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第二章 實驗材料與方法

2.3. 原位雜合反應

2.3.1 解剖豌豆蚜蟲

從豌豆 Pisum sativum 上取 4 齡以上的豌豆蚜蟲 Acyrthosiphon pisum 移到培養 皿中。準備新鮮的 20% paraformaldehyde,以 1× phosphate-buffered saline (PBS) 稀釋成 4% paraformaldehyde / PBS。加 4% paraformaldehyde / PBS 到解剖盤上,

將蚜蟲放入 4% paraformaldehyde / PBS 中解剖,先去除胸節上的六足,接著用鑷 子固定腹部末端,用另一隻鑷子從腹部側面撕開蚜蟲,即可看到成串的微卵管,

接著去除粘附的體壁組織和消化道,收集 2~4 隻蚜蟲的微卵管後用微量吸管吸起,

移到含有少量 4% paraformaldehyde / PBS 的微量離心管中,整個過程微卵管都不 可以離開液面,以免造成互相纏繞而影響原位雜合的效果。加入同體積的 heptane 並用旋轉震盪混合器 (interlli mix RM-2, Elmi) 在室溫下持續旋轉 4 小時或在 4°C 放隔夜,去除下層 4% paraformaldehyde / PBS,加入同體積的 methanol 旋轉 5 分 鐘,去除大部分液體。加 700 µl methanol 旋轉 5 分鐘,去除 methanol,重覆此步 驟 2 次,加 700 µl methanol 後,保存於 -20°C 冰箱中。

2.3.2 原位雜合反應

先使存放 -20°C 已脫過水的微卵管再度水合,以 methanol 和 1× phosphate-buffered saline (PBS) 分別配製出 3:1、1:1 和 1:3 比例溶液,加入 500 µl 各比 例溶液並旋轉 5 分鐘,去除該溶液並重覆此步驟 (去除溶液時,仍須保留約 50~100 µl 溶液,避免微卵管離開液面),以 700 µl 0.1% PTw (1× PBS,0.1%

Tween-20) 重覆清洗 4 次,每次旋轉 5 分鐘。加 500 µl hybridization buffer - (Hyb-) (50% formamide,5× sodium chloride / sodium citrate (SSC),0.1% Tween-20),並放入雜合烘箱中 (hybridization oven, YIH DER RH-800) 在 68°C 震盪 10 分

鐘,同時準備 hybridization buffer + (Hyb+) (50% formamide,5× sodium chloride / sodium citrate (SSC),0.1% Tween-20,5 mg / ml yeast RNA,50 µg / ml heparin) 加 熱至 68°C,去除 Hyb- 並加入 500 µl Hyb+ 在 60~72°C (溫度需經多次調整至呈色

detection buffer (100 mM Tris-Cl,100 mM NaCl,500 mM MgCl2,0.1% Tween-20,

1 mM levamisole;pH 9.5) 在室溫下旋轉 5~10 分鐘,去除溶液,重覆加入 1×

detection buffer 此步驟 2 次。準備 AP substrates,加 20 µl NBT/BCIP stock solution

(Nitroblue tetrazolium (NBT) 18.75 mg / ml,5-bromo-4-choro-3-indolyl phosphate (BCIP) 9.4 mg / ml,Roche) 到 1 ml 1× detection buffer (含 1 mM levamisole),將微 卵管以微量吸管移到玻璃解剖盤,加上 200 µl AP substrates (NBT/BCIP),放在 4°C 冰箱呈色,每小時觀察一次。呈色完成後,紀錄呈色時間並加 0.1% PTw 來 中止呈色反應,並將微卵管移回原本的微量離心管,加 700 µl 0.1% PTw 在室溫 下旋轉 10 分鐘,去除溶液,重覆加入 0.1% PTw 此步驟 2 次。將 1000× 4’,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI,2 ng / µl) (Sigma) 以 0.1% PTw 稀釋成 1× DAPI,

加 500 µl 1× DAPI 在室溫下旋轉 1 小時或 4°C 震盪至隔夜 (加入 1× DAPI 之後的 步驟都需要避光),去除溶液,加 700 µl 0.1% PTw 在室溫下旋轉 10 分鐘,去除溶 液,重覆加入 0.1% PTw 此步驟 3 次。加入 500 µl 70% glycerol,以鋁箔紙或紙盒 保管避免光線,放入 4°C 冰箱震盪至隔夜,保存在 4°C 冰箱。

若要進行雙原位雜合反應 (double in situ hybridization),在探針雜合時,就需 將兩種不同標誌的探針 (DIG / FL labeling probe) 放入同一管 Hyb+ 中,後續步驟 或 Fast blue (Sigma) 去呈色時,注意使用的 1× detection buffer 是不同的 ,Fast red 是用一顆 Fast red tablet (Roche) 溶在 2 ml 1× detection buffer (0.1 M Tris-HCl,

0.1% Tween-20 , 1 mM levamisole , pH 8.2) ; 取 20 µl 4-benzoylamino-2,5-diethoxybenzenediazonium chloride hemi[zinc chloride] (Fast Blue BB) salt (50 mg / ml) 和 10 µl naphtjol-AS-MX-phosphate (NAMP) (50 mg / ml) (Sigma) 到 1 ml 1×

detection buffer (0.1 M Tris-HCl,0.1% Tween-20,1 mM levamisole,pH 8.2)。

呈色完成的微卵管在 70% glycerol 中,以微針來分離各個不同時期的胚胎,

將單獨的胚胎放置於載玻片上,並蓋上蓋玻片,當胚胎時期大於 stage 11 時,需 要先放置一塊蓋玻片當作架橋的支點,避免胚胎被蓋玻片壓碎,在蓋玻片四周塗 上指甲油封片,用 Leica DMR (Leica) 和 Fuji FinePix S2 Pro digital camera (Fujifilm) 來拍照,細胞核染色 (DAPI staining) 是用 Leica TCS SP5 Confocal Spectral Microscope Imaging System 來拍照。