第三章 結果
3.1 比較非毒性與毒性禽流感病毒株之間蛋白質體的差異
3.1.2 血液凝集素重鏈 (HA1) 為兩禽流感病毒株蛋白質圖譜上差異最
使用由雞胚胎之尿囊液純化出之禽流感病毒,以 10% TCA/Acetone 沉澱其蛋白 質,並進行二維電泳,使用 Coomassie blue 及硝酸銀染色法比對非毒性與毒性 AIV 蛋 白質體之差異。結果發現 HA1 為二維圖譜上差異最大之蛋白質點。接著使用血液凝集 素 (HA) 單株抗體進行免疫染色,發現非毒性及毒性 AIV 之 HA1 皆有 6 種不同等 電點之異構物。
3.1.1 兩株 2838 禽流感病毒二次元電泳圖譜之比較
本實驗使用病毒全蛋白進行二次元電泳分析,比較非毒性 (2838N) 與毒性 (2838V) 禽流感病毒株之蛋白質體。圖 3.1 a,b 使用 Coomassie blue 染色,並以質 譜儀進行蛋白質份鑑定,可在蛋白質圖譜中發現最為豐富的三種蛋白質。第一種為 佔蛋白質總量最大之間質蛋白 1 (M1),M1 分子量約 24 kD 為結合流感病毒 RNA 之蛋白質,因此 M1 富含鹼性胺基酸,其位於圖譜中 pH 10 的位置,但事實上 M1 等電點可能大於 10。第二種為核殼蛋白 (NP),NP 約 60 kD 其本身為包覆 RNA 的 蛋白質,因此其本身等電點亦可能超過 10。第三種為血液凝集素 (HA),圖譜中可 發現分子量約 130 kD 之 HA0,50 kD 之 HA1 及 25 kD 之 HA2。圖 3.1 c,d 為圖 3.1 a,b 之膠片進行硝酸銀染色的結果,可發現更多蛋白質點,這些蛋白質有些來 自病毒本身,有些來自於病毒增殖用之雞胚胎。比較非毒性與毒性禽流感病毒株之 蛋白質體可發現差異最大的為 HA1 之蛋白質群點。
3.1.2 血液凝集素重鏈 (HA1) 為兩禽流感病毒株蛋白質圖譜上差異最大之蛋白質
血液凝集素 (HA) 為非毒性 (2838N) 與毒性 (2838V) 禽流感病毒株之胺基酸 序列差異度 (1.41%) 最大的蛋白質,而在二次元蛋白質圖譜中,血液凝集素重鏈 (HA1) 亦為差異最大的蛋白質,非毒性株 HA1 等電點較毒性株低。圖 3.2 為兩株 病毒 HA 以 BLAST 進行分析之結果,可發現 16 個胺基酸之訊號胜肽中有 1 個 胺基酸不同;而 HA2 的 222 個胺基酸中有 5 個胺基酸不同,但這 5 個胺基酸之 不同,並未使兩株病毒之 HA2 在二次元蛋白質圖譜中產生明顯差異;反觀 HA1,
HA1 在 329 個胺基酸中只有 2 個不同,但此 2 個胺基酸差異卻使非毒性與毒性株 之 HA1 相差 3 個電荷。2838N 中 HA 之第 106 個胺基酸為酸性的麩胺酸 (Glu),但 2838V 為中性的甘胺酸 (Gly);另外,2838N 之第 304 個胺基酸為酸性 的麩胺酸 (Glu),但 2838V 卻為鹼性的離胺酸 (Lys),而 HA 之第 106 及 304 個胺 基酸,就是 HA1 在 329 個胺基酸中僅有的兩個不同,此差異造成兩株病毒之 HA1 相差三個電荷。以 EMBOSS IEP 軟體預測 HA1 之等電點得知,2838N 之 HA1 等 電點為 6.8764;2838V 之 HA1 等電點為 7.9163,此預測結果可和蛋白質二維圖譜 HA1 之蛋白質群點互相呼應,也就是非毒性株 HA1 之等電點較毒性株低,可能源 自於蛋白質一級結構。
3.1.3 非毒性與毒性 AIV 之 HA1 皆有 6 種不同等電點之異構物
雖然兩株病毒之 HA1 等電點差異甚大,但皆有 6 種不同等電點之異構物。圖 3.3 使用 HA 單株抗體進行免疫染色,再次證實。延續 3.1.2 中 HA1 等電點之預 測,2838N 之 HA1 等電點為 6.8764;2838V 之 HA1 等電點為 7.9163,此二預測 之 pI 值,恰好是 HA1 在蛋白質圖譜的 6 個點中,pI 值最大的點,也就是最鹼性 的蛋白質點。因此推測其餘 5 個 pI 值較小,較偏酸性之 HA1 異構物,可能是由不 同程度之蛋白質轉譯後修飾使 HA1 酸化所造成。
a b
Figure 3.1 Comparison of the total proteins from the non-virulent and virulent avian influenza viruses by 2-DE
Signal peptide -5
106 Near the receptor binding site
304
332/333 381
419
541 HA1
HA2
Cleavage site
Receptor binding site
Signal peptide: 16 amino acids HA1: 329 amino acids HA2: 222 amino acids
Predict glycosylation sites
圖 3.2 BLAST 比對非毒性與毒性 2838 禽流感病毒株血液凝集素之胺基酸序列 之差異
Figure 3.2 Alignment of the sequences of hemagglutinin between non-virulent and virulent 2838 avian influenza viruses
圖 3.3 以免疫染色檢定血液凝集素 1 (HA1) 在非毒性與毒性禽流感病毒株之二 次元圖譜得知,HA1 有 6 種不同等電點之異構物
Figure 3.3 Immunoblot analysis of hemagglutinin 1 on the 2-DE PAGE revealed six pI isoforms of HA1
a
pH 3pH 3 pH 10pH 10b
pH 3pH 3 pH 10pH 10170 130 100 72
55
40
33
24
17
170 130 100 72
55
40
33
24
17
Non-virulent virulent
3.2 探究血液凝集素 1 (HA1) 有 6 種不同等電點異構物之原因
為了解 HA1 形成 6 種異構物之原因,實驗轉向研究可能影響蛋白質等電點之轉 譯後修飾。
3.2.1 預測血液凝集素 1 (HA1) 之蛋白質轉譯後修飾
蛋 白 質 之 磷 酸 化 (phosphorylation) , 醣 基 化 (glycosylation) 以 及 硫 酸 鹽 化 (sulfation),都有可能使蛋白質之等電點變小、變酸。圖 3.4 a 使用 NetPhos 2.0 軟體 預測 HA1 可能之磷酸化修飾,發現兩株病毒之 HA1 皆可能有 21 個可能被磷酸 化修飾之胺基酸位置,其中 8 個為 Ser、 8 個為 Thr,5 個為 Tyr。圖 3.4 b 使用 NetGlyc 1.0 軟 體 預 測 HA1 可 能 之 N- 醣 基 化 位 置 , 發 現 共 有 6 處 為 Asn-X-Ser/Thr 可能之 N-醣基化位置,而其中有 4 處為可能性更高之醣基化預測位 置 (圖中紅色之 N)。圖 3.4 c 使用 Sulfinator 軟體預測可能之 Tyr 硫酸鹽化之位 置,發現 HA1 並無可能之硫酸鹽化位置。
3.2.2 實驗設計
由於 3.2.1 預測之結果,發現 HA1 可能有 phosphorylation 及 glycosylation,
而醣基化若接上酸性醣,如廣泛存在之唾液酸,則有可能影響蛋白質之等電點,
因此實驗設計配合酶切、二次元電泳、免疫染色及凝血素染色及質譜儀分析,探究 HA1 形成 6 種異構物,是否為蛋白質磷酸化,或是醣基化所造成,圖 3.5。
a
b Non-virulent
virulent
Non-virulent
virulent
c Non-virulent virulent
圖 3.4 以軟體預測可能使 HA1 等電點變小之轉譯後修飾 Figure 3.4 Post-translational modification prediction of HA1
A/chicken/Taiwan/2838N/00 (H6N1) A/chicken/Taiwan/2838V/00 (H6N1)
Purified virus
Dephosphorylation
Calf intestine alkaline phosphatase (CIAP)1 U/30 µg
protein, 37℃ for 48 hr
Desialylation
Neuraminidase (sialidase) 0.04 U / 30 µg protein, 37℃ for
1-72 hr
Total protein precipitation with 10% TCA/Aceton
Two-dimensional electrophoresis (2-DE)
Phosphoproteome Western Blot
Anti-phospho-Ser/Thr/Tyr
In-gel digestion of excised protein spots for ESI-QUAD-TOF mass spectrometric characterization
Sialoglycoproteins Lectin Blot
MAA (α2-3); SNA (α2-6)
圖 3.5 以可能影響血液凝集素 1 (HA1)等電點之轉譯後修飾作用進行實驗設計
Figure 3.5 Experimental design based on the hemagglutinin 1 post-translational modifications that influence pI values
3.3 不同等電點異構物之血液凝集素 1 (HA1) 並非蛋白質磷酸化所造成
本段實驗接續 3.2 之實驗設計,研究 HA1 異構物形成的原因是否為蛋白質磷酸化 所致。實驗分別以鹼性磷酸酶處理禽流感病毒,以及使用抗磷酸化抗體進行免疫染色。
3.3.1 以鹼性磷酸酶處理禽流感病毒株並進行二次元電泳
本實驗使用鹼性磷酸酶處理病毒蛋白質,結果如圖 3.6 所示。在鹼性磷酸酶酶 切 48 小時後,HA1 蛋白質群點並無明顯變化,而 M1 分子量有明顯下降,比較控 制組及酶切組,可清楚分別磷酸化及去磷酸化之 M1。
3.3.2 以抗磷酸抗體進行二次元電泳之免疫染色
本實驗首先進行禽流感病毒之二次元電泳,接著轉印至 PVDF 膜並使用抗磷酸 抗體進行免疫染色,偵測磷酸化蛋白質。實驗結果如圖 3.7 所示,可發現 HA1 蛋 白質群點之絲胺酸 (Ser) 及酥胺酸 (Thr) 並無磷酸化,另使用 anti-phosph-Tyr 單株 抗體偵測,發現在 ECL 呈色後,並無任何訊號,因此 HA1 之酪胺酸 (Tyr) 可能無 磷酸化,亦或是此株抗體失效。另外,實驗發現和 3.3.1 鹼性磷酸酶酶切結果相符,
間質蛋白 1 (M1) 之絲胺酸 (Ser) 及酥胺酸 (Thr)有磷酸化現象。而 NP 之絲胺酸 (Ser) 及酥胺酸 (Thr) 亦有明顯磷酸化。此外,二次元圖譜上約 100 kD 之 RNA 聚 合酶 A (RNA polymerase A,簡稱 PA) 之酥胺酸 (Thr) 有磷酸化,而藉由此實驗,本 實驗室第一次確定 PA 在二次元圖譜上的位置。配合 3.3.1 及本段結果得知,不同 等電點異構物之 HA1 並非由蛋白質磷酸化所造成。
a b
A: phosphorylated M1 B: dephosphorylated M1
圖 3.6 以鹼性磷酸酶處理非毒性與毒性禽流感病毒株並進行二次元電泳 Figure 3.6 Calf intestine alkaline phosphatase (CIAP) treatment of total proteins of
the virulent and non-virulent avian influenza viruses
a b c
d e f
Anti-phospho-Ser Anti-phospho-Thr Anti-phospho-Tyr
M1
Figure 3.7 Immunoblot analysis of virus protein with anti-phospho-Ser, anti-phospho-Thr ,and anti-phospho-Tyr antibodies
3.4 不同等電點異構物之血液凝集素 1 (HA1) 可能是由其醣質之唾液酸修飾所造成
本段實驗接續 3.2 之實驗設計,研究 HA1 異構物形成的原因是否為醣蛋白質表面 醣基化之唾液酸修飾。實驗首先以神經胺酸水解酶 (neuraminidase, NA) 處理病毒全蛋 白質,發現 HA1 蛋白質點受酶切影響,接著使用凝集素染色法 (lectin blot),發現 HA1 之醣質可能有 α-2,3 鍵結之唾液酸,最後企圖使用高效能陰離子交換層析儀 (HPAEC) 分析唾液酸之亞型。
3.4.1 以神經胺酸水解酶處理禽流感病毒株並進行二次元電泳
以神經胺酸水解酶處理病毒全蛋白質 1 至 48 小時後,進行二次元電泳,銀染 後可發現,隨著處理時間的增長,HA1 蛋白質群點由等電點高至低,依序消失,如 圖 3.8 a-e 所示。酶切 1 小時後,HA1 蛋白質群點並無變化;4 小時後最鹼性之蛋 白質點消失;24 小時後,等電點最高的兩個點消失;48 小時後,等電點較高之 5 個 異構物消失。在酶切 48 小時後,使用質譜儀進行蛋白質身份鑑定,發現新產生之 24 kD 蛋白質為間質蛋白 1 (M1),圖 3.8 f。而經酶切 48 小時後,進行二維電泳並 轉印至 PVDF 膜上,以 HA 單株抗體進行免疫染色,可發現等電點較高之 HA1 無 法被偵測,而酶切後之 HA1 亦無法由免疫染色偵測。雖然本實驗和預期結果不符,
但由 HA1 蛋白質群點由等電點高至低,依序消失的現象可得知,神經胺酸水解酶會 影響 HA1 之 6 個異構物。
3.4.2 以凝集素染色法 (lectin blot) 發現 HA1 之醣質可能有 α-2,3 鍵結的唾液酸 得知神經胺酸水解酶會影響 HA1 蛋白質群點後,繼續使用凝集素染色法 (lectin blot),欲直接證明唾液酸的存在。使用的凝集素有兩種,第一種為 Maackia amurensis agglutinin (MAA),可偵測唾液酸 α-2,3-半乳糖鍵結;第二種凝集素為 Sambucus nigra agglutinin (SNA),可偵測唾液酸 α-2,6-半乳糖鍵結。實驗首先進行 SDS-PAGE 並轉染至 PVDF 膜上,接著使用 MAA 及 SNA 進行凝集素染色,結 果如圖 3.9 所示。可發現 HA1 表面醣化有與半乳糖以 α-2,3 鍵結之唾液酸,而無 α-2,6 鍵結之唾液酸。另外,間質蛋白 (M1) 同時有 α-2,3 及 α-2,6 鍵結之唾液酸。
圖 3.10 為二次元電泳配合凝集素染色法,以 MAA 凝集素染色發現非毒性與毒性 株中,HA1 最鹼性的異構物,都只有被 MAA 輕微染到,而 pI 較低的 5 個異構物 則有很深的染色。另外,在二次元電泳圖譜中在原先的 6 個異構物左側,也偵測到 α-2,3 鍵結之唾液酸,這些蛋白質點的蛋白質量很小,但卻被清楚染到唾液酸的存 在。而在 SNA 凝集素染色的實驗中,HA1 並未被染色,此結果和一維電泳結果相 符。總和以上實驗結果得知,HA1 多種等電點異構物可能是由 HA1 醣質含有 α-2,3 鍵結之唾液酸所造成。
3.4.3 以高效能陰離子交換層析儀 (HPAEC) 配合脈衝式安培法偵測器 (PAD) 分析 HA1 醣基之唾液酸
為了解 HA1 表面醣化之唾液酸為何種亞型,使用 CarboPac PA-10 陰離子交換
為了解 HA1 表面醣化之唾液酸為何種亞型,使用 CarboPac PA-10 陰離子交換