蘭花種原超低溫保存技術之最新進展
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(2) 作 物 種 原. 法、藻膠包埋脫水法結合玻璃質化法、 一直至近幾年的液滴玻璃質化法,相關 內容如下說明:. 璃質化法,其優點是可減少冷凍保存組 織再生時引起組織遺傳變異機會,適用 不同作物種原長期保存。. (一)二階段降溫法(Two-step cooling). (五)液滴玻璃質化法(Droplet vitrification). 以細胞、體胚等材料保存。利用 遞降溫設備進行緩慢降溫,使細胞間隙 的水結冰,而促使細胞內水往細胞外移 動,達到脫水目的。降溫速度快,細胞 容易失水過多;降溫速度慢,容易產生 傷害細胞的大冰晶而致死,因此控制降 溫速率為此法關鍵。. (二)玻璃質化法(Vitrification) 利用大分子高濃度溶液(冷凍保護 劑),使細胞脫水,進而於組織外部形 成零星的小冰晶,同時在液態氮-196℃ 下,冷凍保護劑由液相變成固相,使細 胞內部凝固點下降,因零星小冰晶散布 組織內部,呈現似玻璃質化的狀態,故 名玻璃質化法。一旦形成玻璃質化狀態 後,保存體內微細構造則不易產生劇烈 變化,細胞功能也能被完整保存,並且 保存在液態氮中,超低溫的環境會讓細 胞的生理機能近乎完全停止。. (三)藻膠包埋脫水法 (Encapsulation) 適用對冷凍保護劑敏感的植物,將 細胞或生長點包埋藻膠進行冷凍保存。 利用藻膠將保存體包覆,使保存體不會 受到劇烈的逆境,並承受長時間的脫水 處理而達到適當脫水程度。. (四)藻膠包埋脫水法結合玻璃質化法 (Encapsulation- Vitrification) 1998年由Harai等人研究,以滲透壓 與蒸散脫水除去細胞水分,再以藻膠包 埋保存體,加入冷凍保護劑處理,並浸 入液態氮後迅速降溫。藻膠包埋搭配玻. 16. 農業試驗所技術服務.2013年12月.96期. 2005年Panis等人提出,莖頂經冷凍 保護劑處理後,滴管吸取移至裝有冷凍 保護劑的鋁箔條上,再放進冷凍管後, 置入液態氮內長期保存,此法更能提高 組織解凍後存活率。. 三、蘭花種原超低溫保存技術之 最新進展 目前多數作物包括蘭花的超低溫保 存,所採用之玻璃質化法處理步驟繁雜 且所採用的藥劑對植物細胞具有毒性, 容易對保存材料造成傷害。花卉研究中 心研發以乾燥方式進行超低溫保存之前 處理,可以有效提高蝴蝶蘭、台灣白 及與紅花鶴頂蘭(圖一)之種子或花粉 活力,所採用之乾燥方式分為室內自然 乾燥及密閉容器內以矽膠乾燥。在表一 中,蝴蝶蘭(Phal. schilleriana)種子以矽 膠乾燥法乾燥後再置入液態氮保存,則 種子活力會隨種子成熟度提高而增加。 表二以台灣白及(Bletilla formosana)3個月 成熟果莢的種子作為保存材料,進行不 同乾燥處理方式(矽膠乾燥、室內陰乾), 結果新鮮種子採收時之活力為89.9% (發 芽率76.8%),未經乾燥處理而直接將種 子置於液態氮中,則種子活力驟降至 2.3% (發芽率1.8%),若以矽膠乾燥法進 行前處理24小時,則種子活力與新鮮者 無差異,為86.8%,發芽活力僅次於新鮮 者,達68.5%;將種子置於室溫陰乾24小 時後再置入液態氮中,則種子活力亦能 維持84.9%,與新鮮及矽膠乾燥者無顯著 差異 (p > 0.05),發芽率 (68.6%) 僅次於.
(3) 新鮮採收者,而近似矽膠乾燥者,兩者 之間無顯著差異 (p > 0.05)。表三中,紅 花鶴頂蘭(Phaius tankervilliae)花粉以矽 膠乾燥法乾燥後再置入液態氮保存,經 保存回溫後,花粉發芽率與新鮮花粉相 近,兩者無顯著性差異。. 本技術以簡易的方法降低組織含水 量,並簡化操作流程與時間,同時減少 前處理藥劑對植物組織的傷害,經證實 保存效果更甚於慣用的方法,而且經保 存後的種子可順利於人工培養基上長成 健康的植株。本項技術具有幾項優點: 1.操作簡易、實用性高,推廣容易。 2.成本低、無毒,不會對植物材料造 成傷害。 3.本項技術涵括二種乾燥方式,適合 實驗室及業界應用。 4.適合國家作物種原庫進行蘭花種子 長期保存。 5.作為蘭花長期保存平台,可提供其 它蘭花種子保存參考。 預期本項技術對於有效解決未來長 期、大量貯存蘭科植物種原問題極有貢 獻,更有利於台灣蘭花產業永續發展之 維繫。. 作 物 種 原. 四、結語 本項研究初衷為建立蘭花種原(種子 或花粉)長期保存平台,冀藉由本技術之 研發,進一步推展擴及其它蘭花作物, 同時依據保存方式將蘭花分成不同類 圖一、紅花鶴頂蘭。 別,期盼能簡化種原長 表 一、乾燥處理對蝴蝶蘭(Phal. schilleriana)種子超低 期保存操作流程,以更 溫保存後活力之影響z 簡易、實用性高、容易 Seed Maturity ( Days ) 操作、低成本的方式進 Treatment 70 80 90 行,以俾能應用於種原 Fresh seed 96.0 aw 94.9 a 97.9 a 庫與民間企業公司。 LNy Dry + LN. x. 13.3 b. 33.7 b. 69.8 b. 22.3 b. 45.3 b. 85.1 a. 五、致謝. z. Seed viability was evaluated by TTC(2,3,5-triphenyltetrazolium chloride)staning method. y. Fresh seeds without drying treatment directly plunged into liquid nitrogen(LN, -196℃). x. Fresh seeds dried with silica gel, then plunged into liquid nitrogen.. w. Means with each column followed by the same letters indicate no significant difference at 5% level by LSD test.. 感謝本所作物組 呂椿棠博士於試驗設 計方面之解惑、屏東科 技大學陳福旗教授於種 原保存方面之經驗分享 等,謹致謝忱。. 農業試驗所技術服務.2013年12月.96期. 17.
(4) 作. 表二、乾燥處理對台灣白及(Bletilla formosana)種子超低溫保存後活力 之影響. 物 種 原. Desiccation (h). Seed viability (%)z. Seed germination (%)y. Fresh seed. 89.90 a u. 76.80 a. LNx. 2.30 b. 1.80 c. Dry + LNw. 86.80 a. 68.50 b. Air dry + LNv. 84.90 a. 68.60 b. z. Seed viability was evaluated by TTC staining method.. y. Germination rate was calculated after one month culture.. x. Fresh seeds without drying plunged into liquid nitrogen (LN, -196 ℃).. w. Fresh seeds were dried for 24 h with silica gel prior to LN.. v. Fresh seeds were dried for 24 h with air-drying in laboratory conditions prior to LN.. u. Values are mean ± standard error. Means with each column followed by the same letter are not significantly different at the 5% level by LSD test.. 表三、乾燥處理對紅花鶴頂蘭(Phaius tankervilliae)花粉超低溫保存後活 力之影響 Treatment Fresh pollen LN y Dry + LN x. Pollen Germination (%)z 81.4 a w 25.4 b 81.0 a. z Fresh pollinia were cultured in vitro on BK medium(1963). The germination percentage of pollen observed under microscope. y Fresh pollinia without drying treatment directly plunged into liquid nitrogen(LN, -196℃). x Fresh pollinia dried with silica gel, then plunged into liquid nitrogen. w Means with each column followed by the same letters indicate no significant difference at 5% level by LSD test.. 18. 農業試驗所技術服務.2013年12月.96期.
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