (水) ，結果發現增補組只有胰島素顯著增加，訓練總重量、平均重量、皮質醇皆無差異，且增補組的睪固酮、生長激素低於安靜值。不過，在 Baty 等 (2007) 利用 34 名男性進行 4 組 8RM 高拉、腿部彎曲、站立過頭推舉、腿部伸展、下拉、腿推蹬、臥推的訓練，並在運動前 30 增補 335ml (CHO6.2%+PRO1.5%) ， 0、44 分鐘增補 177ml 及運動後增補 355ml，結果發現無阻力訓練經驗的初學者在訓練期間增補，能在運動後 24 小時顯著降低皮質醇與 CK 的產生。因此，說明了在固定的訓練強度下，醣類增補或許對於有訓練經驗的男性不會使壓力賀爾蒙皮質醇降低，其原因可能是有經驗的訓練者不管糖原的多寡能在訓練當下給予相同的機械性壓力 (mechanical stress)，造成肌肉組織破壞程度相當所導致的，且短期的皮質醇升高可藉由破壞蛋白質，使組織進行重塑，反而能促進肌肉肥大。而針對其氧化發炎反應，Mcanulty, Mcanulty, Nieman, Morrow, Utter, Dumke (2005) 12.

(22) 採用 30 名有訓練經驗的男性空腹 5 小時以上後採用第一組 40%1RM 之後皆 60%1RM 的強度進行臥推、斜板臥推、肩推、直立上提，槓鈴划船，二頭肌捲曲，深蹲，前蹲和硬舉共四組 10 次重複，組間休息 2 分鐘且動作間休息 3 分鐘，共訓練 2 小時，並在運動前 15-30 分鐘增補 8ml kg-1CHO 或 PLA 和運動中每小時增補 10ml．kg-1CHO 或 PLA，結果皮質醇、鐵降低抗氧化能力 (Ferric Reducing Antioxidant Power, FRAP) 、脂質過氧化指標 (F2-isoprostanes, F2-IsoPs) 無差異，所以增補 CHO 對於有訓練經驗的男性不會增加其抗氧化能力、皮質醇亦無差異。不過，在 Tarpenning, Wiswell, Hawkins, Marcell (2001) 研究以 15 名無規律運動的年輕男性分別進行單次訓練及 12 週長期訓練。單次訓練在禁食 4 小時後利用臥推、坐姿划船、肩推、下拉、三頭肌伸展、二頭彎舉、腿推蹬、腿伸展、腿屈曲 3 回合 10 次 75%1RM，組間休息 1 分鐘，動作間休息 2 分鐘，在運動前與每組之間增補 8.5ml．kg-1CHO6％或 PLA 分成 28 份 (約 22-30ml)；而長期的訓練與單次相同，一週三天訓練，若第三組完成 12 次重複時就增加 5%重量，結果單次和長期訓練增補組在運動後血糖與胰島素皆顯著增加，而皮質醇在 1,6,12 週皆顯著低於 PLA 組，且 CHO 組的大腿Ⅰ、Ⅱ型肌纖維橫斷面積 CSA 顯著提升。而 Tarpenning, Hawkins 與 Wiswell (2003) 研究 62 歲左右男性高齡者，與 Tarpenning, Wiswell, Hawkins, Marcell (2001) 的訓練及增補模式相同，結果發現皮質醇顯著降低，但對睪固酮則無影響。因此，針對長期無訓練經驗男性或高齡者在阻力訓練前增補 CHO 是有效益的。另外，林正常與吳柏翰 (2008) 實驗以 10 名有規律阻力訓練習慣的男性大學生，在阻力訓練開始前 60 分鐘攝取增補劑 1g．kg-1CHO 或 PLA，隨後進行直立划船、雙手彎舉、臥推、負重仰臥起坐、坐姿伸腿展、俯臥腿彎舉、斜板腿推蹬和半蹲 3 組 10 次反覆 75%1RM 且組間休息 5 分鐘。結果發現增補組血糖維持穩定，但與 PLA 組比較未達顯著差異，而胰島素濃度在運動前、運動後立即、運動後 15 分鐘均顯著提升，運動後生長激素顯著增加，並抑制皮質醇的分泌，且從運動前至運動後 30 分鐘睪固酮濃度皆顯著降低，雖然合成性荷爾蒙的睪固酮降低，不過胰島素及生長激素皆顯著增加並抑制皮質醇的分泌，表示此增補對訓練效益是有幫助的。 13.

(23) 然而研究發現，有阻力訓練經驗男性在空腹 12 小時後進行 6 組 10 次重複深蹲訓練後，其睪固酮會顯著增加，不過在雄激素受體 (androgen receptor, AR) 方面，相較於前測則是顯著降低的情形 (Vingren et al, 2009; Ratamess et al, 2005) ，但在 Kraemer 等 (2006) 讓 10 名男性每天增補 2 克左旋肉鹼或安慰劑 21 天後，在阻力運動後攝食（56%碳水化合物、16%蛋白質、28%脂肪）或水，結果發現飲食增補後的雄激素受體 (androgen receptor, AR) 的含量會提升，因而刺激下視丘透過負回饋的機制增加促黃體生成激素 (luteinizing hormone) 的分泌，以至於持續刺激睪固酮的分泌，但血清睪固酮會被抑制。並且發現睾丸激素的下降幅度與 AR 的增加相互吻合，表示睾丸激素可能已經從循環系統轉移到肌肉中的蛋白質合成。或許是因為這個原因，使上述多篇文章增補後血液中睪固酮濃度皆下降，不過確切的機轉尚未有定論。綜整上述相關研究整理為下表 2，發現在訓練期間增補對壓力荷爾蒙皮質醇、睪固酮的反應皆不一致，但合成性荷爾蒙的胰島素有顯著上升，並在長期的實驗中有發現肌肥大與肌力增加的現象；然而，阻力訓練前增補對於睪固酮的下降可能與 AR 的增加有一定程度的關聯，且皮質醇的降低則與訓練的強度和訓練經驗與以及受試者年齡有關。表2. 訓練前中增補對賀爾蒙之影響作者 (年代). 受試者. 男7名 de Oliveira Quirino 等 (2012) Jung 等. 男 10 名. (2018). Baty 等 (2007). 男 34 名. 時間劑量. 運動. 前：立即中：每 2 個動作中間 8％麥芽糖糊精或安慰劑 180ml 每回合運動結束後進. 10 個上半身動作 60％胰島素↑； 1RM 12-15 下，共 3 回合皮質醇、肌 75 分酸激酶(×) 腿推蹬 8RM 五組，休息. 訓練總重. 行增補 1.2 g·kg-1 CHO+300ml 水. 1 分鐘，為一回合，完成後休息 30 分鐘，共重複四回合訓練. 前 30 分、後立即：. 4 組 8RM 高拉、腿屈曲、站立過頭推舉、腿. 量、平均重量、皮質醇 (×)；胰島素↑；生長激素、睪固酮↓ 運動次數 (×)、運動. 355ml 14. 結果.

(24) 運動中 0、44 分鐘：部伸展、下拉、腿推蹬、臥推 177ml (CHO6.2%+PRO1.5 %). McAnulty 等(2005). 男 30 名. Tarpennin 男 15 名 g 等(2001). Tarpennin 高齡男 5 g 等(2003) 名. 林正常與吳柏翰. 男 10 名. 前：30 分鐘 8ml． kg-1CHO 或 PLA 中：每 1 小時 10ml kg-1 h-1CHO 或 PLA. 前與每組間增補 6％ CHO 22-30ml. 前與每組間增補 6％ CHO 22-30ml. 前 60 分鐘 1g．kg-1 (葡萄糖或 P). 臥推、斜板臥推、肩推、直立上提、槓鈴划船、二頭肌捲曲、深蹲、前蹲和硬舉，第一組 40%1RM，之後皆 60%1RM，共四組 10 次重複，組間休息 2 分鐘，動作間休息 3 分鐘，共 2 小時單次及 12 週訓練臥推、坐姿划船、肩推、下拉、三頭肌伸展、二頭彎舉、腿推蹬、腿伸展、腿屈曲 75 ％1RM 10 次 3 回合，組間休息 1 分鐘臥推、坐姿划船、肩推、下拉、三頭肌伸展、二頭彎舉、腿推蹬、腿伸展、腿屈曲 75 ％1RM 10 次 3 回合，組間休息 1 分鐘 8 個動作 3 組 75%1RM10 次反覆，組間休息 5 分鐘. (2008). 15. 前立即血糖與胰島素 ↑、皮質醇與 CK 在運動後 24 小時↓ 皮質醇、 FRAP 值(×). 血糖、胰島素、CSA ↑；皮質醇↓. 皮質醇↓、睪固酮(×). 胰島素、生長激素↑；睪固酮、皮質醇↓.

(25) 第五節攝取碳水化合物之劑量與機轉一、劑量建議：在運動中，CHO 是重要的能量供應來源，尤其是在阻力訓練時，幾乎皆以此作為能量使用，而 CHO 的類型可分為單一式與複合式碳水化合物兩種，在 Shi 等 (1995) 指出複合式碳水化合物可使用不同轉運蛋白進行吸收，葡萄糖從 Sodium-dependent glucose cotransporters (SULT1) 進入腸胃而果糖則是由 glucose transporter 5 (GLUT5) 進入。因此，複合式碳水化合物的吸收量及吸收速率比單一式碳水化合物更佳；單一式碳水化合物最大氧化速率為 60g/h，而複合式碳水化合物則超過 60-70g/h，且葡萄糖加果糖氧化速率更高達 144g/h。因此，在選擇增補劑時，可以依照自己的需求去選擇不同類型的 CHO 進行增補。雖然碳水化合物攝入量與肌糖原利用率呈正相關，不過增補的最佳劑量是使外源性碳水化合物氧化速率最大化且不會造成胃腸不適的現象 (Jeukendrup ,2014) ，並且在 Spillane 與 Willoughby (2016) 研究指出在阻力訓練過程中過量增補蛋白質與 CHO 或單純 CHO，不會增加相對應的肌肉質量與血清類胰島素生長因子、生長激素、肝細胞生長因子的濃度，所以攝取的劑量並非越多越好，而是要根據其運動強度，持續時間，水合狀態、環境以及上述的種種因素進行考量。然而，在 Jeukendrup 與 Jentjens (2000) 研究指出 CHO 的氧化效率以 1.0 至 1.5 克/分左右的攝入率為最佳，而 Jäger 等 (2017) 則表示 340-455ml 的 6-8％CHO 溶液是維持血糖水平和促進運動表現的有效策略，另外，在 Bogdanov (2012) 研究更是提出了蜂蜜的增補策略如表 3。本研究所使用的增補劑量是參考上述這些研究所制定出來的。. 16.

(26) 表3. 蜂蜜增補建議劑量時間. 攝取量. 運動前 4 小時. 4g‧kg-1. 動前 1 小時. 1g‧kg-1. 運動前 10 分鐘. 0.5g‧kg-1. 運動期間. 30-60g‧h-1. 運動後 15 分鐘內. 1g‧kg-1 蜂蜜與蛋白質（3：1）. 二、攝取機轉：針對運動表現方面，由 Cheng, Place 與 Westerblad (2018) 實驗提出骨骼肌纖維在劇烈或長時間收縮時，不僅活性氧物質會增加，且肌漿網中的 Ca2+減少釋放，也使 ATP 合成來不及供應能量，導致輸出力量下降，造成疲勞的發生；不僅如此，肌原纖維內糖原減少會降低鈉鉀幫浦 (Na+/K+-ATPase) 活性，導致 ATP 降低，使產生較低的能量功率跨橋循環 (Qrtenblad ,Westerblad ＆ Nielsen, 2013) 。因此，若運動前攝取 CHO，則會先從口腔進入小腸，經由不同的轉運蛋白途徑進入血液中形成血糖和儲存為肝糖，當運動時就能立刻進行糖解作用，其增補可以走有氧或無氧路徑提來供能量給肌肉使用 (Thomas, Erdman & Burke, 2016)。另外，阻力訓練的主要目的是為了使肌肉肥大，以至於增加肌力爆發力等，因而藉由阻力訓練產生 PGC-1α4，進而提升 IGF-1 (Ruas et al.,2012) ，來達成此目的；然而透過增補 CHO 不僅可以降低運動時內源性糖原分解，提高葡萄糖的利用率，同時增加胰島素分泌，進而活化 PI3K，使進行 PI3K-AKT-mTOR 路徑，亦可達到肌肥大的效果 (Spiering et al.,2008) ，並且在 Lee 與 Owyang (2019) 研究發現，甜味在口腔中就能對中樞神經及腸胃道系統造成影響，還能引起大量腦衍生神經滋長因子 (brain-derived neurotrophy factor, BDNF)，建立新的腦細胞以及提供腦細胞動力的粒線體，因 CHO 是大腦、中樞神經系統和肌肉能量的主要供應者，使提升訓練強度。雖然 Phillips (2009) 指 17.

(27) 出胰島素濃度從 30 至 167 IU / mL 對於蛋白質合成 (Muscle protein synthesis, MPS) 的影響一致，但在 30IU/ml 的濃度下能有效抑制蛋白質分解。所以，增補能增加糖原回補、蛋白質合成及減少分解代謝的效益。. 第六節本章總結綜觀上述文獻，可歸納出以下幾點：一、蜂蜜是一種複合式碳水化合物，並且有許多抗發炎與氧化的功效，因此增補蜂蜜不但能使腸胃吸收效率更高外，也可能降低發炎反應，使訓練達到更好的效果。二、在訓練前的肌糖原含量十分重要，它能使運動表現提升以及加速運動後的糖原恢復，因此才需透過增補來使運動前與期間的糖原充足應付訓練。三、運動期間增補效益主要取決於總訓練量。若訓練量越大，且使用大肌肉群作為訓練，搭配短的休息時間，才能使外源性糖原受到較佳的利用，使運動表現提升。因此，在肌耐力與肌肥大訓練中最適合進行增補使訓練量增加，訓練效益提升。四、在賀爾蒙方面，運動期間增補適量的碳水化合物，能誘發合成性賀爾蒙胰島素增加，並且抑制分解性賀爾蒙皮質醇的產生，不過睪固酮會有降低的現象。另外，增補的劑量也是非常重要的考量因素，若過量增補則會產生反效果。五、運動前中增補的效益除了訓練的安排外，增補的時間、劑量及碳水化合物類型皆是會影響到其對運動表現與賀爾蒙作用。. 18.

(28) 第參章. 研究方法. 本章分為以下幾部分說明：第一節、受試對象；第二節、實驗時間與地點；第三節、實驗流程；第四節、實驗方法與步驟；第五節、資料分析及處理。. 第一節受試對象本研究受試者為 11 名自願參與且健康情況良好之 20 歲以上有阻力訓練習慣之男性，參與研究之受試者皆須符合以下條件：(一)無抽菸、酗酒之習慣、(二)無心血管相關疾病或家庭病史、(三)無糖尿病及其他代謝症候群相關疾病、(四)無運動傷害或被醫師告知不可進行激烈運動、(五)有阻力訓練能力與經驗。參與實驗前，每位受試者皆須填寫「健康及訓練情況調查表」(附錄一)，並詳細了解「受試者須知」及實驗流程後，於「實驗參與者知情同意書」(附錄二)上簽名，及正式成為本研究之受試對象。. 第二節實驗時間與地點一、實驗時間：自 108 年 7 月至 11 月二、實驗地點：國立台灣師範大學公館校區中正堂 B1 重量訓練室及生理學實驗室。. 第三節實驗流程於本研究中，每位受試者將參與共四次的測驗與實驗，每次之間至少相隔七日。第一次為實驗前測 (預備實驗)，主要是熟悉實驗流程和器材、測量身高體重，及進行肌力測驗(1RM)，共為三次實驗處理，包括蜂蜜、葡萄糖及安慰劑增補三種不同處理；三種處理以重複量數、平衡次序分派方法及單盲實驗設計。 (圖 1). 19.

(29) 1. 2. 3. 4.. 招募受試者 (健康年輕男性 11 名) 說明實驗流程及注意事項填寫實驗參與者知情同意書與健康及訓練情況調查表熟悉訓練器材及實驗流程. 1. 測量身高、體重 2. 測量每個訓練動作的 1RM. 重複量數平衡次序分派間隔七天以上. 增補時間：訓練前 10 分鐘、每 2 個動作結束後. 葡萄糖增補 + 阻力訓練. 蜂蜜增補 + 阻力訓練. 安慰劑 + 阻力訓練. 阻力訓練：硬舉、臥推、腿推蹬、坐姿划船、腿伸展、肩推。二回合 8RM，第三回合至力竭，組間休息 90 秒，動作間休息 2 分鐘. 採血點：第一次增補前、訓練後 5 分鐘、訓練後 20 分鐘. 資料處理分析. 20.

(30) 安靜休息 Pre20. 熱身. Pre10. 硬舉、臥推. 腿推蹬、坐姿划船. 腿伸展、肩推安靜休息. 0. Post 5. Post 20. ＝血液採集：血糖、胰島素、皮質醇、睪固酮、T/C ratio ＝一次增補 6%118ml 蜂蜜水或葡萄糖或安慰劑；共攝入 354ml 內含糖 21.24g 圖 1.實驗流程及程序. 第四節實驗方法與步驟以下就本實驗之一、實驗前測；二、實驗前準備；三、實驗處理；四、資料蒐集；五、資料處理分別敘述之。一、實驗前測 (一) 最大肌力測驗根據 Earle (2006) 研究的測驗方式進行以下測驗。 1. 輕鬆操作 5-10 次反覆的重量，休息 1 分鐘。 2. 3-5 次反覆的熱身重量，休息 2 分鐘。 3. 2-3 次反覆的接近最大重量，休息 2-4 分鐘。 4. 試舉 1RM 5. 成功：休息 2-4 分鐘再加重；失敗：休息 2-4 分鐘減重加重方式：上半身 5-10% (10-20 磅) ；下半身 10-20% (30-40 磅) 減重方式：上半身 2.5-5%;下半身 5-10% (二) 身高體重測量受試者於進行阻力訓練前，需著輕便運動服裝、運動鞋測量身高體重，作為受試者紀錄。 (三) 蜂蜜的 GI 值檢測 21.

(31) 依照林筱涵與劉珍芳 (2010) 研究的測量方式進行檢測。測驗前 8 小時禁止進食，可以喝水；10 名健康受試者皆進行 2 次測驗，測驗間隔一週，每次飲用 55g 葡萄糖或 61g 蜂蜜 (皆為 50g 碳水化合物) 加上 250ml 的水，在 5 分鐘內喝完；在空腹、15、30、45、60、90、120 分鐘進行指尖採血，利用葡萄糖所測得之曲線下面積當作 100，在與蜂蜜水測得之面積相比較，就能得出其 GI 值。二、實驗前準備 (一) 調整測驗器材重量每次實驗前，確認器材重量是受試者所需做的重量。 (二) 抽血器材準備確認採血器材及所需耗材是否乾淨、足夠；於各採血管上事先標明受試者編號；確認支援採血人員依時抵達。三、受試者準備受試者於前測實驗前，應維持日常的身體活動量及運動型態。正式實驗前 24 小時應避免攝取酒精、咖啡因，及其他額外的營養增補劑，且避免激烈運動以及前一晚需有充足睡眠。進行第一次正式實驗時，需填寫簡單的飲食紀錄，紀錄實驗前一天至當天測驗前的所有飲食內容，在之後每次正式測驗前一天還原第一天飲食狀況。四、增補劑準備本研究所使用之增補劑及安慰劑於實驗前 15 分鐘調製完成，放置保冷袋中待用，於實驗開始時取出。本研究採單盲設計方式進行增補，每位受試者平衡次序分派進行蜂蜜、葡萄糖及安慰劑處理。三種處理每次增補 118ml 之溶液；蜂蜜增補處理時，溶質為 6%龍眼蜜 (蜂蜜工坊，台灣）；葡萄糖增補處理時，溶質為 6%葡萄糖 (糖寶，台灣) ；安慰劑增補處理時，溶質為 6%赤藻糖醇 (SENTOSA，美國) 調製與蜂蜜水相同濃度的葡萄糖和安慰劑溶液。五、實驗處理 (一) 阻力訓練 22.

(32) 依實驗前測所評估之 8RM 定為訓練強度。受試者需完成硬舉、臥推、腿推蹬、坐姿划船、腿伸展、肩推這六個動作，2 回合 8RM，第 3 回合至力竭，換到下一個動作，組間休息 90 秒，動作間休息 2 分鐘，總訓練時間約 40 分鐘。 (二) 增補處理本研究每次實驗需進行三次的溶液增補處理，於運動前 10 分鐘為第一次增補，之後每兩個動作完成後進行增補，共增補三次。六、資料蒐集 (一) 每個訓練動作的總做功與次數本研究使用機械式器材進行訓練，因此總做功為總次數×重量×位移。 (二) 蜂蜜 GI 值 10 名男性受試者隔夜禁食 8 小時以上，在早上 8 點空腹到實驗室使用 AccuCHEK Guide 羅氏智航血糖機進行指尖採血，之後第一次實驗飲用 55g 葡萄糖 (內含 50g 碳水化合物) ，第二次實驗飲用 61g 的蜂蜜 (內含 50g 碳水化合物) ，並在飲用後 15、30、45、60、90、120 分鐘時分別進行採血，監測血糖的變化。 (三)血液樣本受試者抵達實驗室，靜坐休息 10 分鐘後，進行第一次採血；第二次採血為運動後 5 分鐘；第三次採血為運動後 20 分鐘。血液樣本一律由合格護士採集肘前靜脈血，並使用血糖機測量肘前靜脈血液的血糖。每次靜脈採血放置紅頭管抽取 10ml 之血液樣本靜置 30 分鐘，放置離心機中，以 3000RPM=1006.2g 轉速離心 15 分鐘，抽取血漿置於-20℃冰箱，待後續分析胰島素、皮質醇、睪固酮、T/C ratio。 1. 血糖使用 Accu-CHEK Guide 羅氏智航血糖機進行測量。 2. 胰島素血液樣本收集後存於-20℃冰箱，送至檢驗所，使用 SOP-1470 R-COUNTER 儀器進行檢驗分析，其分析步驟如下： 23.

(33) (1) 為每個校準器，樣品，對照品一式兩份地標記塗有塗層的試管。為了確定總數，請標記 2 條普通試管。 (2) 簡短地渦旋校準器，樣品和對照，然後漿液 50ul 的緩衝益分配到各試管中。 (3) 將 50ul 示踪劑分配到每個管中。 (4) 用手輕輕搖動試管架，以釋放任何殘留的氣泡。 (5) 靜置在室溫 2 小時。 (6) 吸出（或倒出）每個試管中的內容物（總計數除外）。確保抽吸器的塑料尖端到達塗層管的底部，以清除所有液體。 (7) 用 2 ml 加工洗滌液（總計數除外）洗滌試管。在添加加工洗滌液期間，避免起泡。 (8) 吸出（或倒出）每個試管中的內容物（總計數除外）。 (9) 再次用 2ml 洗滌液（總計數除外）洗滌試管，然後抽吸（或傾斜的析）。 (10). 最後一次洗滌後，讓試管直立兩分鐘，然後吸出剩餘的液滴。. (11). 在伽瑪計數器中計數試管 60 秒。. 3. 睪固酮血液樣本收集後存於-20℃冰箱，送至檢驗所，使用 DXI800 進行檢驗分析。 4. 皮質醇血液樣本收集後存於-20℃冰箱，送至檢驗所，使用 ROCHE e601 進行檢驗分析，其分析步驟如下： (1) 第一次培養 (1st incubation) : 20 µL：20μL 的檢體，具皮質醇特異性的生物素化抗體、及以乙釕化物標記的皮質醇衍生物三者孵育在一起。根據檢體中分析物的濃度及各個免疫複合物形成的情形，生物素化的抗體上之結合區有一部份被檢體分析物佔據而有有一部份則被釕化物標記的半抗原佔據。 (2) 第二次培養 (2nd incubation) :加入以 streptavidin 包覆的微粒子後 , 24.

(34) 複合物藉著生物素以及 streptavidin 的互相反應而和固態物質相結合。 (3) 反應混合物被吸取至測量室中，微粒子會被磁力吸引到電極表面，沒有被吸引的物質隨後會經由 ProCell 移除。然後利用電極的電壓引發化學光 (chemiluminescent) ，以 photomultiplier 進行偵測。 (4) 經由二點校正儀器專一地所產生的校正曲線以及由試劑條碼所提供的 master 曲線去得到測定的結果。 5. T/C ratio 上述所得之睪固酮數值除以皮質醇數值，得出的結果。. 第五節資料分析及處理本研究實驗測量所得結果以 SPSS (Statistical Package for Social Science) Windows23.0 版統計套裝軟體進行以下分析處理。顯著水準定為 α=.05。一、所有測得數據皆比平均數 (M) ±標準差 (SD) 呈現描述性統計結果，圖中數據則以平均數 (M) ±標準誤 (SE) 呈現。二、以重複量數二因子變異數分析 (Two-way ANOVA with repeated measures) 考驗三種增補處理 (蜂蜜水、葡萄糖、安慰劑) 對全身阻力訓練之依變項 (總做功、反覆次數、血糖、胰島素、睪固酮、皮質醇) 差異，若交互作用達顯著時，再進以單純主要效果進行考驗，並使用 Tukey 檢定法進行事後比較。三、運動表現使用單因子重複量數分析：自變項為增補組別 (蜂蜜組、葡萄糖組、安慰劑組) ；依變項為訓練動作 (硬舉、臥推、腿推蹬、坐姿划船、腿伸展、肩推) 。. 25.

(35) 第肆章. 結果. 本章將實驗所得知數據經統計分析並整理後，在以下各節分別呈現：第一節、受試者基本資料；第二節、蜂蜜 GI 值；第三節、外源性碳水化合物增補後的運動表現情形；第四節、外源性碳水化合物增補後的血液指標變化狀況。. 第一節受試者基本資料本研究以 11 名具規律運動習慣之健康男性受試者，其基本資料如下表 4。表4. 受試者基本資料 N=11 年齡 (yr). 24.45±3.21. 身高 (cm). 173.77±5.90. 體重 (kg). 77.88±11.51. 訓練年齡 (yr). 1.55±1.73. 26.

(36) 第二節蜂蜜 GI 值在各採血時間點計算 2 小時血糖變化的曲線下面積，在把蜂蜜與葡萄糖所得出來的面積相除，如表 4-2，再乘 100，則算出蜂蜜 GI 值為 91.94，因此，蜂蜜測得 GI 大於 70，所以被歸類為高 GI 的食物。其飲用蜂蜜或葡萄糖後 2 小時之血糖變化的總面積如下表 5。表5. 各組飲用後 2 小時之 GI、血糖總面積編號. GI. 蜂蜜組. 葡萄糖組. (mg/dl*120mins). (mg/dl*120mins). 1. 11617.5. 13515. 85.96. 2. 12540. 13980. 89.70. 3. 13575. 14640. 92.73. 4. 12712.5. 14212.5. 89.45. 5. 13732.5. 15030. 91.37. 6. 12997.5. 14497.5. 89.65. 7. 16740. 19267.5. 86.88. 8. 15285. 15945. 95.86. 9. 13605. 13552.5. 100.39. 10. 14925. 15165. 98.41. 平均. 13773. 14980.5. 91.94. 27.

(37) 第三節外源性碳水化合物增補後的運動表現情形本研究使用單因子重複量數的方式，每位受試者皆從事三次正式實驗，每次增補不同類型的 CHO (蜂蜜、葡萄糖、安慰劑) ，訓練期間使用固定重量與位移，且記錄其所做之次數，所得數據經單因子重複量數統計分析後呈現，如表 6。在腿伸展的總做功與次數發現蜂蜜組皆顯著高於葡萄糖組及安慰劑組 (p＜ .05) ，而在坐姿划船與 Totle 的總做功與次數則為蜂蜜組與葡萄糖組皆顯著高於安慰劑組 (p＜ .05) ，在肩推的總做功經由事後比較發現蜂蜜組顯著大於安慰劑組。一、六角槓硬舉結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 9012.96±2550.57J ；葡萄糖： 9695.05±2499.79J；安慰劑：9701.07±2744.14J) 之間並無顯著差異 (p=.486) ；次數 (蜂蜜：15.73±3.47 下；葡萄糖：17.18±4.73 下；安慰劑：17.09±4.70 下) 之間並無顯著差異 (p=.332) 。二、臥推結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 7823.01±2904.09J ；葡萄糖： 8002.47±2707.70J；安慰劑：7156.87±2534.78J) 之間並無顯著差異 (p=.064)；次數 (蜂蜜：15.73±5.29 下；葡萄糖：16.18±5.10 下；安慰劑：14.09±3.75 下) 之間並無顯著差異 (p=.075) 。三、腿推蹬結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 21666.39±9909.34J ；葡萄糖： 21903.31±7618.22J；安慰劑：21315.01±6991.47J) 之間並無顯著差異 (p=.915) ；次數 (蜂蜜：17.55±6.01 下；葡萄糖：18±4.47 下；安慰劑：18.09±5.3 下) 之間並無顯著差異 (p=.894) 。四、坐姿划船結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 16368.62±4370.18J ；葡萄糖： 15795.63±3976.98J；安慰劑：13729.1±3798.32J) 之間達顯著差異 (p=.003) ;次 28.

(38) 數 (蜂蜜：19.18±3.66 下；葡萄糖：18.55±3.33 下；安慰劑：16.18±3.79 下) 之間達顯著差異 (p=.001) 。經事後比較發現蜂蜜與葡萄糖增補皆顯著高於安慰劑增補 (F=7.995, p＜ .05) 。五、腿伸展結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 10909.32±2057.20J ；葡萄糖： 9556.76±2681.11J；安慰劑：8718.81±2999.86J) 之間達顯著差異 (p=.001) ;次數 (蜂蜜：20.45±4.57 下；葡萄糖：17.91±5.49 下；安慰劑：16.45±6.23 下) 之間達顯著差異 (p=.001) 。經事後比較發現蜂蜜顯著高於葡萄糖及安慰劑增補 (F=9.579, p＜ .05) 。六、肩推結果顯示三種增補處理的總做功 ( 蜂蜜： 8703.73±3711.51J ；葡萄糖： 8889.50±3708.58J；安慰劑：7489.71±3976.85J) 之間達顯著差異 (p=.047) ;次數 (蜂蜜：15.09±5.19 下；葡萄糖：15.36±4.74 下；安慰劑：13.45±5.30 下) 之間並無顯著差異 (p=.135) 。經事後比較發現蜂蜜顯著高於安慰劑增補 (F=3.586,p＜ .05) 。. 七、TOTAL 總做功結果顯示三種增補處理. ( 蜂蜜： 74484.03±18388.28J ；葡萄糖：. 73842.73±17230.28J；安慰劑：68110.58±15685.57J) 之間達顯著差異 (p=.015) ; 次數 (蜂蜜：103.73±16.84 下；葡萄糖：103.18±16.02 下；安慰劑：95.36±15.43 下) 之間達顯著差異 (p=.008) 。經事後比較發現蜂蜜與葡萄糖增補皆顯著高於安慰劑增補 (F=5.249, p＜ .05) 。. 29.

(39) 表6. 各個動作之總做功及次數蜂蜜總做功(J) 六角槓硬舉 9012.96± 2550.57 臥推 7823.01± 2904.09. 葡萄糖. 安慰劑. 次數(下). 總做功(J). 次數(下). 總做功(J). 次數(下). 15.73±. 9695.05±. 17.18±. 9701.07±. 17.09±. 3.47. 2499.79. 4.73. 27. 4.7. 15.73±. 8002.47±. 16.18±. 7156.87±. 14.09±. 5.29. 2707.7. 5.1. 2534.78. 3.75. 腿推蹬 21666.39± 17.55±. 21903.31± 18±. 21315.01± 18.09±. 7618.22. 6991.47. 5.3. 15795.63± 18.55±. 13729.1±. 16.18±. 3976.98*. 3.33*. 3798.32. 3.79. 腿伸展 10909.32± 20.45±. 9556.76±. 17.91±. 8718.81±. 16.45±. 2057.20*#. 4.57*#. 2681.11. 5.49. 2999.86. 6.23. 15.09±. 8889.5±. 15.36±. 7489.71±. 13.45±. 5.19. 3708.58. 4.74. 3976.85. 5.3. 9909.34. 6.01. 坐姿划船 16368.62± 19.18± 4370.18*. 肩推 8703.73± 3711.51＊. 3.66*. Total 74484.03± 103.73± 18388.28*. 16.84*. 4.47. 73842.73± 103.18±. 68110.58± 95.36±. 17230.28*. 15685.57. 16.02*. 15.43. 註：所有數值均以平均數±標準差表示；*表示與安慰劑組達顯著差異，p＜ .05； #表示與葡萄糖組達顯著差異，p＜ .05。. 30.

(40) 第四節外源性碳水化合物增補後的血液指標變化狀況本研究分別在運動前空腹 (Pre) 、運動後5分鐘 (Post5) 、運動後20分鐘 (Post20) 進行血液採集，經重複量數二因子變異數分析後，其各項生化指標於不同時間點之變化如表4-3。並在以下分別列出血糖、胰島素、睪固酮、皮質醇、T/C ratio的變化情形。一、血糖本研究以蜂蜜、葡萄糖及安慰劑的增補組在運動前、運動後 5 分鐘、運動後 20 分鐘所測得之血糖數據 (如表 7 所示) ，經二因子重複量數變異數分析後，如圖 2 所示。結果顯示增補因子與時間因子的交互作用未達顯著水準 (F=2.412, p=.065) 。其主要效果的部分，增補因子未達顯著水準，但時間因子 (F=5.215, p＜ .05) 達顯著差異，經事後比較發現在運動後 5 分鐘 (99.42 ± 2.36ng/dl) 顯著高於運動前 (92.82 ± 1.08ng/dl) 。運動前至運動後 5 分鐘的血糖變化面積，其三組無顯著差異；而在運動後五分鐘至運動後 20 分鐘之血糖變化面積其葡萄糖組則顯著高於蜂蜜及安慰劑組 (F=3.794, p＜ .05) ，如圖 3 所示。. a. 115. Blood glucose (mg/dl). 110 105 100 Honey 95. Glucose. 90. Placebo. 85 0 80 Pre. Post5. Post20. Time. 圖 2.血糖在不同增補處理和時間點之變化。a 表示與 Pre 比較 p＜ .05。. 31.

(41) 1540. *. Blood glucose AUC. 1520. 1500. 1480. Honey Glucose Placebo. 1460. 1440. 1420 Post5-Post20. Time. 圖 3.血糖在 Post5 到 Post20 之曲線下面積變化。*表示與另外兩組比較 p＜ .05。. 32.

(42) 二、胰島素本研究以蜂蜜、葡萄糖及安慰劑的增補組在運動前、運動後 5 分鐘、運動後 20 分鐘所測得之胰島素數據 (如表 6 所示) ，經重複量數二因子變異數分析後，如圖 3。結果顯示增補因子與時間因子的交互作用達顯著水準 (F=4.003, p＜ .05) ，進行單純主要效果檢定，發現在增補因子方面，蜂蜜組 (18.67 ± 2.13uIU/ml) 與葡萄糖組 (20.85 ± 1.73uIU/ml) 皆顯著高於安慰劑組 (15.95 ± 1.51uIU/ml) 。運動後 5 分鐘蜂蜜組與葡萄糖組於分別為 22.86 ± 2.51uIU/ml、24 ± 2.47 uIU/ml，於 Post20 時間點上分別為 23.31 ± 3.491uIU/ml、28.68 ± 3.82uIU/ml，皆顯著高於安慰劑組 18.4 ± 1.85uIU/ml、18.83 ± 2.22 (p＜ .05) 。而在時間因子方面， Post5 及 Post20 的時間點上，皆顯著高於 Pre，其蜂蜜組、葡萄糖組及安慰劑組分別為 9.85 ± 1.03uIU/ml、9.86 ± 0.86uIU/ml、10.62 ± 0.97uIU/ml (p＜ .05) 。在運動後的時間點上，2 個增補組與安慰劑組相比皆顯著提升，且三組皆顯著高於前測，表示透過運動不管有無增補皆會使胰島素提升。. a. 45 a. 40. Insulin (uIU/ml). 35 30. **. 25. * *. 20. Honey Glucose. 15. Placebo. 10 5 0 Pre. Post5. Post20. Time. 圖4.胰島素在不同增補處理和時間點之變化。*表示與安慰劑比較p＜ .05；a表示與Pre比較p＜ .05。. 33.