第四章 實驗結果
第三節 動物實驗結果
(一)口服單一劑量毒性試驗(Single dosage oral toxic)
藉由口服濃度10 g/kg的臺灣天仙果水萃液，觀察有無不良反應或 死亡。也可用同樣方法試驗（即某一劑量注入小白鼠內，若5隻中只 有1隻死亡，則減劑量再試直至試出5隻小白鼠均不死亡的最大劑 量）。求出某藥物的安全係數。
計算公式：
安全係數＝小白鼠最大耐受量×成人體重（g）／成人用量×小白 鼠體重（g）。
表十五、臺灣天仙果果實之毒性試驗結果
mice
百分率LD
50存活隻數
10 100％
＞10g/kg死亡之數
0 0％ 0
毒性試驗中，在 10 隻老鼠給予高劑量 10 g/kg 的臺灣天仙果果實 的48 小時，並無發生異樣和死亡的現象，所以推估臺灣天仙果果實 並無毒性。
(二)、葡萄糖口服耐受性實驗(Oral Glucose Tolerance Test)
本實驗於管餵臺灣天仙果果實(低劑量0.1 g/kg、中劑量0.5 g/kg、
高劑量1 g/kg)後，以腹腔方式給予實驗鼠葡萄糖(2 g/kg BW)，分別在
給予葡萄糖前及後的30、90、120 分鐘，利用尾巴採血方式取得血液，
b Values represented mean ± S.D. of three parallel measurements.
圖二十七、OGTT 實驗下給予臺灣天仙果果實在低、中、高劑量之血 糖濃度時間點變化
可知給予臺灣天仙果高劑量下，抑制效果分別為，高劑量(1 g/kg)
＞中劑量(0.5 g/kg)＞低劑量(0.1 g/kg)，表針對口服耐受性實驗中，臺 灣天仙果對血糖升高有調降作用。
(三)、 STZ 誘發糖尿病動物模式之建立：
正常小白鼠及STZ 誘發小白鼠於實驗前先測量並紀錄小白鼠體
重之變化，在STZ 注射後第七天，測量小白鼠的體重及血糖，當血 糖高於130 mg/dL 時判斷已誘發成功，並開始進行實驗，隨機分為五 組，分別為：
①正常老鼠(control組)
②糖尿病鼠(diabetes組)
③糖尿病鼠加臺灣天仙果高劑量FH(diabetes+臺灣天仙果 1g/kg day)
④糖尿病鼠加臺灣天仙果中劑量FM(diabetes+臺灣天仙果 0.5g/kg day)
⑤糖尿病鼠加臺灣天仙果FL 低劑量(diabetes+臺灣天仙果 0.1g/kg day)
(四)、糖尿病鼠給予臺灣天仙果藥物之血糖週期變化
禁食大白鼠血漿葡萄糖濃度，如圖二十五所示。經過注射 streptozotocin 誘導成高血糖後，再每天給與臺灣天仙果低、中、高
劑量(FL 0.1 g/kg、FM 0.5 g/kg、FH 1 g/kg dose)，每週固定一次尾巴
響血糖指標，醣化血色素為較具穩定性且可供代表糖尿病表現之良好 指標。於每週採血進行醣化血色素分析實驗，結果如下圖，其中給予 誘發成高血糖的組別在四週中其醣化血色值在臺灣天仙果與高血糖 組均呈顯著性下降(p＜0.05)與高血糖組為6.56 ± 0.63％、5.99 ± 0.29
％、6.37 ± 0.35％、6.98 ± 0.33％、6.66 ± 0.36％；而臺灣天仙果組5.71
週平均體重均有些微下降的趨勢，但無統計上差異。
圖三十、大白鼠投與臺灣天仙果果實與STZ 之糖尿病模式體重週期 變化
(七) 糖尿病鼠給予臺灣天仙果藥物之Triglyeride週期變化
試驗於第0、1、2、3、4週進行三酸甘油酯濃度分析。結果如下 圖所示，在試驗第1週三酸甘油酯高達125 ± 0.2mg/dL，與空白對照組
0 1 2 3 week
weight g
270 280 290 300 310 320 330 340
control DM FL FM FH
相較呈顯著性上升，在第5週仍維持高水平。試驗於加入臺灣天仙果
異(p＜0.05)。
圖三十二、大白鼠投與臺灣天仙果果實與STZ 之糖尿病模式 Cholesterol 週期變化(p＜0.05)
(九)糖尿病鼠給予臺灣天仙果藥物之HDL週期變化
此實驗針對脂質運輸的脂蛋白含量進行分析，結果如下圖，試驗 於第5、6、7、8、9週進行高密度脂蛋白濃度分析，其中HDL濃度於
0 1 2 3 4 week
cholesterol mg/dL
40 60 80 100 120 140 160
control DM FL FM FH
**
各試驗組在給予臺灣天仙果組別有上升的趨勢，與高血糖組相較有顯
著差異。
的功能是分泌胰液並經由管線排出，以協助油脂的消化；而內分泌腺 體主要由無管腺導狀的胰島組織所構成，胰島中具分泌 insulin 作用 的細胞為 β-cell，為此實驗主藥之標的細胞。背景藍色部分為負責外 分泌的細胞。染上紅棕色的組織細胞極為負責內分泌的胰島細胞。而 結果顯示在各試驗組中β-cell 並未消失，顯示仍具分泌 insulin 的能力。
藉由換算胰島細胞占全部細胞的百分比，來推估胰島細胞所占百 分比，百分比愈高表示胰島被破壞的愈少。
表十六、老鼠胰臟 β-細胞 IHC 試驗
N=20 control DM FL FM FH 修復胰
臟率
100％ 0.081％ 0.18％ 0.38％ 0.43％
圖三十五、正常鼠胰臟 β 細胞 IHC 試驗
Sprague-Dawley 品系老鼠對照組於第九週犧牲，取胰臟切片及 IHC 試驗。
胰臟分為外分泌及負責內分泌的胰島兩部分。染色結果，背景藍色部分為負責外
分泌的細胞，染上黃褐色的組織細胞為負責內分泌的胰島β 細胞。
圖三十六、糖尿病鼠投與胰臟β 細胞 IHC 試驗
Sprague-Dawley 品系老鼠對照組於第九週犧牲，取胰臟切片及 IHC 試驗。
胰臟分為外分泌及負責內分泌的胰島兩部分。染色結果，背景藍色部分為負責外
分泌的細胞，染上黃褐色的組織細胞為負責內分泌的胰島β 細胞。
40X 200X
40X 200X
圖三十七、糖尿病鼠投與臺灣天仙果低劑量胰臟β 細胞 IHC 試驗 Sprague-Dawley 品系老鼠對照組於第九週犧牲，取胰臟切片及 IHC 試驗。
胰臟分為外分泌及負責內分泌的胰島兩部分。染色結果，背景藍色部分為負責外
分泌的細胞，染上黃褐色的組織細胞為負責內分泌的胰島β 細胞。
圖三十八、糖尿病鼠投與臺灣天仙果中劑量胰臟β 細胞 IHC 試驗 Sprague-Dawley 品系老鼠對照組於第九週犧牲，取胰臟切片及 IHC 試驗。
胰臟分為外分泌及負責內分泌的胰島兩部分。染色結果，背景藍色部分為負責外
分泌的細胞，染上黃褐色的組織細胞為負責內分泌的胰島β 細胞。
圖三十九、糖尿病鼠投與臺灣天仙果高劑量胰臟β 細胞 IHC 試驗 Sprague-Dawley 品系老鼠對照組於第九週犧牲，取胰臟切片及 IHC 試驗。
胰臟分為外分泌及負責內分泌的胰島兩部分。染色結果，背景藍色部分為負責外
分泌的細胞，染上黃褐色的組織細胞為負責內分泌的胰島β 細胞。