實驗前準備

1. 玻璃器皿

玻璃器皿使用前需先用不含磷之清潔劑浸泡、清洗，然後以自來水沖 洗5 至 6 次，接下來則用 10﹪之鹽酸（HCl）浸泡最少一個小時，之後再 以自來水沖洗 5 至 6 次後，再以去離子水沖洗 3 至 4 次，至入烘箱中以 52℃之溫度烘乾。使用前需在其開口處封上鋁箔，置入滅菌斧中，以 1.1Kg/cm²、121℃的條件滅菌 15 分鐘（定量瓶於泡酸液清洗完後，置於 架上陰乾即可）。

2. 藻類之培養及保存

開始時先進行固態培養基的培養，固態培養基組成和液態培養基相 同但加1 % 之洋菜膠（Agar），通常可保存約 6 個月（在 4 ℃下）。藻類 每四個星期移植至新的培養皿以保持菌種的健康。另外也做液態培養基 的培養，通常可保存4 個星期（4 ℃下），四個星期後繼續做移植以保存

3. ISOTON II 之配製及電子顆粒計數器之操作

ISOTON II 之作用主要是作為電子顆粒計數器之導電溶液，也就是 說，電子顆粒計數器中所用之溶液皆為ISOTON II。ISOTON II 的配製比 例為1 公升的超純水中加入 10g 氯化鈉（NaCl），攪拌使其混合均勻，然 後以電導計測量其導電度，所需要之導電度為17mmho。若是導電度低於 17mmho，則再慢慢加入氯化鈉，攪拌均勻，直到導電度為 17mmho；相 反的，如果導電度超過了17mmho，則慢慢加入超純水，攪拌均勻，直到 導電度降至17mmho。待導電度達 17mmho 後再以 0.2µm 之濾膜過濾此溶 液，其濾液即是我們所要之 ISOTON II 溶液 ，以顆粒計數器量測到之食 鹽顆粒數空白值須小於200。

電子顆粒計數法及操作原理:

電子顆粒計數器在使用前須先暖機約半小時以使機器內之管路可抽 至真空狀態，使用前後皆須流洗管路，並補充上方之300ml ISOTON 抽取 溶液。在電子顆粒計數器內有一根玻璃管，操作中需浸入含有Isoton 稀釋 樣品的燒杯中。而在玻璃管近底端的側面具有半透膜的精密小圓孔，用以 吸取水樣。在玻璃管內外各有一電極片通以直流電，當水樣中所含之顆粒 經過圓孔時，會暫時性地干擾到電流，其干擾正比於每個顆粒的大小。所 產生的電阻則由示波器的波峰顯示，其高度正比於顆粒的多少，個別的脈 衝數由電子數位器直接記錄顯示。而水樣在量測的過程須加以攪拌以使顆 粒 均 勻 分 佈 。 電 子 顆 粒 計 數 法 適 用 於 單 顆 粒 藻 類 之 計 數 ， 如 Pseudokirchneriella subcapitata。電子顆粒計數器主要條件設定如下表 4.4。本實驗採用 50μm 孔徑之毛細玻璃管，其設定之量測粒徑上下限為 2.622μm 至 30μm。量測時，所取之藻液量依生長情形而定，若藻液色澤 較深時則取1 ml，若藻液色澤較淺則取 5 ml，放入 50 ml 之量瓶內，再加

入Isoton 至 50 ml 。將之倒入燒杯，放進顆粒計數器內量測。以顯示之讀 數值扣除空白顆粒數之數值（純 Isoton 之背景值），連續三次其值相差在 2 % 者之平均值為量測值。

Table. 4.5.1 電子計數器設定之條件

項 目 數 值

滿刻度電流量 (Full scale) 10mA

極性 (Polarity) +

電流 (Currents , I) 100

粒度下限 (Diameter Lower Threshold , Tl) 2.622µm 粒度上限 (Diameter Lower Threshold , Tu) 30µm 脈衝衰減倍率 (Attenuation , A) 1

脈衝放大倍率 (Preset Gain) 1

警戒粒徑限度 (Alarm Threshold) OFF

分析量 500µL

4. 盤面光度之調整

使用單面為白色亮面具反射光線效果之木板和錫箔紙，組裝於震盪 器四周，調整木板大小及形狀，使整個震盪器盤面之光度落在64.5 ± 10﹪

μEm^-2s^-1 之範圍內，以減少實驗之誤差。

5. 溶氧測定儀之校正

濃度之抑制率。使用溶氧測定儀之前須先將其偵測頭以去離子水沖洗充 分濕潤後，放置一段時間觀測其在空氣中之飽和溶氧量是否為8.5 mg/L 上 下，若其值相去甚遠則需進行校正，校正方法為將電極置於 2.5 公分左右 水量之BOD 瓶（可視同 100％溼度），轉鈕至校正鍵，輸入校正值（100

％ ） ， 確 認 後 轉 回 一 般 測 定 鍵 ， 連 續反 覆 校 正 三 次 。 每 月 定 期 更換 CLARK-TYPE 薄膜與 3M 氯化鉀電解質；若有必要時，需以亞硫酸鈉 30

％將 PROBE 表面清洗乾淨，不要殘留任何化學物質，而得 0％之 DO 溶 液，進行零點校正。