含錳超氧化物岐化酶之N3O2五牙配位基擬態化合物的合成、性質及超氧化物反應性探討
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(2) 謝 誌 首先,感謝指導教授李位仁老師在我求學期間不辭辛勞地指導 與教誨,並授予我許多重要的化學知識和觀念並提供良好的研究環境, 給予我學習成長的機會,使我受益良多,在此致上最真誠的感謝與敬 意。 感謝口試委員清華大學廖文峯教授和王雲銘教授於百忙之中抽 空參加口試及論文審查,並於口試期間不吝指正,給予我許多寶貴的 意見與建議,使論文能夠更臻完善,在此致謝。 研究期間特別感謝國科會在研究經費上的資助和貴儀中心的技 術支援及本所提供 X-光單晶結構解析和質譜之測定及台大提供元素 分析之測定,使研究過程得以順利進行。 感謝汪子立、江建緯、張皓晴、陳許志勇、李柏毅、鄒毓旂、 蔡佩真學長姊和實驗室夥伴們周彥甫、林耘瑄、劉玟季、林昱辰、溫 淑如以及學弟妹王俊傑、楊于凡、王舒慶、陳虹伶等的陪伴與協助, 使研究生活更加充實及歡樂。最後感謝對我無怨無悔付出與支持的家 人,使我能夠心無旁騖地完成學位。最後要感謝陪伴我並給我鼓勵的 語騏,將此論文獻給你們,並獻上我衷心的感謝和祝福。. 朱其翊 謹致 民國一百零二年八月 于台師大.
(3) 目 錄 中文摘要………………………………………………………………...Ι 英文摘要...................................................................................................II 圖索引………………………………………………………………….III 表索引…………………………………………………………………..V 附錄索引………………………………………………………………..VI. 第一章 緒論 前言…………………………………………..….………………….1 第一節 研究動機與目的……………………..….………………….3 第二節 含金屬超氧化物歧化酶的相關文獻探討…………………6 第三節 含錳超氧化物歧化酶擬態化合物的相關文獻探討……..15. 第二章 實驗部分 第一節 實驗儀器、藥品及條件……………………………………24 第二節 配位基的合成與鑑定……………..………………………31 第三節 錯合物的合成與鑑定……………………………………..38 第四節 二價錳錯合物 1 與超氧化鉀之反應……………………..44 第五節 三價錳錯合物 4 與超氧化鉀之反應………………. .…...44.
(4) 第三章 結果與討論 第一節 含錳超氧化物歧化酶(MnSOD)結構模擬之錳金屬錯合物 探討…………………………………………………...…..45 第二節 模擬 MnSOD 之錳擬態錯合物電化學探討…………….57 第三節 模擬MnSOD之錳擬態錯合物與超氧化物的反應性及機制 之探討……………………………………………………………………….65. 第四章 結論與展望………...…………………………………….…....72. 參考文獻…………………………………………………………….….74. 附錄.
(5) 摘要 為了模擬含錳過氧化物歧化酶(MnSOD),本研究沿用之前本實驗 所合成C2對稱的N3O2 五牙配位基(H2BDPP),經去質子化後與MnCl2 反應可得五配位二價錳錯合物Mn(BDPP) (1),錯合物1經氧化後可 得 穩定的 三價錳 錯合物 Mn(BDPP)(OH) (2)、 Mn(BDPP)(Cl) (3)及 [Mn(BDPP)(H2O)](BF4) (4),並利用紫外/可見光光譜、X光繞射結構 解析以及循環伏安法,進行鑑定及探討。相對於Ag/Ag+參考電極,超 氧離子歧化反應的還原電位應介於−0.24與+0.96伏特之間,使超氧離 子的單電子氧化還原最好位於此範圍的中間值,錯合物1及4的還原電 位分別為+0.125及−0.3伏特,有機會與KO2進行反應。當錯合物1與KO2 於−80 ˚C下反應時,在UV/vis可見光譜上可以觀察到370, 447及720 nm處有特徵吸收峰,與過去文獻中MnIII-OOH中間態化合物的吸收光 譜相似,就MnSOD的催化循環而言,MnIII-OOH確實參與反應機制當 中。另一方面,錯合物4與KO2於室溫下反應,其紫外/可見光光譜與 錯合物2相近,我們推測其反應過程為KO2將錯合物4去質子化後形成 錯合物2。. 關鍵字:超氧化物歧化酶、還原電位. I.
(6) Abstract In order to mimic the active site of MnSOD, a C2-symmetric N3O2 pentadentate ligand, H2BDPP prepared previously by our lab, was deprotonated and employed to react with MnCl2 to give a five-coordinate Mn(BDPP) (1). Complex 1 can be oxidized to form stable MnIII complexes, Mn(BDPP)(OH) (2), Mn(BDPP)(Cl) (3) and [Mn(BDPP) (H2O)](BF4) (4), which are characterized by UV/vis spectroscopy, X-ray crystallography and cyclic voltammetry. The reductive potential for dismutasing superoxide anion should be between −0.24 and +0.96 V (vs. Ag/Ag+), and preferentially near the middle of this range for one-electron oxidation and reduction of superoxide. The reductive potential of complexes 1 and 4 were +0.125 and −0.3 V, respectively. They have the potential to react with KO2. When complex 1 reacted with KO2 at −80 ˚C, three electronic absorptions (λmax = 370, 447, 720 nm) were observed. The UV/vis spectrum of the reaction mixture is similar to that of MnIII-OOH intermediate. According to the proposed MnSOD catalytic cycle, MnIII-OOH intermediate is certainly involved in the catalytic cycle. On the other hand, when complex 4 reacted with KO2 at room temperature, a UV/vis spectrum similar to that of complex 2 was obtained. We proposed that complex 4 was deprotonated by KO2 to form complex 2.. Keyword:Superoxide dismutase、Reductive potential. II.
(7) 圖索引 圖 1.1 自由基的生成·······························································································3 圖 1.2 自由基的種類·······························································································4 圖 1.3 三類型超氧化物歧化酶的活性中心···················································7 圖 1.4 Cu/ZnSOD 的蛋白質結構與活性中心················································7 圖 1.5 Cu/ZnSOD 進行氧化還原的反應機構················································8 圖 1.6 大腸桿菌 Escherichia coli········································································8 圖 1.7 MnSOD 的蛋白質結構與活性中心·····················································8 圖 1.8 MnSOD 對超氧離子之歧化反應··························································9 圖 1.9 MnSOD 於文獻上利用理論計算推測之反應機制······················10 圖 1.10 FeSOD 的蛋白質結構與活性中心·····················································11 圖 1.11 鏈黴菌 Streptomyces 及藍綠藻 cyanobacteria································12 圖 1.12 NiSOD 的蛋白質結構與活性中心·····················································12 圖 1.13 NiSOD 對超氧離子之歧化反應··························································13 圖 1.14 NiSOD 於文獻上推測之反應機構·····················································14 圖 1.15 MnSOD 之擬態化合物 AEOL 10113 及 AEOL 10150·················15 圖 1.16 MnSOD 之擬態化合物 EUK-113 及 EUK-134·······························16 圖 1.17 MnSOD 之擬態化合物 EUK-113 的修飾·········································17 圖 1.18 脲基團與過氧化氫反應之示意圖······················································17 III.
(8) 圖 1.19 MnSOD 之擬態化合物 M40403··························································18 圖 1.20 上:超氧離子的 EPR 圖譜;下:M40403 與超氧離子反應後的 EPR 圖譜······································································································19 圖 1.21 MnSOD 之擬態化合物[(L)MnII(ClO4)](ClO4)·······························20 圖 1.22 [(L)MnII(ClO4)](ClO4)與超氧化鉀反應之吸收光譜圖··············21 圖 1.23 EUK-113 修飾的八種取代基·······························································21 圖 1.24 EUK-113 與其修飾化合物對 SOD 活性比較·································22 圖 1.25 修飾後的 EUK-113 之示意圖·······························································22 圖 3.1 錳超氧化物之歧化反應·········································································46 圖 3.2 配位基 H2BDPP 之結構········································································46 圖 3.3 配位基 H2BDPP 之合成········································································47 圖 3.4 錯合物 1 之 X-ray 結構解析圖·····························································48 圖 3.5 去質子化示意圖························································································49 圖 3.6 錯合物 2 之 X-ray 結構解析圖······························································50 圖 3.7 錯合物 3 之 X-ray 結構解析···································································52 圖 3.8 錯合物 4 之 X-ray 結構解析···································································54 圖 3.9 五配位構型計算示意圖·········································································55 圖 3.10 錯合物 1 之 CV 圖譜················································································57 圖 3.11 左:MnII(BDPP) 中:[Mn(Phimp)2] 右:[Mn(ntb)(Hsal)]·······58 IV.
(9) 圖 3.12 錯合物 2 之 CV 圖譜·················································································59 圖 3.13 錯合物 3 之 CV 圖譜·················································································59 圖 3.14 錯合物 4 之 CV 圖譜················································································60 圖 3.15 左:[MnIII(BDPP)(H2O)](BF4) 右:MnIII(tac)································61 圖 3.16 MnCl2 與 H2BDPP 合成一系列錯合物之示意圖···························62 圖 3.17 錯合物 1 和 4 與其他擬態錯合物及酵素之半電位比較············63 圖 3.18 錯合物 1 和 4 與 MnSOD 之比較·························································64 圖 3.19 錯合物 1 與超氧化鉀反應之 UV/vis 光譜變化······························66 圖 3.20 錯合物 1 與超氧化鉀反應之推測路徑·············································66 圖 3.21 Thomas C. Brunold 教授利用模擬光譜推測之中間體···············67 圖 3.22 錯合物 1 與超氧化鉀反應與 MnSOD 之反應機制比較·············69 圖 3.23 錯合物 4 與超氧化鉀反應其溫度變化之吸收光譜圖················70 圖 3.24 錯合物 4 與超氧化鉀之推測反應機制·············································71. V.
(10) 表索引 表 3.1 錯合物 1 之鍵長與鍵角··········································································52 表 3.2 錯合物 2 之鍵長與鍵角··········································································53 表 3.3 錯合物 3 之鍵長與鍵角··········································································55 表 3.4 錯合物 4 之鍵長與鍵角··········································································57 表 3.5 錯合物 1、2、3、4 之鍵長比較··························································57 表 3.6 錯合物 1 與其他錳二價錯合物之半電位比較·······························60 表 3.7 錯合物 4 與其他錳三價錯合物之半電位比較·······························63 表 3.8 錯合物 4 與超氧化鉀及錯合物 2 之 UV/vis 吸收光譜比較······72. VI.
(11) 附錄索引 附錄 A. NMR 圖譜. 附錄 B. X-ray 單晶繞射解析結構及晶體常數. VII.
(12) 第一章 緒論 前言 活性氧化物(reactive oxygen species, ROS)其組成包括了以氧為中 心的自由基 1,如氫氧自由基(hydroxyl radical, •OH) 、超氧陰離子自 由基(superoxide anion, O2•−),及其他和氧有關的活性物質,如過氧化 氫(H2O2)。大部分的活性氧化物和活性氮氧化物都屬於自由基或很容 易生成自由基,自由基是指外層電子軌域具有未共用電子對之分子或 離子。 自由基(free radicals)是一種極活潑、不穩定、生命週期短的化合 物,因為不穩定,所以會與體內的細胞組織產生化學反應,這些化學 反應可統稱為氧化,會使組織細胞失去正常功能,甚至破壞 DNA, 造成損害或突變,引起癌症。 為了對抗自由基所帶來的傷害,生物體需要一種抵禦機制來對抗 自由基帶來的破壞,而這種抵禦機制為含金屬酵素之超氧化物歧化酶 (superoxide dismutases, SODs):此些酵素為生物體內對抗自由基的一 道重要防線,能將毒性強的超氧離子轉化為毒性較低或較無害的物 質—過氧化氫與氧氣,使自由基轉變為較穩定的狀態,並終止其連鎖 破壞效應,達到預防疾病及避免生物體細胞死亡而造成老化的效果。. 1.
(13) 故我們以二價錳金屬鹽類與有機配子反應生成錳錯合物,以作為 模擬含錳超氧化物歧化酶的擬態化合物,模擬其結構與特性,進行與 酵素相同反應的研究,並與酵素的催化反應進行比較,冀望在未來能 將此研究應用在醫療方面。. 2.
(14) 第一節 研究動機與目的 過去自由基的產生多半是由於身體機能的病變所引起,然而自由 基的生成在近數十年有更多的危害來源,如X光、空氣汙染、輻射能 源、精神壓力、紫外光……等,這些危害來源皆會導致DNA的破壞, 進而對人體產生健康上的危害。. 圖 1.1 自由基的生成. 自由基(free radical)是一類非常活躍的化學物質,是個有不成對 (奇數)電子的原子、原子團、分子或離子。它可聚集在體表、心臟、 血管、肝臟和腦細胞中。如果它沉積在血管壁上,會使血管發生纖維 性病變,導致動脈硬化,高血壓,心肌梗塞;沉積在腦細胞時,會引 起老年人神經官能不全,導致記憶、智力障礙以及抑鬱症,甚至老年 性痴呆等,是造成人類衰老和疾病的元兇,人體內最常見的自由基即 超氧離子自由基(superoxide anion radical, O2•−)。 3.
(15) 圖 1.2 自由基的種類. 2. 超氧離子為生物體進行吸收作用時所產生之副產物,廣泛存在於 生物體內,為一具高活性之物質。在生物體內,易與水分子或其他含 氧物質產生活性氧化物ROS。ROS具有相當高的反應性,其半生期很 短且極不穩定,可攻擊生物分子而引發自由基連鎖反應。在生理所需 的低濃度下,ROS可行使正常細胞功能清除老化細胞;但若ROS過量 生成,則可能造成細胞中DNA、脂質、蛋白質等分子過度氧化,而 造成正常細胞的傷害。為了抗衡這種由自由基所帶來的病變,在生物 體內也有防禦機制來抵抗這些自由基,而超氧化物歧化酶,即為生物 體內對抗自由基的重要防線之一,為含金屬的蛋白酵素,根據其活性 中心的結構可區分成三大類:(1)Cu/ZnSOD (2)Mn及FeSOD (3)NiSOD。 這些酵素皆以O2•−為反應基質,可將超氧離子轉變成毒性較低的過氧 4.
(16) 化氫(H2O2)及氧氣(O2),使體內自由基維持在低濃度,以達到預防疾 病的功能。. 5.
(17) 第二節 含金屬超氧化物歧化酶的相關文獻探討 自1938年由Marn等人首次從牛肝紅血球中分離得到超氧化物歧 化酶迄至,相關研究已有七十多年的歷史;而1969年Fridovich和 McCord等首先發現超氧化物歧化酶(superoxide dismutase, SOD)是存 在生物體內的抗氧化劑3,廣泛分布於各種生物體內,如動物,植物, 微生物等。當超氧離子在生物體內中濃度升高時,超氧化物歧化酶使 對超氧離子進行歧化反應並將其轉變為O2和H2O2 (pH = 7.4,反應速度 約為 1.5 × 105 M-1 s-1)4。因此超氧化物歧化酶的存在對於生物體因體 內所生成的自由基有相當的抵禦機制,藉由歧化作用來降低自由基所 帶來的危害,為生物體內重要的抗氧化劑之一。 超氧化物歧化酶(SOD)的歧化反應可分為兩個步驟: 氧化反應:M(n+1)-SOD + O2•− → Mn+-SOD + O2 還原反應:Mn+-SOD + O2•− + 2H+ → M(n+1)-SOD + H2O2 其中M可為Cu (n = 1)、Ni (n = 2)、Fe (n = 3)、Mn (n = 2)等金屬 離子,即超氧化物歧化酶有銅/鋅、錳或鐵、鎳等三類型。而在反應 過程中,金屬的氧化態在n和n+1之間轉換。. 6.
(18) 圖 1.3 三類型超氧化物歧化酶的活性中心. 針對目前已被發現的三類超氧化物歧化酶分別做介紹: 一、 銅/鋅超氧化物歧化酶,Cu/ZnSOD. 圖 1.4 Cu/ZnSOD 的蛋白質結構與活性中心 5. 1938 年由 Mann 與 Keilin 等人從牛肝紅血球中分離出含銅及鋅的 蛋白質,當時不認為其具有酵素功能,只認為具有儲存金屬功用的蛋 白質。直到 1969 年,Fridovich 和 McCord 發現此物種含銅/鋅的蛋白 質具有轉化 O2•−的功能,因此將它取名為超氧化物歧化酶,並陸續發 現此類酵素存在於各生物體當中。 Cu/ZnSOD 的蛋白質在多數真核細胞中呈淡藍色,分子量約為 32 kDa,具兩個相同次單元體(subunit),每個次單元體都有一個活性中 心,含一個銅離子與一個鋅離子。由 X-光單晶繞射解析可發現銅離 7.
(19) 子在活性中心是由四個 His 上的氮原子與其配位,而銅鋅之間以一個 His 做為橋樑連結,而鋅離子則被兩個 His 及一個 Asp 配位。 歧化反應中銅離子扮演了氧化及還原的角色,鋅離子本身並沒有 參與作用,主要功能在安定整個酵素結構。 Cu/ZnSOD 進行氧化還原的反應機構如圖 1.4。. 圖 1.5 Cu/ZnSOD 進行氧化還原的反應機構 6. 二、 錳或鐵超氧化物歧化酶,Mn or FeSOD. 圖 1.6 大腸桿菌 Escherichia coli. 圖 1.7 MnSOD 的蛋白質結構與活性中心 7,8 8.
(20) 1970 年 Keele 團隊首先在大腸桿菌中分離出 MnSOD,此酵素呈 暗紫色,在細菌中以二聚體存在;生物體內則以四聚體型式存在,並 存在於原核細胞與真核細胞的粒線體中,為粒線體中主要的抗氧化酵 素,負責轉化粒線體中產生的超氧離子。MnSOD 的每個單體分子量 約 19−24 kDa,其上有一個錳離子。錳離子與三個 His 及一個 Asp 鍵 結組成活性中心,而活性中心的周圍涵蓋兩個 His、Trp 及 Tyr。 MnSOD 以 TBP (trigonal bipyramidal)構型存在,赤道位以兩個 His 及一個 Asp 鍵結,軸位以一個 His 鍵結,而第五配位的配子(OH− 或 H2O)則依中心錳金屬的氧化態而決定。其催化反應如圖 1.13 所示, 氧化態 MnSOD 與還原態 MnSOD 之間的轉變,使 O2•−進行歧化反應 轉變成 O2 和 H2O2 釋出。. 圖 1.8 MnSOD 對超氧離子之歧化反應. 目前推測 MnSOD 的反應機制之一如圖 1.14 所示,首先以 O2•−進 入氧化態 MnSOD 與三價錳金屬離子鍵結(路徑 A),O2•−以 end-on 方 式鍵結在錳金屬離子上,錳金屬離子上的 O2•−會經電子轉移而將氧化 9.
(21) 態 MnSOD 還原成還原態 MnSOD,且 O2•−氧化為 O2。接著於氧化反 應,O2•−配位至還原態 MnSOD (路徑 C),是先以 side-on 方式鍵結在 二價錳離子上,由於此鍵結方式較不穩定,因此進行質子轉移後,將 以較穩定的 end-on hydroperoxo 存在。此時,第五配位的水分子這時 所扮演提供氫質子的角色,水分子上的氫原子與 Mn-OOH 上的氧原 子產生氫鍵作用力,隨之以 H2O2 離去(路徑 D),而二價錳活性中心則 被氧化回到三價錳氧化態活性中心,完成此催化循環。. 圖 1.9 MnSOD 於文獻上利用理論計算推測之反應機制 9. 10.
(22) 圖 1.10 FeSOD 的蛋白質結構與活性中心 10, 11. 此酵素從大腸桿菌中被純化出來,呈淡黃色,分布於藻類、原核 細菌細胞質中,動物組織內幾乎沒有發現 FeSOD 的存在。FeSOD 是 由兩個蛋白質單位體組成,其活性中心配位方式以三個 His 及一個 Asp 與鐵離子鍵結,分子量約為 8.5-22 kDa,在核酸與胺基酸序列上 與 MnSOD 相似。 FeSOD 進行氧化還原的反應機構如下: -. Fe3+SODOH + O2•− + H+ → Fe2+SODH2O + O2 -. Fe2+SODH2O + O2•− + 2H+ → Fe3+SODOH + H2O2 其還原態與氧化態如下圖 12:. 11.
(23) 三、 鎳超氧化物歧化酶,NiSOD. 圖 1.11 鏈黴菌 Streptomyces 及藍綠藻 cyanobacteria. NiSOD 存在於鏈黴菌(Streptomyces)及藍綠藻(cyanobacteria) (圖 1.6),由四個蛋白質單元體組成,分子量約 53.7 kDa,其活性中心為 鎳離子做為中心金屬,周圍由 His1、Cys2、Cys6 等胺基酸所組成(圖 1.7)。. 圖 1.12 NiSOD 的蛋白質結構與活性中心 13. 還原態 NiSOD 活性中心的配位環境如圖 1.12 左所示,在鎳離子 中心赤道面的平行四邊形上,配位著 His 上末端 amine 的 N 及 backbone 上 amide 的 N 以順式位向(cis arrangement)占據平面四邊形 的兩個角,與兩個亦為順式位向配位於平面四邊另外兩個角的 Cys 上 thiolate 的 S,形成 NiIIN2S2 平面四角形結構;氧化態 NiSOD 之活. 12.
(24) 性中心則為原平面四邊構型上由軸位 His 上 imidazole 的 N 配位置鎳 離子中心,而形成 NiIIIN3S2 平面四角錐結構(圖 1.8 右所示)。. 圖 1.13 NiSOD 對超氧離子之歧化反應 14. 圖 1.9 為目前 NiSOD 所推測反應機構之一,其 O2•−進入還原態 NiSOD 與鎳離子中心金屬鍵結後(路徑 A),可藉由活性中心周圍的胺 基酸殘基 Tyr9、Cys2 與 Cys6 利用氫鍵穩定 O2•−,接著進行還原反應, 將 O2•−還原成 H2O2 釋出(路徑 B),同時二價鎳中心氧化為三價鎳離子, 而因中心金屬缺電子關係,伴隨著 His1 上 imidazole 的 N 配位於鎳金 屬中心;緊接著氧化態 NiSOD 的三價鎳離子繼續與 O2•−反應(路徑 C), 同樣地,藉由 Tyr9、Cys2 及 Cys6 上的氫鍵穩定鍵結至鎳離子中心的 O2•−,隨之進行氧化還原反應,使三價鎳中心還原,並使 O2•−氧化為 O2 釋出(路徑 D),而原配位在軸位的 His1 則離開鎳離子中心,且鎳 離子還原回二價,活性中心變回平面四邊的構型,完成 NiSOD 分別 催化 O2•−為 O2 與 H2O2 的循環。. 13.
(25) 圖 1.14 NiSOD 於文獻上推測之反應機構 15. 14.
(26) 第三節 含錳超氧化物歧化酶擬態化合物的相關文獻探討 過去文獻所合成的 MnSOD 擬態化合物,一般來說皆以 N 及 O 的配位方式模擬 MnSOD 的配位環境。然而,仍有科學家顛覆原始配 位的概念,合成出以 porphyrins、salen 及 polyamines 的配位基合成的 MnSOD 擬態化合物,且在模擬超氧化物歧化酶的活性上仍具有可觀 的反應性,因此針對這一系列的 MnSOD 擬態化合物,列舉幾個具有 代表性的 MnSOD 擬態化合物來作說明: 一、Manganese(III) Metalloporphyrins. 圖 1.15 MnSOD 之擬態化合物 AEOL 10113 及 AEOL 1015016. Manganese(III)meso-tetrakis(N-ethylpyridinium-2-yl)porphyrin (AEOL 10113) 及 Manganese(III)meso-tetrakis(N-ethylImidazole-2-yl) porphyrin (AEOL 10150)皆以紫質(porphyrin)作為配位基(圖 1.15),並 分別在配位基上進行修飾。一般來說,MnSOD 進行 O2•−的歧化反應 時其錳氧化態介於 Mn(II)與 Mn(III)之間;而過氧化氫酵素酶的反應 則介於 Mn(IV)與 Mn(V)之間. 17. 。此兩種化合物在人體大腦局部敗血. 15.
(27) (ischemia)的研究上具有催化抗氧化行為(catalytic antioxidants)。AEOL 10150 在 SOD 活性模擬的效果上比 AEOL 10113 多近兩倍(表 1.1), 且合成 AEOL 10113 須由多種的立體異構物才可得,另外單離 AEOL 10113 的過程相當困難,因各種嚴厲的條件限制,製藥階段接受度不 高;相對而言,AEOL 10150 的製備過程中不含有立體異構物的存在, 較容易生產,並可在組織階段作精準的測試。. 表 1.1 MnSOD 之擬態化合物 AEOL 10113 及 AEOL 10150 的 SOD 活性測試. 二、Manganese(III) salen complexes. 圖 1.16 MnSOD 之擬態化合物 EUK-113 及 EUK-13414. Manganese(III)-[methoxy-N,N ' -bis(salicyldene)ethylenediamine acetate (EUK-113)及 Manganese(III)-[methoxy-N,N'-bis(salicyldene) ethylenediamine chloride (EUK-134)皆以 salen 配位基與錳金屬離子鍵. 16.
(28) 結而得(圖 1.16),第五配位分別為 OAc 及 Cl,由於它的分子量較低, 合成條件容易,因此在作為口服藥的製造上比其餘幾種模擬化合物更 具優勢 18。Mn(salen)系列的錯合物除了對 O2•−具有歧化的功能外,同 時也具有模擬過氧化氫酵素酶的活性(catalase-mimetic activity),將 H2O2 轉變為無毒性的氧氣及水分子。2006 年,Tsunehiko Higuchi 教 授將 EUK-113 進行一系列配位基的修飾(圖 1.17),其效果最顯著為脲 基(ureido group)的取代基,其脲基主要功能在於過氧化氫與脲基形成 兩個氫鍵(圖 1.18),並穩定錯合物存在,隨之轉換為氧氣及水分子, 增加過氧化氫之轉換效率。. 圖 1.17 MnSOD 之擬態化合物 EUK-113 的修飾. 圖 1.18 脲基團與過氧化氫反應之示意圖. 17.
(29) 三、Manganese(II) (pentaazamacrocyclic ligand)-based complexes. 圖 1.19 MnSOD 之擬態化合物 M40403. 早期針對哺乳類體內SOD酵素,設計具有活性並穩定的模擬化合 物,應用於人類之相關疾病,研究發現有些許的金屬錯合物可將O2•− 進行歧化反應,然而卻發現這一類的金屬錯合物也會與過氧化氫進行 似芬頓反應(Fenton-like reaction)17,將產生毒性比起超氧離子還強的 氫氧自由基(hydroxyl radical, •OH)。此研究設計可使錯合物本身並不 會與氧化劑(oxidants)產生反應,如過氧化氫及次氯酸鹽。因此Riley 利用Manga nese(II)dichloro -{(4R,9R,14R,19R)-3,10,13,20,26pentaazatetracyclo[20.3.1.0.0,]hexacosa -1(26),-22(23),24-triene} (M40403)為以多胺(polyamines)作為配位基之MnSOD擬態化合物(圖 1.19),其具有四種主要準則,對超氧離子具有較高SOD活性、穩定度、 選擇性及能在生物體內運行,其對於分解超氧離子具有非常好的效果 (圖1.20)。此外,M40403分別於高與低劑量時有不同效果,低劑量時 可作為消炎藥;高劑量時能作為抑制發炎反應前的細胞激素. 18.
(30) (proinflammatory effects),雖然後者仍然有副作用的存在,然而對未 來醫藥相關的研究仍具貢獻。. 圖 1.20 A:超氧離子的 EPR 圖譜;B:M40403 與超氧離子反應後的 EPR 圖譜. 19.
(31) 近數十年來對於 MnSOD 的相關研究,其擬態化合物不外乎是由 N 及 O 的配位環境加以模擬並探討(圖 1.15) 因此針對下列 MnSOD 擬態化合物來作說明:. 圖 1.21 MnSOD 之擬態化合物[(L)MnII(ClO4)](ClO4). 於2007年,Clotilde Policar及Anxolabehere-Mallart教授以五牙配 位 基 N-methyl-N,N',N'-tris(2-pyridylmethyl)ethane-1,2-diamine 合 成 出 [(L)Mn(II)(ClO4)](ClO4) (圖1.21) ,並且於−25 ºC,以KO2作為氧化劑 與其反應,產生深藍色中間體,經由UV/vis吸收光譜分析,可觀察在 430、590 nm處有特徵吸收峰(圖1.22)。中間體於反應三十分鐘後逐漸 降解,且經由ESI-MS圖譜分析,可觀察到m/z = 434.1 amu的訊號,精 算結果為[(L)Mn(II)O2]+,由於未得到晶體,作者認為中間體可能為 manganese(III) peroxo或manganese(II) superoxo。. 20.
(32) 圖 1.22 [(L)MnII(ClO4)](ClO4)與超氧化鉀反應之吸收光譜圖. 另 一 擬 態 化 合 物 , 2013 年 Tsunehiko Higuchi 教 授 進 階 修 飾 EUK-113,除過去所合成配位基上具有脲基的錯合物,更增加至八種 取代基的置換(圖1.23),對於SOD的活性總體而言皆比EUK-113來的 好,且錯合物3b、3c及3f的效果更為顯著18 (圖1.24)。. 圖 1.23 EUK-113 修飾的八種取代基. 21.
(33) 圖 1.24 EUK-113 與其修飾化合物對 SOD 活性比較. 此系列化合物除了 SOD 活性效果明顯提升之外,對於模擬過氧 化氫酵素酶的活性效果,也比過去文獻好。Tsunehiko Higuchi 教授發 現將取代基置換為帶有吡啶(pyridyl)的基團,可大幅提升活性,在此, 吡啶所扮演的角色如胺基酸內組胺酸(histidine),作為酸鹼調節的催化 劑(acid-base catalyst),並加快反應中高價數錳金屬錯合物的生成,隨 之分解過氧化氫為氧氣及水分子 18 (圖 1.25)。. 圖 1.25 修飾後的 EUK-113 之示意圖 22.
(34) 據上述 MnSOD 相關的文獻探討,本研究將利用本實驗室江建緯 學長所設計較為剛性(rigidity)之含氮氧五牙配位基與二價錳離子配位, 合成錳金屬擬態化合物,以模擬 MnSOD 之配位環境予以研究。並期 望經由氧化劑氧化後,可得到三價錳的穩定金屬錯合物。利用合成的 錳金屬錯合物,進行關於超氧化物歧化酶的結構及活性上的比較及探 討。. 23.
(35) 第二章 實驗部分 第一節. 實驗儀器、藥品及條件. 一、實驗儀器 1. 核磁共振光譜儀(NMR Spectrometer) 機型:Burker AVANCE 400 NMR 測量方法:將樣品溶於氘化溶劑中測定 1H 或 13C 光譜,化學位移 以 ppm 為單位。 2. X-光單晶繞射儀(X-ray Single Crystal Diffractometer) 機型:荷蘭 Bruker Enraf-Nonius Kappa APEX II 單晶繞射儀 德國 Bruker Kappa APEX II 單晶繞射儀 測量:委由國立台灣師範大學貴重儀器中心郭頂審先生代為收集 繞射點數據及解析結構。 3. 元素分析儀(Elemental Analyzer) 機型:德國 Heraeus varioIII-NCH Analyzer 測量:委由國立台灣大學貴儀中心陸靖蔚小姐代為測定。 4. 電子順磁共振光譜儀(Electron paramagnetic resonance) 機型:Bruker EX 10 Model Spectrometer 測量:委由國立清華大學貴儀中心陳若琪小姐代為測定。. 24.
(36) 5. 紫外光/可見光吸收光譜儀(UV/vis Spectrophotometer) 機型:Hitachi Model U-3501 和 U-4100 測量方法:將樣品溶於有機溶劑中,放入石英偵測容器中測定。 6. 溶劑純化系統 型號:MBRUN mb-sps Compact 以此系統純化的溶劑有乙醚、乙腈、二氯甲烷和己烷。 7. 循環伏特安培儀(Cyclic voltammetry) 機型:CHI611D 測量方法:本系列化合物在電化學方面的測量上使用三電極系統: 其工作電極為 2 mm 玻璃碳電極,參考電極為 Ag/AgCl,輔助電極 為鉑電極,輔助電解質使用 0.1M[(n-Butyl)4N](BF4)。 8. 二次超純水純化系統 型號:Milli-RO 60 9. 厭氧操作箱 型號:MBRAUN Unilab-B 10. 氣相層析-質譜儀(GC-MS) 機型:GC(HP 6869)-MS(HP 5973) 測量方法:使用定量瓶配置溶液,且使用 10 微升氣密式針筒以三 明治注射法注入 1 微升的溶液偵測。 25.
(37) 二、實驗藥品 1. 溶劑: 甲苯(Toluene),AR 級,Mallinckrodt chemicals。 甲醇(Methanol),AR 級,Mallinckrodt chemicals。 乙醇(Ethanol),AR 級,J. T. Baker。 乙腈(Acetonitrile),GR 級,Merck。 乙醚(Diethyl ether),GR 級,Merck。 乙酸乙酯(Ethyl Acetate),AR 級,Mallinckrodt chemicals。 丙酮(Acetone),HPLC 級,J. T. Baker。 己烷( Hexanes),AR 級,Mallinckrodt chemicals。 二氯甲烷(Dichloromethane),GR 級,Merck。 二次超純水(Water),取自化學系上 Milli-RO 60 water purification system。 四氫呋喃(Tetrahydrofuran),GR 級,Merck。 氘化氯仿(Chloroform-d1, CD3Cl):CIL。. 26.
(38) 2. 在氮氣環境下使用的溶劑,採用試藥級溶劑,蒸餾除水後始可使 用。純化方法如下: (1)甲醇(Methanol, CH3OH) 於氮氣下加入鎂粉(Mg)和碘(I2),一開始溶液顏色為褐色,在氮 氣中迴流5個小時後,顏色會變為鐵灰色,在氮氣下迴流蒸餾至少24 小時後再取用。 (2)四氫呋喃(Tetrahydrofuran, C4H8O) 於氮氣下加入切成細碎片狀的鈉金屬,在氮氣下至少迴流蒸餾12 小時,以二苯酮(Benzophenone)為指示劑,待溶液呈紫色再取用。 (3)戊烷(Pentane, C5H12) 於氮氣下加入切成細碎片狀的鈉金屬,在氮氣下至少迴流蒸餾12 小 時 , 以 二 苯 基 甲 酮 (Benzophenone) 作 為 指 示 劑 及 乙 二 醇 二 甲 醚 (ethylene glycol dimethyl ether)作為助溶劑,待溶液呈紫色再取用。. 27.
(39) 3. 合成配位基所使用的藥品: Ammonium chloride (NH4Cl),99.5%,extra pure,ACROS。 Bromobenzene (C6H5Br),99%,試藥級,ACROS。 1,2-Dibromoethane (C2H4Br2),99%,ACROS。 Ethyl chloroformate (C3H5ClO2),99%,ACROS。 Hydrobromic acid, ca. 48 wt% solution in water (HBr),ACROS。 Magnesium powder (Mg),試藥級,SHOWA。 Magnesium Sulfate, anhydrous (MgSO4),試藥級,YAKURI。 Patassium carbonate (K2CO3),試藥級,Fisher Scientific。 Patassium hydroxide (KOH),85%,分析級藥錠,ACROS。 L-Proline (C5H9NO2),99 +%,ACROS。 2,6-Pyridinedimethanol (C7H9NO2),98%,ACROS。 Sodium chloride (NaCl),試藥級,OSAKA。 Sodium hydroxide (NaOH),試藥級藥錠,OSAKA。. 4. 合成錯合物所使用的藥品: Manganese(II) chloride (MnCl2),98%,ACROS。 Sodium hydride (NaH),試藥級,ACROS。. 28.
(40) 5. 進行反應性所使用的藥品: Potassium superoxide(KO2),試藥級,Aldrich。 Oxygen(O2),豐明氣體。 三、實驗條件: 在氮氣環境下反應的實驗,一律使用 Schlenk technique 或在手套 箱(N2(g)-filled glove box maintained at below 0.1 ppm of O2 and 0.1 ppm of H2O)下操作。使用的玻璃器材、雙頭鋼針、不鏽鋼接頭、鋼針都 需放置在烘箱中以 120 ºC 烘烤過,使用時再從烘箱中取出。 從手套箱秤取藥品時,皆需使用血清塞及 Para film 封住反應瓶 或樣品瓶口再送出手套箱。若由反應瓶側管接真空系統時,則需將側 管部分抽真空、以火焰槍烤過、灌入氮氣回壓,重複上述動作 3 次後, 最後於氮氣下,轉開氣閥連接反應瓶與真空系統,再進行後續的實驗 操作。若是以樣品瓶或圓底瓶進行反應時,則需先取另一空樣品瓶塞 上血清塞及 Para film 封口後,將真空系統的橡皮管接上不鏽鋼針頭 並插入此空樣品瓶,抽真空後,灌入氮氣回壓,反覆動作 3 次後,再 於氮氣下將鋼針轉插入含藥品的樣品瓶內;或是將真空系統接上鋼針 後持續吹出氮氣約 10 秒後,把鋼針轉插入含藥品的樣品瓶中,再進 行後續的實驗操作。在空氣下秤取藥品於反應瓶或樣品瓶中進行反應 的實驗,或是要使用組裝好的養晶瓶、過濾裝置等玻璃器材時,皆需 29.
(41) 使用血清塞封住瓶口後,再將真空系統接上鋼針插入組裝好的玻璃器 材內,或是由反應瓶側管接上真空系統,再將反應系統抽真空,以火 焰槍烤過(註一) ,再灌入氮氣回壓,纏上 Para film 封口,反覆進行 上述動作 3 次後,最後於氮氣下進行後續的實驗操作。實驗過程皆在 氮氣正壓下操作,使用蒸餾過保存在氮氣下的溶劑,溶液的轉移則是 以雙頭鋼針引導。養晶過程需要在氮氣下進行者,必要時使用真空凡 士林封住血清塞有針孔的部分。 在空氣下反應的實驗,其過程在空氣下操作,並旋上樣品瓶蓋避 免灰塵掉入,使用一般試藥級溶劑,溶液的轉移以滴管吸取加入;養 晶過程則是置於養晶塔內。 (註一):若是藥品含有過氯酸根(ClO4-)時,火焰切勿烤到藥品部分, 避免爆炸的危險性。. 30.
(42) 第二節 配位基的合成與鑑定 由本實驗室江建緯學長合成而得含氮五牙基 H2BDPP19:. 1. (S)-N-Ethoxycarbonylproline methyl ester. 秤取 L-脯胺酸 7.0 克(60.8 毫莫耳)與碳酸鉀 16.8 克(121.6 毫莫耳) 於含磁石的 250 毫升圓底瓶中,將圓底瓶抽真空 5 分鐘再使瓶內充滿 氮氣,重複抽灌動作 3 次後,並使瓶內充滿氮氣後,加入除水甲醇 100 毫升至圓底瓶中,形成白色混濁溶液,並於瓶外架一冰浴水盆, 使溫度降至 0 ºC。冰浴 5 分鐘後,以針筒慢慢加入醯氯甲酸乙酯 17.4 毫升(182.4 毫莫耳),讓反應溫度維持在 0 ºC 下 2 小時,再將冰浴移 去,持續於室溫下反應 16 小時。 反應完畢後,以迴旋濃縮機抽去溶劑,加入二次去離子水 100 毫 升,以二氯甲烷萃取 3 次(200 毫升 × 3),收集的有機層以飽和氯化 鈉水溶液再萃取 1 次(100 毫升),接著用無水硫酸鎂乾燥有機層溶液 並 過 濾 , 將 溶 劑 抽 乾 後 即 可 得 到 11.01 克 ( 產 率 90%) 的. 31.
(43) (S)-N-Ethoxycarbonylproline methyl ester , 產 物 呈 透 明 油 狀 液 體 。 C9H15NO4 (F.W. = 201.22), 1H−NMR (400 MHz, CDCl3, ppm): δ 4.26−4.18 (m, 1H), 4.06−3.93 (m, 2H), 3.62, 3.61 (ss, 3H), 3.51−3.30 (m, 2H), 2.19−2.07 (m, 1H), 1.94−1.76 (m, 3H), 1.16, 1.09 (tt, 3H, J = 8.8)。 13. C NMR (100 MHz, CDCl3, ppm):δ 173.1, 173.0, 154.8, 154.3, 61.0,. 60.9, 58.8, 58.5, 51.8, 51.8, 46.4, 46.0, 30.6, 29.6, 24.0, 23.3, 14.4, 14.4。(NMR 光譜詳見於附錄 A-1, A-2)。. 2. (S)-2-(Diphenylhydroxymethyl)-N-ethoxycarbonylpyrrolidine. 合 成 (S)-2-(Diphenylhydroxymethyl)-N-ethoxycarbonylpyrrolidine 之前,必須先製備體積莫耳濃度為 1.0 M 的溴化苯基鎂,首先將鎂粉 2.674 克(110.0 毫莫耳)秤於三頸瓶內,並架上迴流管與加液漏斗,抽 真空 20 分鐘再使瓶內充滿氮氣反覆抽灌動作 3 次,於氮氣環境下加 入 100 毫升四氫呋喃,接著加入活化劑二溴乙烷 0.7 毫升(8.0 毫莫 耳),並於加液漏斗加入溴苯 10.5 毫升(100.0 毫莫耳),再慢慢將溴苯 加至反應瓶中,反應過程會劇烈放熱,反應完畢後,待其回到室溫後 取用。. 32.
(44) 秤取(S)-N-Ethoxycarbonylproline methyl ester 8.05 克(40.0 毫莫耳) 置於 250 毫升雙頸瓶中並架上迴流管,抽真空 5 分鐘再使瓶內充滿氮 氣,反覆抽灌動作 3 次,於瓶內充滿氮氣的環境下加入 10 毫升四氫 呋喃將起始物溶解,在冰浴下攪拌 10 分鐘後,以針筒抽取 1.0 M 溴 化苯基鎂的四氫呋喃溶液 80 毫升(80.0 毫莫耳)慢慢加至雙頸瓶中, 在冰浴下攪拌反應 2 小時。 反應完畢後,使反應維持在冰浴下並維持0 ºC,以滴管吸取飽和 氯化銨水溶液,慢慢加至雙頸瓶中止反應,用量大約50毫升,直到溶 液顏色由深黑色轉變為灰白色後,將冰浴盆移除,使用迴旋濃縮機抽 去溶劑中的四氫呋喃,剩餘水層利用乙酸乙酯萃取3次(200毫升 × 3), 收集的有機層以飽和氯化鈉水溶液再萃取1次(100毫升),將有機層以 無水硫酸鎂乾燥並過濾,抽乾後可得到白色固體,加入乙酸乙酯加熱 使產物溶解,將過飽和溶液靜置於室溫下再結晶,可得到透明六角柱 狀晶體產物(S)-2-(diphenylhydroxymethyl)-N-ethoxycarbonylpyrrolidine 10.45 克 , 產 率 為 83% 。 分 子 式 : C20H23NO3 (F.W. = 325.17), 1H NMR(400 MHz, CDCl3, ppm) δ 7.41−7.24 (m, 10H), 4.94−4.91 (dd, 1H), 4.14−4.08 (m, 2H), 3.45−3.38 (q, 1H), 2.96 (s, 1H), 2.14−2.04 (m, 1H), 1.98−1.91 (m, 1H), 1.51−1.49 (m, 1H), 1.26−1.22 (t, 3H), 0.83 (s, 1H); 13. C NMR(100 MHz, CDCl3, ppm) δ 146.3, 143.6, 128.1, 127.8, 127.6, 33.
(45) 127.4, 127.1, 127.1, 81.6, 65.9, 61.9, 47.7, 29.6, 22.9, 14.6。(NMR 光譜 詳見於附錄 A-3, A-4)。. 3. (S)-2-(Diphenylhydroxymethyl)pyrrolidine. 秤 取 (S)-2-(Diphenylhydroxymethyl)-N-ethoxycarbonylpyrrolidine 4.18 克(12.8 毫莫耳)與氫氧化鉀 25.3 克(385 毫莫耳)置於 500 毫升圓 底瓶中,加入乾燥過的乙醇 125 毫升,反應迴流 48 小時(140 ºC)。 反應完畢後,以迴旋濃縮機將溶劑抽乾,隨後以等量的二氯甲烷 與水之混和液萃取(150毫升 × 3)。將有機層收集後並加入無水硫酸 鎂除水過濾,將濾液抽乾後得乳白色油狀物,在室溫下靜置風乾可得 乳白色晶體(S)-2-(Diphenylhydroxymethyl)pyrrolidine 3.2 克(12.6毫莫 耳,產率:98%)。分子式:C17H19NO (F.W. = 253.34),1H NMR (400 MHz, CDCl3, ppm):δ 7.57 (d, 2H, J = 7.4 Hz), 7.50 (d, 2H, J = 7.3 Hz), 7.31−7.25 (m, 4H), 7.18−7.14 (m, 2H), 4.28−4.24 (t, 1H), 3.04−3.01 (m, 1H), 2.98−2.93 (m, 1H), 1.76−1.69 (m, 2H), 1.67−1.54 (m, 2H);. 13. C. NMR(100 MHz, CDCl3, ppm) δ 148.1, 145.4, 128.2, 127.9, 126.3,125.8, 125.5, 77.1, 64.5, 46.7, 26.3, 25.5。(NMR 光譜詳見於附錄 A-5, A-6)。 34.
(46) 4. 2,6-Bis(bromomethyl)pyridine. 秤取 2,6-吡啶二甲醇 5.00 克(36.0 毫莫耳)於 250 毫升圓底瓶,於 磁石攪拌時,緩緩加入氫溴酸水溶液 50 毫升,加熱迴流 5 小時。 反應完畢後,待其溶液溫度降至室溫,於冰浴下將 40%氫氧化鈉 水溶液以滴管慢慢加入反應瓶內,並使用廣用試紙檢測,直至 pH 值 約等於 6 時停止加入,可再加入少許二次蒸餾水稀釋。隨後以二氯甲 烷萃取水層 3 次(200 毫升 × 3),有機層以無水硫酸鎂乾燥並過濾, 濾液以迴旋濃縮機抽乾,再以管柱層析法分離產物,沖提液為二氯甲 烷,並以薄層分析法(TLC)追蹤,收集 Rf = 0.8 之溶液,將溶液抽乾 後可得到白色粉末狀的產物 2,6-Bis(bromomethyl)pyridine 3.82 克(產 率 40%),另外再以乙醚作為沖提液可得到副產物 2-Bromomethyl pyridine-6-methanol 3.04 克(產率 42%)。C7H7Br2N (F.W. = 264.95),1H NMR (400 MHz, CDCl3, ppm):δ 7.69 (t, 1H, J = 9.7 Hz),7.36 (d, 2H, J = 9.7 Hz),4.53 (s, 4H)。13C NMR (100 MHz, CDCl3, ppm):δ 156.7, 138.1, 122.7, 33.4。(NMR 光譜詳見於附錄 A-7, A-8)。. 35.
(47) 5. 2,6-Bis(((S)-2-(diphenylhydroxymethyl)-1-pyrrolidinyl)methyl)pyr idine. 秤取(S)-2(Diphenylhydroxymethyl)pyrrolidine 1.02 克(4.03 毫莫 耳)、2,6-Bis(bromomethyl)pyridine 0.53 克(2.02 毫莫耳)與碳酸鉀 0.56 克(4.03 毫莫耳)於 250 毫升雙頸瓶內並架置迴流管後,加入試藥級乙 醇 150 毫升,加熱迴流 72 小時。 反應完畢後,以迴旋濃縮機抽去溶液中的乙醇,加入二次水150 毫升,以二氯甲烷萃取3次(200毫升 × 3),收集的有機層以飽和氯化 鈉水溶液再萃取1次(100毫升),接著利用無水硫酸鎂乾燥有機層溶液 並過濾,再以迴旋濃縮機抽乾濾液。最後,以少量二氯甲烷將產物溶 解,並利用大量正己烷使固體析出沉澱,將上層澄清溶液移除後,再 加入正己烷,反覆3次,最後將固體抽乾即可得到0.8克(產率75%) 的 2,6-Bis(((S)-2-(diphenylhydroxymethyl)-1-pyrrolidinyl)methyl) pyridine (H2BDPP),產物呈白色固體。H2BDPP的合成步驟總共五個階段,總 產率為55%。其分子式為C41H43N3O2 (F.W. = 609.80),1H NMR (400 MHz, CDCl3, ppm):δ 7.68−7.66 (d, 4H), 7.59−7.57 (d, 4H), 7.48−7.43 (t, 1H), 7.30−7.26 (t, 4H), 7.22−7.14 (m, 6H), 7.08−7.04 (t, 2H), 6.87−6.85 36.
(48) (d, 2H), 5.20 (s, 2H), 4.12−4.08 (q, 2H), 3.37−3.28 (q, 4H), 2.95−2.92 (q, 2H), 2.50−2.48 (q, 2H), 1.95−1.92 (m, 2H), 1.78−1.75 (m, 2H), 1.66−1.61 (q, 4H);. 13. C NMR(100 MHz, CDCl3, ppm) δ 158.8, 147.9,. 146.6, 136.5, 128.1, 128.0, 126.3, 126.2, 125.8, 120.4, 78.1, 70.7, 61.6, 55.6, 29.8, 24.4。(NMR 光譜詳見於附錄 A-9, A-10)。. 37.
(49) 第三節 錯合物的合成與鑑定 一、錯合物 MnII(BDPP) (1)的合成. 圖 2.1 錯合物 1 之反應式. 秤取 H2BDPP 0.12 克(0.2 毫莫耳)於含磁石的 50 毫升反應瓶內, 將其抽真空並用火烤,10 分鐘後使瓶內充滿氮氣,重複此步驟 3 次, 最後將反應瓶維持真空狀態下送入手套箱。於手套箱內秤取 12.0 毫 克(0.5 毫莫耳) NaH 與 25.3 毫克(0.2 毫莫耳) MnCl2 於反應瓶中,並加 入約 15 毫升的乙腈作為溶劑,於室溫下反應 16 小時,溶液顏色由乳 白色轉變為乳黃色。 反應完畢後,將乳黃色溶液以矽藻土過濾,並使用真空系統將溶 液抽乾,加入少許二氯甲烷將固體溶解,再加入約 30 毫升的乙醚使 固體析出後靜置,待淡黃色固體完全沉澱,將上層澄清溶液移除,此 動作重複 3 次後,再將固體抽乾,以約 5 毫升的二氯甲烷將產物回溶, 在氮氣下過濾並於−30 ºC 冰箱內使用乙醚以緩慢擴散法養晶,一天後 可得金黃色方形晶體,固體產率為 55%,以 X-ray 繞射解析鑑定此晶 體結構,並得其分子式為:C41H41Cl0MnN3O2 (F.W. = 662.71)。元素分 38.
(50) 析之理論值:N, 5.82; C, 69.35; H, 5.92。實驗值:N, 6.121; C, 69.509; H, 6.176。UV/vis (THF):338 nm (450 M-1 cm-1)。. 二、錯合物 MnIII(BDPP)(OH) (2)的合成. 圖 2.2 錯合物 2 之反應式. 秤取 H2BDPP 0.12 克(0.2 毫莫耳)於含磁石的 50 毫升反應瓶內, 將其抽真空並用火烤 10 分鐘,之後使瓶內充滿氮氣,重複此步驟 3 次,最後將反應瓶維持真空狀態下送入手套箱,於手套箱內秤取 12.0 毫克(0.5 毫莫耳) NaH 與 25.3 毫克(0.2 毫莫耳) MnCl2 於反應瓶中, 並加入約 15 毫升的乙腈作為溶劑,於室溫下反應 16 小時,溶液顏色 由乳白色轉變為乳黃色。 反應完畢後,將乳黃色溶液由手套箱送出,並將其乳黃色反應物 於空氣下反應 4 小時,此時溶液顏色由乳黃色轉變為暗紫色;反應 30 分鐘後,將溶液抽乾,利用四氫呋喃將固體溶解並以矽藻土過濾, 隨之將其抽乾。而後以些許四氫呋喃溶解,再加入約 30 毫升的乙醚 使固體析出並靜置,待紫黑色固體完全沉澱,將上層澄清溶液移除。 此動作重複數次後,再將固體抽乾,以約 5 毫升的四氫呋喃將產物回 39.
(51) 溶,以矽藻土過濾,並以乙醚作為子液於室溫下藉由緩慢擴散法養 晶,兩天後可得紫色針狀晶體,固體產率為 52%,以 X-ray 繞射解析 鑑定此晶體結構,並得其分子式為 C41H42MnN3O3。元素分析之理論 值:N, 5.66; C, 69.62; H, 6.52。實驗值:N, 5.83; C, 69.786; H, 6.53。 UV/vis (THF): 398 nm (306 M-1 cm-1) , 533 nm (192 M-1 cm-1)。. 三、錯合物 MnIII(BDPP)(Cl) (3)的合成. 圖 2.3 錯合物 3 之反應式. 秤取 H2BDPP 0.12 克(0.2 毫莫耳)於含磁石的 50 毫升反應瓶內, 將其抽真空並用火烤 10 分鐘,之後使瓶內充滿氮氣,重複此步驟 3 次,最後將反應瓶維持真空狀態下送入手套箱於手套箱內。秤取 12.0 毫克(0.5 毫莫耳) NaH 與 25.3 毫克(0.2 毫莫耳) MnCl2 於反應瓶中, 並加入約 15 毫升的乙腈作為溶劑,於室溫下反應 16 小時,溶液顏色 由乳白色轉變為乳黃色。 反應完畢後,秤取[Cp2Fe](BF4) 0.066 克(0.2 毫莫耳)於反應瓶內, 此時溶液顏色由乳黃色數秒間轉變為草綠色;反應 4 小時後,將溶液 抽乾,利用四氫呋喃將固體溶解並以矽藻土過濾,隨之將其抽乾。之 40.
(52) 後以些許四氫呋喃溶解,再加入約 30 毫升的乙醚使固體析出並靜 置,待草綠色固體完全沉澱,將上層澄清溶液移除,此動作重複數次 後,再將固體抽乾,以約 5 毫升的四氫呋喃將產物回溶,以矽藻土過 濾,並讓乙醚於室溫下緩慢擴散於四氫呋喃溶液,兩天後可得草綠色 針狀晶體,固體產率為 44%,以 X-ray 繞射解析鑑定此晶體結構,並 得其分子式為 C41 H41ClMnN3O2。元素分析之理論值:N, 6.02; C, 70.53; H, 5.92。實驗值:N, 6.337; C, 70.197; H, 6.093。UV/vis (THF):323 nm (1750 M-1 cm-1), 470 nm (306 M-1 cm-1), 641 nm (324 M-1 cm-1)。. 四、錯合物 [MnIII(H2O)(BDPP)](BF4) (4)的合成. 圖 2.4 錯合物 4 之反應式(方法一). 錯合物 4 可以兩種方法合成: 方法一:秤取 MnII(BDPP) (1) 0.132 克(0.2 毫莫耳)與[Cp2Fe](BF4) 0.066 克(0.2 毫莫耳)於含磁石的 50 毫升反應瓶內,並加入約 15 毫升 的四氫呋喃作為溶液,於室溫下反應 4 小時,溶液顏色由金黃色轉變 為深綠色,顏色變化時間約在兩分鐘以內。反應完畢後,將深綠色溶 液抽乾,利用四氫呋喃將固體溶解並以矽藻土過濾,隨之將其抽乾。 41.
(53) 而後以些許四氫呋喃溶解,再加入約 30 毫升的乙醚使固體析出並靜 置,待草綠色固體完全沉澱,將上層澄清溶液移除,此動作重複數次 後,再將固體抽乾,以 5 毫升的四氫呋喃將產物回溶,以矽藻土過濾, 並讓乙醚於室溫下緩慢擴散於四氫呋喃溶液,兩天後可得深綠色針狀 晶體,固體產率為 45%。. 圖 2.5 錯合物 4 之反應式(方法二). 方法二:秤取 MnIII(BDPP)(Cl) 0.14 克(0.2 毫莫耳) 於含磁石的 50 毫升反應瓶內,並加入 AgBF4 0.039 克(0.2 毫莫耳)於反應瓶內, 並加入約 15 毫升的四氫呋喃作為溶液反應 4 小時,溶液顏色由深綠 色慢慢轉變為深咖啡色。 反應完畢後,以矽藻土過濾,隨之將其抽乾。利用四氫呋喃將固 體溶解並以矽藻土過濾,隨之將其抽乾。而後以些許四氫呋喃溶解, 再加入約 30 毫升的乙醚使固體析出並靜置,待草綠色固體完全沉 澱,將上層澄清溶液移除,此動作重複數次後,再將固體抽乾,以 5 毫升的四氫呋喃將產物回溶,以矽藻土過濾,並讓乙醚於室溫下緩慢 擴散於四氫呋喃溶液,兩天後可得深綠色針狀晶體,固體產率為 42.
(54) 55% 。 以 X-ray 繞 射 解 析 鑑 定 晶 體 結 構 , 並 得 其 分 子 式 為 C45H51BF4MnN3O4。元素分析之理論值:N, 5.33; C, 62.81; H, 5.56。實 驗值:N, 5.41; C, 62.96; H, 5.89。UV/vis (THF):320 nm (1330 M-1 cm-1), 464 nm (168 M-1 cm-1), 616 nm (179 M-1 cm-1)。. 43.
(55) 第四節 二價錳錯合物 1 與超氧化鉀之反應 秤取錯合物 1 6.62 毫克(0.01 毫莫耳)於 10 毫升定量瓶之中,並 加入 10 毫升的四氫呋喃,使溶液濃度為 10-3 M,溶液呈淡黃色。於 氮氣下,準備石英槽,並加入超氧化鉀約 50 倍當量,抽真空後並灌 入氮氣回壓,反覆動作 3 次後,加入 3 毫升 10-3 M 的淡黃色溶液,接 著於−80 ˚C 下利用 UV/vis 吸收光譜儀偵測,從−80 ˚C 逐漸升溫至 0 ˚C,並隨其溫度的變化觀察其吸收光譜的變化。. 第五節 三價錳錯合物 4 與超氧化鉀之反應 秤取錯合物 4 7.67 毫克(0.01 毫莫耳)於 10 毫升定量瓶之中,並 加入 10 毫升的四氫呋喃,使溶液濃度為 10-3 M,溶液呈深綠色。於 氮氣下,準備石英槽,並加入超氧化鉀約 50 倍當量,抽真空後並灌 入氮氣回壓,反覆動作 3 次後,加入 3 毫升 10-3 M 的深綠色溶液,接 著於−80 ˚C 下利用 UV/vis 吸收光譜儀偵測,從−80 ˚C 逐漸升溫至 30 ˚C,並隨其溫度的變化觀察其吸收光譜的變化。. 44.
(56) 第六節 二價錳錯合物 1 與氧氣之反應 本實驗欲利用低溫紅外線光譜儀來偵測二價錳錯合物 1 與氧氣 於−80 ˚C 下之變化。低溫紅外線光譜儀須先暖機兩小時,並利用氮氣 將探頭水氣移除,接著注入液氮於儀器當中,以冷卻雷射光源。暖機 完畢後,將特製反應瓶組裝至探頭上,於轉接處使用封口膜纏住,以 防止漏氣問題。隨後將反應瓶抽至真空 5 分鐘,再使瓶內充滿氮氣, 重覆以上動作 3 次後,於瓶內充滿氮氣的環境下,隨即進行儀器校正 動作。儀器校正完畢後,即可進行實驗。 秤取錯合物 1 66.2 毫克(0.1 毫莫耳)於反應瓶之中,並加入 10 毫 升的二氯甲烷,使溶液濃度為 10-2 M,將配置好的起始溶液注入至反 應瓶當中,進行實驗。實驗光譜偵測時間為一小時,每兩分鐘偵測光 譜一次。前十分鐘先偵測起始物的光譜,以便與之後反應光譜作比 較。隨後灌入氧氣,並於後五十分鐘偵測光譜反應變化。反應初期即 可發現在 1200 nm 處有特徵吸收峰,1200 nm 處推測來自於錯合物 1, 然而隨著時間的增加,1200 nm 處的訊號逐漸衰退,而 3100 nm 處有 新的特徵吸收峰生成。. 45.
(57) 圖 2.6 錯合物 1 與氧氣於低溫紅外線光譜儀偵測之光譜 上: 錯合物 1 於−80 ˚C 下: 錯合物 1 與氧氣於−80 ˚C. 46.
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