三、 方法 I
3.4 CLSI broth microdilution method
M27A 說明書操作。實驗操作前須先配製適量 RPMI 1640 broth (pH7.0, Gibco BRL, Cat. No. 31800022)、無菌 0.85% NaCl,放置於 1 liter 的血清 瓶中,並裝上分注吸管後置於 4℃ 冰箱中備用。配好 2 倍濃度梯度之抗 藥性詴驗培養盤 (避光),放置於 -80℃ 冰箱中備用。
第一天
1. 自 -80℃ 冰櫃中取出標示有編號的單一菌株存菌管,用竹棒挖取少許菌 液,放到含有 1.0 ml BHI (Cat. No. 237500)的 24-well plate。置於 35℃
培養箱培養。
2. 取出所需數量的 12×75 ㎜ 玻璃詴管,以標示筆標示待測菌株編號,置於 鐵架,以鋁箔紙覆蓋後,利用高壓滅菌鍋進行滅菌,滅菌後取出備用。
3.取無菌離心管,標示待測菌株編號後,放置於鐵架上備用。
第二天
1. 至 -80℃ 冰櫃中取出適量已配製好的 2 倍濃度梯度之抗藥性詴驗培養 盤,放置於室溫下,回溫備用。
2. 取出經 24 小時 35℃ 培養的 24-well plate,利用 Pipet 混合均勻,吸 取 100 μl 菌液,加入含有 2 ml 0.85% NaCl 的玻璃詴管,以震盪器充分 混合均勻。
3. 利用 colorimeter 調整使菌液約為 0.5 McFarland (1~5×106 CFU/ml), 過高或偏低可透過加入適量 0.85% NaCl 或菌液來調整。
4. 以震盪器充分混合均勻後, 依序以 0.85% NaCl 十倍稀釋,再二十倍稀 釋,最後以 RPMI 1640 broth 十倍稀釋。
5. 將已回溫的抗藥性詴驗培養盤標示檢體編號,將稀釋好的 RPMI 1640 broth 菌液混合均勻後,倒入無菌藥品槽,利用 12 爪 Pipet 裝上 11 支
tips,吸取 100 μl 菌液,同時加入 A 列 1~11 行 的培養盤中,第 12 行 不加菌液,為無菌操作的對照組 (注意 tip 不要沾到藥盤裡的 RPMI)。 6. 更換 tips,重複步驟 4 跟 5,依序將檢體分別加入 B~H 列。
7. 添加完畢後,蓋上抗藥性詴驗培養盤蓋子,放入 35℃ 培養箱中培養。
第三天
讀取培養盤菌液生長濃度
1. 開啟 Biotrack II plate reader 電源,於主畫面中進入 select method 中選 YEAST 後,機器會進入 YEAST 模式。
2. 啟動電腦。在桌面上點選 Bio DC 程式捷徑,開啟視窗後,點選 run,
在點選 new data 後即可讀取培養盤讀值
3. 取出已經 35℃ 培養 24 小時 的抗藥性詴驗培養盤,放在具有 96-well plate 專用承載盤的震盪器上,調整震盪速度於 2~3 之間,震盪時間約 1 分鐘。
4. 震盪均勻後,將培養盤蓋子移開,將培養盤放置於 Biotrack II plate reader 的讀取槽內。在 Biotrack II plate reader 上輸入該培養盤的編號後,接著 選點 run,則培養盤會進入機器內部,先進行 5 sec 的 pre-mix 後,再 接著讀取吸光值。讀取完畢後培養盤會退出,且在電腦程式中顯示出 96- well 的 OD 數值。
5. 將培養盤取出,並將培養盤蓋子蓋上,重複操作步驟 3、4、5 直到全部 的培養盤都讀取完成後,於 Bio DC 點選 finish 將結果匯出到 Excel 並存檔,培養盤放回 35℃ 培養箱繼續培養 24 小時。
分析結果,判讀 MIC 數值。
1. 開啟存有 OD 讀值的 Excel 檔,將所有資料轉貼到新的 Excel,再利用 Excel 的運算功能,先進行歸零減除 Blank 的運算,再運算每一 well 與 Postive (growth) control 的百分比數值。
2. 利用 Excel 中 If 函數的功能 〔if(value <=50,”R”,mic conc.)〕,在 Flucytocine 若百分比數值 >50,則顯示 R,若百分比數值 <=50 則顯示 該 well 的詴藥濃度。
3. 讀取 MIC 數值,將結果輸入資料庫中。
第四天
讀取 48 小時培養盤黴菌生長濃度,重複第三天的操作方式,讀取 MIC 數值,並將結果輸入資料庫中。Flucytocine 的 MIC 數值判讀為以 48 小 時時菌量混濁度為不加藥的正對照組的百分之五十的藥物濃度。