• 沒有找到結果。

以收集液為採樣介質之採樣器(Liquid-based samplers)效能評估

第五章 材料與方法

5.8 S. aureus 空氣採樣方法之效能評估

5.8.2 以收集液為採樣介質之採樣器(Liquid-based samplers)效能評估

本研究評估之 Liquid-based samplers 包括 All glass impinger-30(AGI-30)與 BioSampler(SKC Inc., Eighty Four, PA, USA),AGI-30 與 BioSampler 之 50%截取 氣動粒徑(d50)分別為0.31μm(Macher and Burge 2001)與 0.3μm (Deloge-Abarkan et al. 2007),兩者抽氣流量均為12.5 L/min。AGI-30 與 BioSampler 之流量校正皆 於每次進行採樣評估實驗前完成,並於採樣實驗結束再進行流量後測。

5.8.2.1 評估 S. aureus 空氣採樣收集液之採樣效能

本研究以生物氣膠文獻中常使用之收集液作為效能評估對象,包括經過濾之 無菌水(Filtered deionized water,DW)、磷酸緩衝液(Phosphate buffer saline,PBS)

與Tween 80 mixture(1% peptone, 0.01% Tween 80 and 0.005% antifoam Y-30 in Deionized water, TM)。評估方法如圖 5 之 A 流程所示,在製備與調整 S. aureus 菌 液濃度後,開啟生物氣膠產生系統之壓縮空氣,並將通過乾、溼空氣管線與內裝 40 mL 無菌水之Nebulizer 的氣體流量分別校正為前述之預設流量。20 分鐘後,將

培養基置於37℃培養箱中培養 24 小時後計數菌落,並計算 R 值以評估 五種採樣時間之採樣效能

關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,進行空氣採樣後 Nebulizer 中菌液濃度 測試

暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,進行空氣採樣前 Nebulizer 中菌液 濃度測試後,重新開啟壓縮空氣

10 分鐘

Andersen 1-STG 搭配先前實驗評估具較佳採樣效能之培養基,於暴露艙 進行3、6、15、30 與 60 分鐘空氣採樣

3、6、15、30 與 60 分鐘 30 分鐘

連接Nebulizer 之壓縮空氣暫時關閉,並以 40 mL 且濃度為108 CFU/mL 之 S. aureus 懸浮菌液取代無菌水後,重新開啟連接Nebulizer 之壓縮空氣,使 S. aureus 菌液氣

懸,並受到壓縮空氣推送而進入暴露艙中,共運作 30 分鐘。此時暫時關閉連接

Nebulizer 之壓縮空氣,並自Nebulizer 中取出 0.1 mL S. aureus 菌液,經適當稀釋後 利用推盤法塗抹至先前實驗(5.8.1.1)評估具最佳採樣效能之培養基上,定量空氣 採樣前 Nebulizer 中菌液濃度。其後重新開啟壓縮空氣,等待 10 分鐘後至暴露艙 中生物氣膠分佈均勻,再將內裝有20 mL 隨機選取之三種收集液的 AGI-30 置於暴 露艙下方採樣口,進行3 分鐘採樣;採樣結束後亦自 Nebulizer 中取 0.1mL 菌液進 行推盤,以與採樣前相同實驗方式定量採樣後Nebulizer 中菌液濃度。

採樣結束後即進行量測 AGI-30 內之收集液總體積,且收集液不經過儲放,

即取出其中0.1mL S. aureus 菌液,經適當稀釋後推盤至先前實驗(5.8.1.1)評估具 最佳採樣效能之培養基上。

1000 ×g 於 4℃下離心 5 分鐘

S. aureus(ATCC 29213)於 50mL LB broth 在 37℃下培養 14 小時(2.36 ×g)

開啟系統壓縮空氣,將乾、溼空氣與Nebulizer 管線校正為預設流量 移除上清液後加入適量無菌水,再將此細菌懸浮液進行A600測定,調製

為40 mL且濃度為108 CFU/mL 之 S. aureus菌液

20 分鐘

暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,將 40mL 具適當濃度之 S. aureus 菌 液置入Nebulizer 後,重新開啟壓縮空氣

30 分鐘

暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,進行空氣採樣前 Nebulizer 中菌液 濃度測試後,重新開啟壓縮空氣

10 分鐘

40

圖 5 S. aureus 採樣收集液與採樣時間之效能評估

上述培養基皆置於 37℃培養箱中培養 24 小時並計數菌落。AGI-30 搭配三種 收集液採樣所得之菌落數,經收集液體積、採樣時間與採樣流量的校正,可得到 其空氣中 S. aureus 採樣濃度(Cair_AGI-30)。將此濃度除以其相對應採樣前後Nebulizer 中菌液濃度(Csusp)之平均值,此比值即作為該收集液空氣採樣之效能指標(R, R

= Cair_ AGI-30/Csusp),每種收集液進行四重複測試。有關上述各濃度與R 值之計算公

式如下:

AGI-30 採樣所得之暴露艙空氣中S. aureus 細菌濃度(Cair_ AGI-30)計算公式如 下:

Cair_ AGI-30(CFU/m3) =((N / 0.1)× D × V)/(L × T × 0.001)

N(CFU):培養基於37°C培養箱中培養24 小時後之菌落數 0.1(mL):因自收集液中取出0.1 mL 菌液推盤,需換算為 1 mL D:將收集液推盤時之稀釋倍數

V(mL):收集液採樣後之總體積

L(L/min):AGI-30採樣流量(12.5 L/min)

T(min):空氣採樣時間

0.001:將空氣採樣之單位體積由 1 L 換算為 1 m3

量測液體採樣器內收集液總體積,並以推盤法測試採樣所得之細菌濃 度,培養基置於37℃培養箱中培養 24 小時後計數菌落,並計算 R 值以

進行效能評估

關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,進行空氣採樣後 Nebulizer 中菌液濃度 測試

A. AGI-30 搭配 20mL 之 DW、PBS 或Tween 80 mixture,於暴露艙進行

3 分鐘空氣採樣

3 分鐘

B. AGI-30 與 BioSampler 搭配先前實 驗評估具最佳空氣採樣效能之收集 液,於暴露艙進行3、6、15、30 與

60 分鐘之空氣採樣 3、6、15、30 與 60 分鐘

Nebulizer 中 S. aureus 菌液濃度(Csusp)計算公式如下:

Csusp(CFU/mL)=(N / 0.1)× D

N(CFU):培養基於37°C培養箱中培養24 小時後之菌落數

0.1(mL):因自Nebulizer 中取出 0.1 mL 菌液推盤,需換算為 1 mL D:推盤時之稀釋倍數

採樣效能指標(R)計算公式如下:

R = Cair_ AGI-30/Csusp

Cair_ AGI-30(CFU/m3):以AGI-30 於暴露艙採樣所得之空氣中 S. aureus 濃度 Csusp(CFU/mL):該次空氣採樣前後Nebulizer 中菌液濃度之平均值

5.8.2.2 評估 S. aureus 空氣採樣收集液之流失率

以液體為介質之採樣器在引入生物氣膠於收集液的過程中,收集液之再氣膠 化可能造成液體與細菌流失(Lin et al. 2000)。因此本研究評估收集液之採樣效能 外,亦測試DW、PBS 與 Tween 80 mixture 於不同採樣時間下之液體流失率。本實 驗流程如圖 6 所示。完成 S. aureus 菌液之製備與濃度調整後,即進行 AGI-30 與 BioSampler 重量之量測(Wempty, mg),而後進行內裝有 20 mL 收集液之液體採樣 器總重之量測(Wbefore, mg),其重量差值與收集液體積相除即為該收集液之密度(D, mg/mL),密度值將用於計算液體流失率。

接著以與前述相同操作方式進行系統流量與濕度調控,並將40 mL 且濃度為 108 CFU/mL 之 S. aureus 懸浮菌液置入Nebulizer,俟其穩定後再將內裝有20 mL 收集液之AGI-30 或 BioSampler,置於暴露艙下方採樣口進行 3、6 與 15 分鐘採樣;

完成採樣後亦將液體採樣器進行秤重(Wafter, mg),其採樣前後之重量差值,與該 收集液之密度相除後即可得流失液體之體積,此數值以採樣時間進行校正後,可 計算收集液之流失率(%)。流失率計算公式如下:

流失率(%)=((Wafter-Wbefore)/ D)/ 20 D(mg/mL)=(Wbefore-Wempty)/ 20

Wbefore(mg):採樣前內裝收集液之採樣器重量 Wempty(mg):採樣前未裝收集液之採樣器重量

Wafter(mg):採樣後內裝收集液之採樣器重量

42

20(mL):收集液體積

圖 6 S. aureus 空氣採樣收集液之流失率測試

5.8.2.3 時間因子對 AGI-30 與 Biosampler 採樣效能之影響

本實驗流程如圖 5 之 B 流程所示。於系統開啟壓縮空氣後進行流量校正。俟 20 分鐘後,以與前述相同操作方式以 40 mL 且濃度為108 CFU/mL 之 S. aureus 懸 浮菌液取代無菌水。30 分鐘後暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,以測試空氣採 樣前 Nebulizer 中菌液濃度。其後重新開啟壓縮空氣,等待 10 分鐘後再將內裝有

S. aureus(ATCC 29213)於 50mL LB broth 在 37℃下培養 14 小時(2.36 ×g)

1000 ×g 於 4℃下離心 5 分鐘

暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,將 40mL 具適當濃度之 S. aureus 菌液置入Nebulizer 後,重新開啟壓縮空氣

內裝20mL DW、PBS 或 Tween 80 mixture 之液體採樣器於暴露艙進行 3、

6 與 15 分鐘空氣採樣

關閉壓縮空氣後,量測內裝收集液之液體採樣器總重,以計算流失率 3、6 與 15 分鐘

暫時關閉連接Nebulizer 之壓縮空氣,其後重新開啟壓縮空氣 10 分鐘

30 分鐘

移除上清液後加入適量無菌水,再將此細菌懸浮液進行A600測定,調製 為40 mL且濃度為108 CFU/mL 之 S. aureus菌液

量測AGI-30 與 BioSampler 之淨重與內裝有 20 mL 收集液之總重,記錄 重量差值以計算收集液之密度

20 分鐘

開啟系統壓縮空氣,將乾、溼空氣與Nebulizer 管線校正為預設流量

20 mL 先前測試(5.7.2.1)評估具最佳空氣採樣效能之收集液的 AGI-30 或 Biosampler 置於暴露艙下方採樣口,進行 3、6、15、30 與 60 分鐘採樣;採樣結束 後亦自Nebulizer 中取 0.1 mL 菌液進行推盤,以與採樣前相同實驗方式測試採樣後 Nebulizer 中菌液濃度。

液體採樣器內之收集液總體積將於採樣結束後進行量測,且收集液不經過儲放 步驟,即取出其中0.1mL S. aureus 菌液,經適當稀釋後推盤至先前實驗(5.8.1.1)

評估具最佳採樣效能之培養基上。

上述培養基皆將置於 37℃培養箱培養 24 小時候計數菌落。AGI-30 與 Biosampler 於不同採樣時間之效能指標值(R)如前述(5.8.2.1)之方式進行計算,

每種採樣時間進行四重複測試。