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新型微粒子免疫分析法(MIA-TF)之流程設立

第五章、 材料與方法

5.5 新型微粒子免疫分析法(MIA-TF)應用於 96 孔盤

6.1.3 新型微粒子免疫分析法(MIA-TF)之流程設立

初次實驗設計流程如下,將微粒子與bio-DNA、蛋白質、一級抗體、二 級抗體依序作接合

其結果如圖四,顯示不論在bio-DNA 是否存在的情況下,只要在加入 細胞核蛋白的實驗組中,其relative total mean 均會躍升,表示蛋白質或抗 體均會與微粒子形成非專一性的鍵結

2. 流程設立-2

於前次實驗結果顯示,微粒子與蛋白質間的非專一性鍵結會導致假陽 性的結果,因此在此階段作兩個部分的流程修飾,

(1)先加入 PEG 與 BSA buffer 與微粒子混合作為微粒子之前處理

(blocking)

(2)改變實驗流程如下:

分析結果如圖五,散點圖於圖七表示,相較於沒有PEG blocking 的組別,

在PEG blocking 的實驗組別中,其實驗組與負向控制組(只有加入蛋白質 而無bio-DNA)之間的差別度明顯,顯示 PEG 可有效達到 blocking 的效果,

降低蛋白質與微粒子間的非專一性鍵結。

3. 流程設立-3

經由流程設立-2,雖可明顯降低非專一性鍵結導致的假陽性結果,然而,

經過幾次獨立的實驗後,卻發現這樣的系統相當的不穩定,因此參考ELISA 的步驟,作兩步驟的修正

(1) 在每一次鍵結完成後,加入 wash buffer(0.02% Tween-20/PBS)混勻,

離心後棄置上清液。

(2) 更動實驗流程如下:

實驗結果圖六顯示,雖然lane I(microsphere alone)、lane II

(microsphere+bio-DNA)和 lane III(實驗組別)的差別度縮小,但加入特 異性競爭核酸片段的組別,其值明顯降低,而加入沒有結合序列的競爭核 酸片段其值沒有差異,顯示實驗組別的螢光程度上升是因為目標轉錄因子 的特異結合導致。

圖四、流程設立-1

將微粒子依序加入 bio-DNA(HBS)、細胞核蛋白(A431 cell nuclear

extract)、一級抗體(mouse anti human HIF-1α antibody)、二級抗體

(goat anti mouse IgG conjugate FITC antibody),每段間隔時間為 1 小時,最後以轉速 10,000rpm 離心 30 分鐘,丟棄上清液後,以 500μl BSA buffer 重新懸浮後,以流式細胞儀分析。

圖五、流程設立-2

先將bio-DNA(HBS)與細胞核蛋白(A431 cell nuclear extract)混和,依 序加入一級抗體、二級抗體,再與已blocking 完成的微粒子混和 15 分鐘,

接著以轉速10,000rpm 離心 30 分鐘後,棄置上清液,以 BSA buffer 重新懸 浮,以流式細胞儀分析。實驗分為兩組,一為微粒子與PEG 作 blocking,

另一為單獨只與BSA buffer 作 blocking 的比較組。

圖六、流程設立-3

將bio-DNA(*HBS)與細胞核蛋白(A431 nuclear extract)作用之後(相對 於bio-DNA 100 倍之競爭核酸片段亦於此步驟同時加入),與 blocking 完成 的微粒子作接合,再依序加入一級抗體、二級抗體,在每一次的接合反應 之後,先加入wash buffer 將微粒子懸浮並以轉速 10,000rpm 離心 5 分鐘,

丟棄上清液後,再加入後續的抗體溶液,最後以500μl BSA buffer 懸浮後,

以流式細胞儀分析。

★:具p<0.05 之顯著性差異